專利名稱:醋酸鋰介導(dǎo)的香菇基因轉(zhuǎn)移技術(shù)的制作方法
技術(shù)領(lǐng)域:
本發(fā)明涉及食用菌基因工程技術(shù)。
近幾年來,食用菌基因工程研究取得了長足的進(jìn)展,一批目的基因已被克隆出來,但在食用菌遺傳轉(zhuǎn)化方面有關(guān)的報(bào)道較少,在國內(nèi),有人利用電擊法將糙皮側(cè)耳的總DNA導(dǎo)入紫孢側(cè)耳,獲得了轉(zhuǎn)化菌株;在國外,有將潮霉素抗性基因轉(zhuǎn)入糙皮側(cè)耳和雙孢蘑菇,URAI基因轉(zhuǎn)入柳松菇和結(jié)實(shí)基因(Frt1)轉(zhuǎn)入裂褶菌等。上述轉(zhuǎn)化利用的主要是氯化鈣/聚乙二醇(CaCl2/PEG)介導(dǎo)原生質(zhì)體轉(zhuǎn)化和電擊法。在香菇基因轉(zhuǎn)移方面,僅有日本巖手大學(xué)建立的限制酶/聚乙二醇介導(dǎo)的一種轉(zhuǎn)化技術(shù),但該技術(shù)中使用的限制性內(nèi)切酶價(jià)格昂貴,轉(zhuǎn)化成本較高。
本發(fā)明的目的在于提供一種簡便、經(jīng)濟(jì)、有效的醋酸鋰介導(dǎo)的香菇基因轉(zhuǎn)移技術(shù)。
本發(fā)明包括外源目的基因的提取和純化、受體原生體質(zhì)的制備、外源目的基因的導(dǎo)入和轉(zhuǎn)化、原生質(zhì)體的篩選和鑒定四個(gè)部分;各過程內(nèi)容如下1、外源目的基因的提取和純化過程采用常規(guī)的“堿裂解法”來提取質(zhì)粒DNA,提取后的質(zhì)粒DNA采用聚乙二醇分級(jí)沉淀法純化,用紫外吸收法檢測質(zhì)粒DNA濃度和純度,濃度要求達(dá)到1毫克/毫升,純度要求達(dá)到OD260/OD280≥1.8,OD260/OD230≥2.0,并在1%水平瓊脂糖凝膠上電泳,檢測質(zhì)粒大小,然后放入-20℃冰箱內(nèi)待用;2、受體原生質(zhì)體的制備為防止原生質(zhì)體破裂,在原生質(zhì)體的酶解液中加入一定的壓力,以濃度為0.4~0.8摩爾的甘露醇或蔗糖或氯化鉀作為滲透穩(wěn)定劑,在滲透穩(wěn)定劑中加入溶壁酶,配制濃度1.5~3%的溶壁酶酶解液,取培養(yǎng)3~10天的香菇菌絲球,放入酶解液中,在20~35℃條件下進(jìn)行酶解,制備受體原生質(zhì)體,經(jīng)過濾純化,得到原生質(zhì)體純液,純液中受體原生質(zhì)體濃度在106個(gè)/毫升以上;3、外源目的基因的導(dǎo)入按以下步驟進(jìn)行(1)取制備好的受體原生質(zhì)體純液,進(jìn)行離心,棄上清液,再用濃度0.6摩爾甘露醇洗滌一離心2次以上,洗去培養(yǎng)基的成份;(2)加入起介導(dǎo)作用的濃度為0.1~0.5摩爾的醋酸鋰(LiAc)與受體原生質(zhì)體混合,進(jìn)行高速離心,吸除醋酸鋰,再用0.1~0.5摩爾的醋酸鋰與受體原生質(zhì)體混合,調(diào)整受體原生質(zhì)體濃度,要求受體原生質(zhì)體數(shù)在106~109個(gè)/毫升之間;(3)制備外源運(yùn)載DNA,用于提高轉(zhuǎn)化效率將單鏈運(yùn)載DNA加入DNA緩沖液中,濃度為2微克/毫升,煮沸,然后迅速在冰水中冷卻,待用;(4)取第(2)步得到的原生質(zhì)體進(jìn)行離心,去掉醋酸鋰,得到前處理的純?cè)|(zhì)體;(5)在純?cè)|(zhì)體中依次加入濃度50~60%的聚乙二醇、濃度為1.0~1.2摩爾的醋酸鋰、外源運(yùn)載DNA、外源質(zhì)粒DNA和無菌水,構(gòu)成反應(yīng)液,體積比為聚乙二醇占50~60%,醋酸鋰10~15%,外源運(yùn)載DNA12~15%,其余為無菌水,使反應(yīng)液中受體原生質(zhì)體數(shù)在106~109個(gè)/毫升之間;質(zhì)粒DNA含量1.0~20微克/毫升;(6)用力充分混勻反應(yīng)液,然后在25~35℃下培養(yǎng);(7)在35~45℃水浴中搖動(dòng)培養(yǎng)20~40分鐘;(8)將反應(yīng)液離心,然后將轉(zhuǎn)化混合物吸除,得到轉(zhuǎn)化后的原生質(zhì)體;(9)在MYG(麥芽糖0.5%、酵母粉0.5%、葡萄糖1%、其余為水)培養(yǎng)基中加入蔗糖,使培養(yǎng)基的蔗糖濃度為0.4~0.6摩爾,將轉(zhuǎn)化后的原生質(zhì)體與培養(yǎng)基混合,搖動(dòng)培養(yǎng)20小時(shí)以上,然后移入固體培養(yǎng)基上培養(yǎng)。
3、轉(zhuǎn)化原生體質(zhì)的篩選和鑒定(1)根據(jù)報(bào)告基因鑒定將前述(9)經(jīng)過搖動(dòng)培養(yǎng)的原生質(zhì)體與培養(yǎng)基的混合液離心,吸除上清液,加入蔗糖濃度為0.4摩爾的MYG培養(yǎng)基和X-Glux檢測液,在30~40℃下?lián)u動(dòng)培養(yǎng)20小時(shí)以上,再在2~10℃下培養(yǎng)48小時(shí)以上,然后在光學(xué)顯微鏡下檢蘭色原生體質(zhì),計(jì)算轉(zhuǎn)化率;(2)根據(jù)選擇抗性標(biāo)記基因篩選根據(jù)轉(zhuǎn)化質(zhì)粒攜帶的卡那霉素抗性標(biāo)記基因,在MYG培養(yǎng)基中加入卡那霉素,形成選擇培養(yǎng)基,將上述(9)培養(yǎng)的原生質(zhì)體平鋪于選擇培養(yǎng)基上,在20~30℃下培養(yǎng),對(duì)形成的菌落進(jìn)行多聚酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR)檢測,對(duì)檢測陽性菌株,進(jìn)行分子雜交(Southern Blot)分析,呈陽性的菌株進(jìn)一步培養(yǎng)利用。
本發(fā)明的優(yōu)點(diǎn)如下1、提高了轉(zhuǎn)化效率。本發(fā)明的轉(zhuǎn)化率約為104轉(zhuǎn)化子/微克質(zhì)粒DNA,而氯化鈣/聚乙二醇(CaCl2/PEG)介導(dǎo)法的轉(zhuǎn)化率為103轉(zhuǎn)化子/微克質(zhì)粒DNA,前者是后者的十倍。
2、轉(zhuǎn)化成本低。本發(fā)明不需要特殊的儀器設(shè)備,電擊法所用的脈沖儀,國產(chǎn)價(jià)格為3萬元左右,進(jìn)口價(jià)格為10萬元左右;與限制酶/聚乙二醇法相比,處理1毫克原生質(zhì)體所需限制酶的成本為5000元人民幣,本發(fā)明處理同量的原生質(zhì)體所需醋酸鋰的成本僅為1元人民幣。
3、本發(fā)明提供的方法所需設(shè)備和條件簡單,操作過程容易掌握,在一般實(shí)驗(yàn)室的條件下均能進(jìn)行,便于普及推廣。
實(shí)施例將外源目的基因質(zhì)粒載體PGBI131SABC轉(zhuǎn)化到香菇L26上,該質(zhì)粒攜帶BT毒蛋白基因和豇豆胰蛋白酶抑制素基因(CPTI),另外還帶有卡那霉素抗性選擇標(biāo)記基因和β-葡萄糖苷酸酶報(bào)告基因。
1、受體原生質(zhì)體的制備以濃度為0.6摩爾甘露醇作為滲透穩(wěn)定劑,配制2.5%的溶壁酶酶解液,取培養(yǎng)5天的“香L26”香菇菌絲球,加入酶解液中,在30℃條件下進(jìn)行酶解,制備原生質(zhì)體,過濾純化,純化后的原生質(zhì)體濃度為106個(gè)/毫升;2、外源目的基因的導(dǎo)入按以下步驟進(jìn)行(1)取制備好的原生質(zhì)體純液30毫升,在3000轉(zhuǎn)/分條件下離心5分鐘,棄上清液,用濃度0.6摩爾甘露醇洗2遍;
(2)加入20毫升濃度為0.1摩爾的醋酸鋰(LiAc)與原生質(zhì)體混合,在最高速下離心15秒,吸除醋酸鋰,再用0.1摩爾的醋酸鋰混合原生質(zhì)體,調(diào)整原生體質(zhì)濃度,使原生質(zhì)體數(shù)在3×106個(gè)/毫升;(3)制備外源運(yùn)載DNA,將單鏈運(yùn)載DNA小牛胸腺肽或鮭魚精子DNA加入TE緩沖液中,濃度為2微克/毫升,制備15毫升,煮沸5分鐘,然后迅速在冰水中冷卻,待用;(4)取第二步得到的原生質(zhì)體14毫升離心,去掉醋酸鋰;(5)向原生質(zhì)體中依次加入濃度為50%的聚乙二醇60毫升,濃度為1.0摩爾的醋酸鋰10毫升,運(yùn)載DNA14毫升、濃度為1毫克/毫升PGBI131SABC質(zhì)粒DNA1毫升,其余用無菌水,使其終體積為100毫升;(6)用力充分混勻混合液,然后在30℃下培養(yǎng)30分鐘;(7)在42℃水浴中搖動(dòng)培養(yǎng)30分鐘;(8)在8000轉(zhuǎn)/分鐘離心15秒,然后將轉(zhuǎn)化混合物吸除;(9)在MYG培養(yǎng)基中加入蔗糖,使培養(yǎng)基的蔗糖濃度為0.4摩爾,將轉(zhuǎn)化后的原生質(zhì)體與培養(yǎng)基混合,搖動(dòng)培養(yǎng)24小時(shí),然后移入固體培養(yǎng)基上培養(yǎng)。本實(shí)施例可獲得約106個(gè)具有抗蟲基因的轉(zhuǎn)化原生質(zhì)體。
權(quán)利要求
1.醋酸鋰介導(dǎo)的香菇基因轉(zhuǎn)移技術(shù),采用常規(guī)的“堿裂解法”來提取外源目的基因的質(zhì)粒DNA,提取后的質(zhì)粒DNA采用PEG分級(jí)沉淀法純化,用紫外吸收法檢測質(zhì)粒DNA濃度和純度,濃度要求達(dá)到1毫克/毫升,純度要求達(dá)到OD260/OD280≥1.8,OD260/OD230≥2.0,并在1%水平瓊脂糖凝膠上電泳,檢測質(zhì)粒大小,然后放入-20℃冰箱內(nèi)待用,其特征在于其方法還包括A、受體原生質(zhì)體的制備;以濃度為0.4~0.8摩爾的甘露醇或蔗糖或氯化鉀作為滲透穩(wěn)定劑,在滲透穩(wěn)定劑加入溶壁酶,配制濃度1.5~3%的溶壁酶酶解液,取培養(yǎng)3~10天的香菇菌絲球,放入酶解液中,在20~35℃條件下進(jìn)行酶解,制備受體原生質(zhì)體,經(jīng)過濾純化,使受體原生質(zhì)體濃度在106個(gè)/毫升以上;B、外源目的基因的導(dǎo)入按以下步驟進(jìn)行(1)取制備好的受體原生質(zhì)體純液,進(jìn)行離心,棄上清液,再用濃度0.6摩爾甘露醇洗滌—離心2次以上,洗去培養(yǎng)基的成份;(2)加入濃度為0.1~0.5摩爾的醋酸鋰與受體原生質(zhì)體混合,進(jìn)行高速離心,吸除醋酸鋰,再用0.1~0.5摩爾的醋酸鋰與受體原生質(zhì)體混合,調(diào)整受體原生質(zhì)體濃度,要求受體原生質(zhì)體數(shù)在106~109個(gè)/毫升之間;(3)制備外源運(yùn)載DNA將單鏈運(yùn)載DNA加入緩沖液中,濃度為2微克/毫升,煮沸,然后迅速在冰水中冷卻,待用;(4)取第(2)步得到的原生質(zhì)體進(jìn)行離心,去掉醋酸鋰,得到前處理的純?cè)|(zhì)體;(5)在純?cè)|(zhì)體中依次加入濃度50~60%的聚乙二醇、濃度為1.0~1.2摩爾的醋酸鋰、外源單鏈運(yùn)載DNA、外源質(zhì)粒DNA和無菌水,構(gòu)成反應(yīng)液,體積比為聚乙二醇占50~60%,醋酸鋰10~15%,外源運(yùn)載DNA12~15%,其余為無菌水,使反應(yīng)液中受體原生質(zhì)體數(shù)在106~109個(gè)/毫升之間;質(zhì)粒DNA含量1.0~20微克/毫升;(6)充分混勻反應(yīng)液,然后在25~35℃下培養(yǎng);(7)在35~45℃水浴中搖動(dòng)培養(yǎng)20~40分鐘;(8)將反應(yīng)液離心,然后將轉(zhuǎn)化混合物吸除,得到轉(zhuǎn)化后的原生質(zhì)體;(9)在MYG培養(yǎng)基中加入蔗糖,使培養(yǎng)基的蔗糖濃度為0.4~0.6摩爾,將轉(zhuǎn)化后的原生質(zhì)體與培養(yǎng)基混合,搖動(dòng)培養(yǎng)20小時(shí)以上,然后移入固體培養(yǎng)基上培養(yǎng)。
2.根據(jù)權(quán)利要求1所說的醋酸鋰介導(dǎo)的香菇基因轉(zhuǎn)移技術(shù),其特征在于滲透穩(wěn)定劑為甘露醇。
3.根據(jù)權(quán)利要求1所說的醋酸鋰介導(dǎo)的香菇基因轉(zhuǎn)移技術(shù),其特征在于單鏈運(yùn)載DNA為小牛胸腺肽或鮭魚精子DNA。
全文摘要
醋酸鋰介導(dǎo)的香菇基因轉(zhuǎn)移技術(shù)。受體原生質(zhì)體的酶解液中加入滲透穩(wěn)定劑,外源目的基因的前處理以醋酸鋰為介導(dǎo)質(zhì),在原生質(zhì)體中依次加入聚乙二醇、醋酸鋰、單鏈運(yùn)載DNA、外源質(zhì)粒DNA和無菌水,構(gòu)成反應(yīng)液。將反應(yīng)液培養(yǎng)、離心、分離混合物,得到轉(zhuǎn)化后的原生質(zhì)體;將轉(zhuǎn)化后的原生質(zhì)體與培養(yǎng)基混合,搖動(dòng)培養(yǎng),然后移入固體培養(yǎng)基上培養(yǎng)。本發(fā)明轉(zhuǎn)化效率高,轉(zhuǎn)化成本低,所需設(shè)備和條件簡單,便于普及推廣。
文檔編號(hào)A01H1/00GK1384202SQ0111392
公開日2002年12月11日 申請(qǐng)日期2001年4月29日 優(yōu)先權(quán)日2001年4月29日
發(fā)明者王丕武, 李玉, 于彥春, 武麗敏 申請(qǐng)人:吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)