專利名稱：切花百合組培種苗一次成苗的方法
技術領域：
本發(fā)明涉及切花百合組培種苗快繁培養(yǎng)方法，屬于植物的組織培養(yǎng)技術領域。
背景技術：
百合是百合科百合屬多年生草本鱗莖植物，是世界著名的觀賞花卉。近年來，隨著我國經濟的發(fā)展和人民生活水平的提高，百合已成為我國花卉市場中的重要高檔切花種類。關于百合的組織培養(yǎng)，國內外不少研究者開展了大量的工作。據不完全統(tǒng)計，國內外組織培養(yǎng)成功的百合種及品種超過幾百種，但均局限于對組培技術中某個環(huán)節(jié)(如外植體部位，培養(yǎng)基成分，培養(yǎng)條件，種質保存等)的研究，未系統(tǒng)地進行切花百合種苗組培技術研究及規(guī)?；a。光獨立(Photoautotrophic)培養(yǎng)，即無糖箱式組培技術的發(fā)明主要是解決植物組培快繁階段的環(huán)境調控問題，所以在光獨立培養(yǎng)操作中，主要強調培養(yǎng)容器、培養(yǎng)基質、培養(yǎng)操作器具、通入的氣體、培養(yǎng)外界環(huán)境的無菌要求等等，而且其操作規(guī)程較為繁瑣，不易于種苗的規(guī)?；a。

發(fā)明內容
本發(fā)明的目的在于提供一種能簡化組培種苗的培養(yǎng)程序，并通過培養(yǎng)環(huán)境的控制，便于規(guī)模化生產優(yōu)質切花百合組培種苗的一次成苗方法。
本發(fā)明所述切花百合組培種苗快繁培養(yǎng)方法的步驟是1、取材及滅菌將準備接種的鱗莖在4～5℃溫度下處理6～8周，清洗，剝去鱗莖外皮及外部2～3層鱗片，用75％的酒精浸泡30～60秒，然后在0.1～0.2％的升汞(Hgcl2)溶液中處理15～20分鐘，1～2％的次氯酸鈉溶液中處理10～15分鐘，無菌水洗3～4次后，進行切塊或段接種；2、誘導培養(yǎng)在無菌條件下，將處理好的外植體切塊或段接種到下列誘導培養(yǎng)基中培養(yǎng)20～25天，使切口產生白色的愈傷組織及小鱗莖突起即不定芽
MS基本培養(yǎng)液6-芐基氨基嘌呤(6-BA) 10～2.0mg/L萘乙酸(NAA) 0.1～0.5mg/L蔗糖 30000mg/L瓊脂 5500mg/L3、增殖培養(yǎng)在無菌條件下，將上述誘導出的愈傷組織及不定芽分切后轉入下列增殖培養(yǎng)基中，在溫度為26±2℃，光照時間10～12小時/天，光照強度1500～2000Lx的條件下，培養(yǎng)15～20天，使小鱗莖增殖，并抽出葉片，成為幼苗MS基本培養(yǎng)液6-芐基氨基嘌呤(6-BA)0.5～1.0mg/L萘乙酸(NAA) 0.2～0.5mg/L蔗糖30000mg/L瓊脂5500mg/L4、光獨立生根培養(yǎng)在常規(guī)室溫下，將增殖培養(yǎng)20天，具1對葉以上，高2.0cm的幼芽切下，插入下列培養(yǎng)基中MS改良培養(yǎng)液萘乙酸(NAA) 0～0.1mg/L蛭石∶培養(yǎng)液 2～3∶1通入氣流量為1-5L/min的CO2混合氣體，并保持CO2濃度在600～1000ppm，相對濕度80-90％，進行光獨立生根培養(yǎng)，培養(yǎng)20天后可得切花百合種苗。
由于本發(fā)明的難點之一是在不同的培養(yǎng)階段，使用不同的培養(yǎng)基及不同的培養(yǎng)方法，因此，各培養(yǎng)基的配方是極其關鍵的技術，否則難于加快組織培養(yǎng)過程，也難于獲得優(yōu)質種苗。
本發(fā)明所述各階段的培養(yǎng)基是快繁培養(yǎng)階段使用現有技術中的MS培養(yǎng)液；生根階段使用不添加有機物和維生素的MS改良培養(yǎng)液；外植體誘導愈傷組織及不定芽階段使用的培養(yǎng)基為(單位mg/L)MS+(1.0～2.0)6-芐基氨基嘌呤+(0.1～0.5)萘乙酸+30000蔗糖+5500瓊脂；不定芽分化及增殖階段使用的培養(yǎng)基為(單位mg/L)MS+(0.5～1.0)6-芐基氨基嘌呤+(0.2～0.5)萘乙酸+30000蔗糖+5500瓊脂；單株生根培養(yǎng)階段使用的培養(yǎng)基為(單位mg/L)改良MS培養(yǎng)液+(0～0.1)萘乙酸+蛭石(2～3倍)。
由于本發(fā)明的難點之二是如何在解決切花百合組培快繁的基礎上，簡化組培種苗的培養(yǎng)程序，從而為規(guī)?；a奠定堅實的基礎。其關鍵是在種苗的生根階段采用光獨立培養(yǎng)方法，并通過培養(yǎng)環(huán)境調控，即控制CO2混合氣體濃度、通氣時間、光照強度，使培養(yǎng)出來的生根苗不需移栽，直接在室外過渡管理后即可一次成苗。所述光獨立培養(yǎng)的步驟是①種苗進入光獨立培養(yǎng)的0～5天，保持相對濕度在95％以上；②6～10天開始通入氣流量1L/min的CO2混合氣體，CO2濃度保持在600～800ppm，相對濕度85-90％；③11～15天，氣流量加至3L/min，CO2濃度保持在800～1000ppm，相對濕度在80-85％；④出苗前期，空氣流量可調至3～5L/min，20天后出室外繼續(xù)培養(yǎng)，20～30天后成苗；培養(yǎng)期間光照強度2000～2500Lx(兩只日光燈)，每天光照12小時，培養(yǎng)室溫度保持20±2℃。
本發(fā)明具有下列優(yōu)點和效果通過對切花百合外植體處理以及提供適宜的誘導及增殖培養(yǎng)基，優(yōu)化了百合組培快繁技術，并在種苗的生根階段采用光獨立培養(yǎng)技術，簡化了組培種苗的培養(yǎng)程序及操作，組培無根苗的切取無需在超凈工作環(huán)境中進行，通過對現有方法中的CO2混合氣體濃度、通氣時間、光照強度等關鍵因素的控制，使培養(yǎng)出的生根苗不需移栽，直接在室外過渡管理后即可一次成苗，在節(jié)約成本的前提下，產出的種苗健壯、整齊、品質好，達到優(yōu)質種苗的標準，適于花卉種苗的規(guī)?；a。
實施例1優(yōu)選生長健壯、開花性狀好的東方百合雜種系(Oriental hybrids)品種“Siberia”、“Sorbonne”的種球作為外植體，在取材前，將準備接種的鱗莖在4～5℃的低溫下處理6周，然后經洗衣粉水清洗，剝去鱗莖外皮及外部3層鱗片，切去少許頂部及基部，剝成帶部分基盤的單個鱗片，用75％的酒精浸泡60秒，然后在0.1％升汞溶液中處理15分鐘，2％的次氯酸鈉溶液處理10分鐘，無菌水洗3次，進行無菌操作切塊接種；2、誘導培養(yǎng)在無菌條件下，將處理好的外植體切塊(段)接種到下列誘導培養(yǎng)基中培養(yǎng)20天，使切口產生白色的愈傷組織及小鱗莖突起(不定芽)MS基本培養(yǎng)液6-芐基氨基嘌呤 1.0mg/L萘乙酸 0.5mg/L蔗糖 30000mg/L瓊脂 5500mg/L3、增殖培養(yǎng)在無菌條件下，將上述誘導出的愈傷組織及不定芽分切后轉入下列增殖培養(yǎng)基中，在溫度為26±2℃，光照時間12小時/天，光照強度1500Lx的條件下，培養(yǎng)20天，使小鱗莖增殖，并抽出葉片，成為幼苗MS基本培養(yǎng)液(同上)6-芐基氨基嘌呤 0.5mg/L萘乙酸 0.5mg/L蔗糖30000mg/L瓊脂5500mg/L上述2、3步驟中培養(yǎng)基的制作是將培養(yǎng)基各成分混勻后再進行分裝、不透氣膜封口，經110～125℃，8～12分鐘高壓滅菌，取出后在潔凈的房間內冷卻待用；4、光獨立生根培養(yǎng)在常規(guī)室溫下，將增殖培養(yǎng)20天，具1對葉以上，高2cm左右的幼芽切下，插入下列培養(yǎng)基中MS改良培養(yǎng)液萘乙酸 0.1mg/L蛭石∶溶液＝3∶1培養(yǎng)基中的培養(yǎng)液和蛭石需分別滅菌，將培養(yǎng)液分裝到玻璃瓶中，封口，經125℃，10分鐘高壓滅菌，冷卻待用；蛭石噴水后分裝，包扎封口后經110℃，20分鐘高壓滅菌，冷卻待用。在使用時，將培養(yǎng)液與蛭石以1∶3的比例混勻，鋪在育苗盤中，厚度3～4cm；光獨立培養(yǎng)過程是①種苗進入光獨立培養(yǎng)的當天計為0天；②0～5天，培養(yǎng)箱內不通氣，相對濕度保持在95％以上；③6～10天開始通入氣流量1L/min的CO2混合氣體，CO2濃度保持在600～800ppm，相對濕度85-90％；④培養(yǎng)11～15天，氣流量3L/min，CO2濃度可在800～1000ppm保持不變，相對濕度在80-85％；⑤出苗前期在其它條件不變的情況下，空氣流量可調至3～5L/min，20天后可出室外繼續(xù)培養(yǎng)，不需移栽，20～30天后可成苗。
整個光獨立培養(yǎng)均在箱式容器內進行，培養(yǎng)基質為蛭石，不加糖，培養(yǎng)期間光照強度2000～2500Lx(兩只日光燈)；12小時/天光照；為保證光照的均勻，每天交錯開日光燈；整個培養(yǎng)期間培養(yǎng)室溫度保持20±2℃(培養(yǎng)箱內為26±2℃)；混和氣體消毒柱采用優(yōu)氯凈作為消毒水，需10～20天更換一次，濃度1/150～250；每出一批苗后，需用濃度為1/150～250的消毒水對培養(yǎng)箱進行清洗；⑩隨時保持培養(yǎng)室內的清潔。
切花百合經光獨立培養(yǎng)10天左右便可生根。培養(yǎng)20天后移到溫室大棚中繼續(xù)培養(yǎng)，不需移栽。前期注意保持濕度，20～30天后可成苗，進行大田移栽。
實施例2優(yōu)選生長健壯、開花性戕好的亞洲百合雜種系(Asiatic hybrids)品種“Toro”、“Elle”的種球作為外植體，在取材前，然后經洗衣粉水切去少許頂部及基部，將準備接種的鱗莖在4～5℃的低溫下處理8周，清洗，剝去鱗莖外皮及外部2層鱗片，用75％的酒精浸泡30秒，然后在0.1％的汞溶液中處理20分鐘，2％的次氯酸鈉溶液中處理15分鐘，無菌水洗4次后，進行切塊(段)接種；2、誘導培養(yǎng)在無菌條件下，將處理好的外植體切塊(段)接種到單位為mg/L的下列誘導培養(yǎng)基中培養(yǎng)25天，使切口產生白色的愈傷組織及小鱗莖突起(不定芽)；MS基本培養(yǎng)液(同上)6-芐基氨基嘌呤 2.0mg/L萘乙酸 0.1mg/L蔗糖 30000mg/L瓊脂 5500mg/L3、增殖培養(yǎng)在無菌條件下，將上述誘導出的愈傷組織及不定芽分切后轉入單位為mg/L的下列增殖培養(yǎng)基中，在溫度為26±2℃，光照時間10小時/天，光照強度2000Lx的條件下，培養(yǎng)15天，使小鱗莖增殖，并抽出葉片，成為幼苗MS基本培養(yǎng)液(同上)6-芐基氨基嘌呤 1.0mg/L萘乙酸 0.2mg/L蔗糖 30000mg/L瓊脂 5500mg/L上述2、3步驟中培養(yǎng)基的制作是將培養(yǎng)基各成分混勻后再進行分裝、不透氣膜封口，經110℃，12分鐘高壓滅菌，取出后在潔凈的房間內冷卻待用；4、光獨立生根培養(yǎng)在常規(guī)室溫下，將增殖培養(yǎng)20天，具1對葉以上，高2cm左右的幼芽切下，插入下列培養(yǎng)基中MS改良培養(yǎng)液(同上)蛭石∶溶液＝2∶1培養(yǎng)基中的培養(yǎng)液和蛭石需分別滅菌，將培養(yǎng)液分裝到玻璃瓶中，封口，經125℃，10分鐘高壓滅菌，冷卻待用；蛭石噴水后分裝，包扎封口后經110℃，20分鐘高壓滅菌，冷卻待用。在使用時，將培養(yǎng)液與蛭石以1∶2的比例混勻，鋪在育苗盤中，厚度3～4cm；光獨立培養(yǎng)過程及使用的培養(yǎng)容器、培養(yǎng)條件、培養(yǎng)出來的種苗處理等均與實施例1相同。
MS基本培養(yǎng)液成分見下表

MS改良培養(yǎng)液成分見下表

本發(fā)明經試驗研究，其結果報告如下一、組培快繁技術1.供試材料東方百合雜種系(Oriental hybrids)品種“Siberia”、“Sorbonne”；亞洲百合雜種系(Asiatic hybrids)品種“Toro”、“Elle”；2.試驗方法同實施例1；3.試驗結果3.1不同激素配比對外植體誘導愈傷組織及不定芽形態(tài)發(fā)生的影響在供試的6個培養(yǎng)基配比處理中，總體誘導率在70％以上。從表1可見，BA濃度高時誘導愈傷組織的效果好，NAA與BA的濃度比例相當時，有利于不定芽的產生。從總體上來看，在愈傷組織的誘導上處理2的誘導頻率最高，達到87.5％，其次為處理4，誘導頻率為73.7％；在不定芽的誘導上，處理1的誘導頻率最高，為82.4％；NAA濃度較高時(0.5mg/L)及BA濃度較低時有少量根的再生(11.8％)。
表1 不同激素配比對誘導率及形態(tài)發(fā)生的影響

表2 不同激素濃度對不定芽增殖和分化的影響

3.2愈傷組織和不定芽的增殖與分化，愈傷組織及不定芽在不同濃度培養(yǎng)基中的生長情況見表2(供試材料為亞洲百合“Toro”)。
表3 光獨立培養(yǎng)環(huán)境控制因子對切花百合培養(yǎng)效果的影響

(注種苗質量評價依照百合組培苗出瓶標準(內定)++++為好；+++為良；++為中；+為差)
從表3可見，最適宜不定芽增殖及正常分化的培養(yǎng)基配比為BA0.5～1.0mg/L+NAA0.2～0.5mg/L，激素的適用范圍較寬。但在規(guī)?；a中，主要以種苗的質量為追求目標，要求種苗的低(無)變異性。較高濃度的BA可以提高增殖系數，但不定芽的分化呈叢生狀態(tài)，生長多不正常，因此在不同的生產階段，宜適當控制激素的濃度，在保證增殖率的同時保證種苗的質量。
二、光獨立生根培養(yǎng)1.供試材料增殖培養(yǎng)20天的百合增殖瓶苗，具1對葉以上，高2cm左右的無根單株，品種為東方百合品種“Siberia”和“Sorbonne”。
2.方法在常規(guī)工作室內(無需超凈工作臺)將供試材料插入育苗盤，對以下幾個培養(yǎng)因子進行試驗研究(1)培養(yǎng)基MS大量元素+NAA0；MS大量元素+NAA0.1mg/L；MS大量元素+NAA0.5mg/L；pH均為5.8。(2)通氣初始時間第3天；第6天；第9天。每天通氣時間與光照時間同步。(3)CO2濃度600-800mg/L；800-1000mg/L；1100-1500mg/L。均在箱式容器內培養(yǎng)；培養(yǎng)基質蛭石，不加糖；整個培養(yǎng)期間室內溫度20±2℃，光照12小時/天，光照條件2000-2500Lx(兩只日光燈)。
對照培養(yǎng)基MS+NAA 0.5mg/L+蔗糖3％+瓊脂0.6％，pH5.8；培養(yǎng)瓶內培養(yǎng)，培養(yǎng)室溫度25±2℃，光照12小時/天，光照強度2000Lx(兩只日光燈)；每處理100株。觀察不同處理方法材料的生長情況，20天后統(tǒng)計植株平均根數，平均根長，大于2cm的平均葉片數，平均生根率。
3.試驗結果3.1光獨立培養(yǎng)中培養(yǎng)基NAA濃度對植株生長的影響百合在培養(yǎng)基質中8天開始有根的萌發(fā)，植株挺立，長勢健壯。從表3可見，培養(yǎng)基質中一定濃度的NAA對百合的生根有促進作用。在適宜的條件下，生根率達90％以上。當NAA濃度為0.1mg/L時，生根率最高，達97％，且根系正常；當NAA濃度為0.5mg/L時，生根率略低，但平均生根數和根系長度兩項指標均比濃度為0.1mg/L時略高。在組培種苗的生產中，小植株的生根率是較為重要的因素，而且激素濃度的使用提倡在保證種苗質量的前提下采用較低濃度，所以培養(yǎng)基質中的NAA保持在0.1mg/L是較為適宜的。
3.2光獨立培養(yǎng)中通氣初始時間對植株生長的影響百合無根苗進入光獨立培養(yǎng)系統(tǒng)當天計為第0天。由于培養(yǎng)基質中不加常規(guī)組培中作為植株異養(yǎng)生長碳源的糖，植株依靠培養(yǎng)箱中的CO2混合氣體進行自養(yǎng)生長，所以在照明開始后，培養(yǎng)箱內的CO2濃度迅速下降，初始的通氣時間即CO2氣體的補給時間，直接影響植株的生長。初始的通氣時間同時關系到培養(yǎng)箱中的濕度控制，是光獨立培養(yǎng)中較為關鍵的控制因子。從表3可見，最佳的初始通氣時間為培養(yǎng)的第6天。較早通氣(第0或第3天)的培養(yǎng)箱，小植株在培養(yǎng)后期普遍出現葉片發(fā)黃，植株生根率低等現象，培養(yǎng)的種苗基本無商品價值。這可能是因為初栽的小植株長勢較弱，進行光合作用的能力不強，較高的CO2濃度造成植株的生理代謝異常。同時氣體流動導致培養(yǎng)箱內的濕度不易保持，小植株在培養(yǎng)過程中容易萎焉；通氣時間較晚(第9天)的培養(yǎng)箱，小植株的各項觀察指標均較低，植株生長緩慢，種苗質量明顯較差。這可能與CO2混合氣體的補給不及時，小植株的光合成受到抑制有關。
3.3光獨立培養(yǎng)中CO2濃度對植株生長的影響CO2濃度對小植株的生根及生長有一定的影響。在保證適宜初始通氣時間的前提下，800-1000mg/L濃度的CO2最適于植株的生根及正常生長，在不同處理中，其生根率及種苗狀況均優(yōu)于其它濃度的處理。較高濃度的CO2可能會促進植株的光合作用，提高種苗的質量，但試驗結果表明，較高濃度的CO2并未取得預想的較好效果。這可能是因為，在同一個光獨立培養(yǎng)系統(tǒng)中，人工補加的CO2氣體通過強制性通氣系統(tǒng)進入箱式容器內，其濃度由限制鋼瓶CO2氣體流速及各層的流量計來調控，在加大CO2濃度的同時也加大了通氣量，在培養(yǎng)初期降低了培養(yǎng)箱內的濕度，影響了小植株的生長。另外，過高的CO2濃度(超過1100mg/L)，超過了小植株生長的CO2飽和點，可能引起細胞原生質中毒，或迫使植物葉片的氣孔關閉，一定程度上抑制了光合作用。在利用光獨立培養(yǎng)技術進行百合組培種苗生產時，800-1000mg/L濃度的CO2已可滿足組培小植株正常生長光合作用的需求。
三、光獨立生根培養(yǎng)與常規(guī)生根培養(yǎng)成苗率的比較從表4可見，與傳統(tǒng)培養(yǎng)方法比較，光獨立培養(yǎng)的種苗生根率達到95％以上，且根系發(fā)達呈白色，對照植株根系生長相對緩慢，根短且呈黃黑色；植株健壯，過渡成活率達92.7％，較對照的成活率75.3％提高了17.4％；生根苗質量顯著優(yōu)于常規(guī)組培生根苗。由于減少了由高溫、弱光等引起的組培種苗生理及形態(tài)異常，并減少了植株生長調節(jié)劑的使用，植株基本無畸形、變異等情況發(fā)生，植株生長速度快，生長發(fā)育均勻，在工廠化組培種苗的生產中可以減化或省略馴化過程，一次性成苗，提高了種苗質量，更易于大田種植的馴化。在生產成本上具有明顯的優(yōu)勢。
表4 常規(guī)與無糖組培苗成苗率的比較內容常規(guī)組培技術 無糖組培技術種苗生根率(％) 86 96一級過渡成活率(％) 83.4 一次成苗二級過渡成活率(％) 90.3最終成活率(％) 75.3 92.權利要求
1.一種切花百合組培種苗一次成苗的方法，其特征在于它采用下列步驟A、取材及滅菌將準備接種的鱗莖在4～5℃溫度下處理6～8周，清洗，剝去鱗莖外皮及外部2～3層鱗片，用75％的酒精浸泡30～60秒，然后在0.1～0.2％的升汞(Hgcl2)溶液中處理15～20分鐘，1～2％的次氯酸鈉溶液中處理10～15分鐘，無菌水洗3～4次后，進行切塊或段接種B、誘導培養(yǎng)在無菌條件下，將處理好的外植體切塊或段接種到下列誘導培養(yǎng)基中培養(yǎng)20～25天，使切口產生白色的愈傷組織及小鱗莖突起即不定芽MS基本培養(yǎng)液6-芐基氨基嘌呤(6-BA)10～2.0mg/L萘乙酸(NAA) 0.1～0.5mg/L蔗糖30000mg/L瓊脂5500mg/LC、增殖培養(yǎng)在無菌條件下，將上述誘導出的愈傷組織及不定芽分切后轉入下列增殖培養(yǎng)基中，在溫度為26±2℃，光照時間10～12小時/天，光照強度1500～2000Lx的條件下，培養(yǎng)15～20天，使小鱗莖增殖，并抽出葉片，成為幼苗MS基本培養(yǎng)液6-芐基氨基嘌呤(6-BA)0.5～1.0mg/L萘乙酸(NAA) 0.2～0.5mg/L蔗糖30000mg/L瓊脂5500mg/LD、光獨立生根培養(yǎng)在常規(guī)室溫下，將增殖培養(yǎng)20天，具1對葉以上，高2.0cm的幼芽切下，插入下列培養(yǎng)基中MS改良培養(yǎng)液萘乙酸(NAA) 0～0.1mg/L蛭石∶培養(yǎng)液 2～3∶1通入氣流量為1-5L/min的CO2混合氣體，并保持CO2濃度在600～1000ppm，相對濕度80-90％，進行光獨立生根培養(yǎng)，培養(yǎng)20天后可得切花百合種苗。
2.根據權利要求1所述的方法，其特征在于所述光獨立培養(yǎng)的步驟是①種苗進入光獨立培養(yǎng)的0～5天，保持相對濕度在95％以上；②6～10天開始通入氣流量1L/min的CO2混合氣體，CO2濃度保持在600～800ppm，相對濕度85-90％；③11～15天，氣流量加至3L/min，CO2濃度保持在800～1000ppm，相對濕度在80-85％；④出苗前期，空氣流量可調至3～5L/min，20天后出室外繼續(xù)培養(yǎng)，20～30天后成苗；培養(yǎng)期間光照強度2000～2500Lx(兩只日光燈)，每天光照12小時，培養(yǎng)室溫度保持20±2℃。
全文摘要
本發(fā)明提供一種切花百合組培種苗一次成苗的方法，它采用取材及滅菌、誘導培養(yǎng)、增殖培養(yǎng)、光獨立生根培養(yǎng)的步驟，在相對應的各培養(yǎng)基中進行組培快繁增殖，用光獨立培養(yǎng)技術對分切的單株進行生根培養(yǎng)。本發(fā)明能在培養(yǎng)過程中有效避免污染的發(fā)生，減少移苗次數，而且在工廠化組培種苗的生產中簡化了組培技術的培養(yǎng)程序，一次成苗，成苗率高，同時由于生產的種苗在質進行組量及生產成本上具有明顯的優(yōu)勢，在花卉種苗的規(guī)模化生產中具有廣闊的應用前景。
文檔編號A01H4/00GK1613297SQ200310110910
公開日2005年5月11日 申請日期2003年11月7日 優(yōu)先權日2003年11月7日
發(fā)明者屈云慧, 熊麗, 吳麗芳, 楊春梅, 張素芳, 蔣亞蓮 申請人:云南省農業(yè)科學院園藝作物研究所