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      一種生物發(fā)酵提純他克莫司的方法

      文檔序號(hào):608759閱讀:383來(lái)源:國(guó)知局
      專利名稱:一種生物發(fā)酵提純他克莫司的方法
      技術(shù)領(lǐng)域
      本發(fā)明屬于生物工程領(lǐng)域,具體涉及生物發(fā)酵,生物制藥,發(fā)酵產(chǎn)物的提取、 分離和純化方法,特別涉及一種生物發(fā)酵提純他克莫司的方法。
      背景技術(shù)
      他克莫司(tacrolimus, FK506)是由日本藤澤藥品工業(yè)公司探索研究所于 1984年自日本筑波山土壤中分離的筑波鏈霉菌(S&印towj;cM ) No.9993的發(fā)酵液中提取得到的一種新型二十三元大環(huán)內(nèi)酯聚酮免疫抑制劑。臨 床研究表明,其免疫抑制活性是環(huán)孢菌素A的10 100倍。目前已廣泛應(yīng)用于肝 臟、骨髓移植、對(duì)其他藥物耐藥腎移植的排斥防治、白塞氏病、變應(yīng)性皮炎、銀 屑病、魚(yú)鱗病、斑禿、類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎、牛皮癬、多發(fā)性硬化病、糖尿病等多種 自身免疫疾病的治療。自在中國(guó)上市的短短時(shí)間內(nèi),市場(chǎng)份額迅速上升,已成為 肝臟及腎臟移植后排斥反應(yīng)的臨床一線藥物。
      他克莫司的合成方法主要有①生物發(fā)酵法。主要由筑波鏈霉菌 C,ow少t^加A:w6aem7i)、 吸zK鏈霉菌(5fr,omycey/z少gmsrc;pz'cm)生物發(fā) 酵得到。KinoT.等1984年首次從筑波鏈霉菌中分離出他克莫司。②有機(jī)合成法。 Todd K. Jones等1990年在歐洲專利EP378, 318中首次公布了他克莫司的有機(jī)合 成方法。由于他克莫司是二十三元大環(huán)內(nèi)酯,有機(jī)合成過(guò)程中工藝步驟繁多,反 應(yīng)條件苛刻,合成成本昂貴。因此主要用生物發(fā)酵法制備他克莫司。
      國(guó)內(nèi)在他克莫司提純方面的研究起步較晚。從90年代中后期華北制藥和華 東制藥對(duì)他克莫司產(chǎn)生菌進(jìn)行了初步誘變選育,上海農(nóng)藥所公開(kāi)了一株新的他克 莫司產(chǎn)生菌及生產(chǎn)方法,發(fā)酵產(chǎn)物他克莫司的平均濃度為150ug/mL,但對(duì)于如 何分離提取產(chǎn)物并未具體說(shuō)明。國(guó)外分離提純他克莫司主要有兩種方法①分別 加工菌絲體和發(fā)酵液,如KinoT. "a/. J. Antibiot. 1987, 40, 1249-1255中所述。② 利用疏水性溶劑直接萃取發(fā)酵液,如專利WO03/68980中所述。由于發(fā)酵液中存 在多種他克莫司類似物,生物效價(jià)不高,并且存在于菌絲體和發(fā)酵液之中,有效 的分離提純他克莫司很有難度,使得國(guó)內(nèi)在發(fā)酵液中提純他克莫司的主要技術(shù)研 究方面尚屬空白。

      發(fā)明內(nèi)容
      本發(fā)明的目的在于針對(duì)上述現(xiàn)有技術(shù)中存在的缺陷或不足,提供一種采用生 物發(fā)酵提純他克莫司的方法。本發(fā)明的技術(shù)方案為利用自主篩選鑒定的鏈霉菌S加/^mj;cM sp. NJYH2618,通過(guò)微生物發(fā)酵培養(yǎng)出含他克莫司的發(fā)酵液,他克莫司發(fā)酵液經(jīng)種 子的培養(yǎng)、接種前準(zhǔn)備及接種、多階段溶氧控制、分批補(bǔ)料發(fā)酵階段得到,具體 培養(yǎng)方法見(jiàn)本發(fā)明人申請(qǐng)的專利(申請(qǐng)?zhí)枮?00810234807.6);并采用菌絲體抽 提、發(fā)酵液萃取、大孔樹(shù)脂吸附、硅膠柱層析及冷卻結(jié)晶技術(shù)得到他克莫司純品。 本發(fā)明操作方便、工藝簡(jiǎn)單、成本低廉,適合工業(yè)化生產(chǎn)。
      本發(fā)明的具體技術(shù)方案 一種生物發(fā)酵提純他克莫司的方法,其特征在于利 用自主篩選鑒定的鏈霉菌S加; tofl^cM sp. NJYH2618,通過(guò)微生物發(fā)酵培養(yǎng)出含 他克莫司的發(fā)酵液,采用菌絲體抽提、發(fā)酵液萃取、大孔樹(shù)脂吸附、硅膠柱層析 及冷卻結(jié)晶技術(shù)得到他克莫司純品。
      具體步驟如下-
      1) 用發(fā)酵過(guò)濾后的菌絲體5 10倍體積的有機(jī)溶劑抽提2 3次鏈霉菌S^^om;;cM sp. NJYH2618發(fā)酵過(guò)濾后的菌絲體,得菌絲體抽提液并分離殘留物;
      2) 用發(fā)酵上清液1~2倍體積的疏水性溶劑萃取鏈霉菌泣r印tom;;cM sp. NJYH2618 發(fā)酵上清液,控制溶液溫度和pH值,得疏水性萃取液;
      3) 合并菌絲體抽提液和疏水性萃取液得合并液,合并液經(jīng)超濾膜過(guò)濾后,進(jìn)入 裝有大孔樹(shù)脂的床層進(jìn)行吸附,其中大孔樹(shù)脂體積與合并液體積比為1: 5~1: 20,用l-4倍大孔樹(shù)脂體積的有機(jī)溶劑迸行沖洗,并用1/3~1倍大孔樹(shù)脂體積的 有機(jī)溶劑進(jìn)行解吸,控制溶液溫度和pH值,得解吸液;
      4) 真空濃縮解吸液,并用K4倍解吸液體積的乙酸乙酯或丙酮提取解吸液,無(wú) 水硫酸鈉或無(wú)水硫酸鎂脫水,再次真空濃縮;將真空濃縮后的濃縮液經(jīng)與濃縮液 體積比為l: 10~1: 20的甲醇-水混合溶液溶解,在反相硅膠柱中用和濃縮液體 積比為l: 2~1: 7的硅膠進(jìn)行層析分離,用2~3倍硅膠體積的洗脫劑進(jìn)行洗脫, 收集含他克莫司的活性組分;
      5) 真空濃縮含他克莫司的活性組分,并將活性組分溶于2 5倍體積的結(jié)晶溶劑 中冷卻結(jié)晶得到他克莫司。
      上述的步驟l)中有機(jī)溶劑為丙酮、乙酸乙酯或甲醇。上述的步驟2)中疏 水性溶劑為丙酮、乙酸乙酯或甲苯。步驟3)中沖洗的有機(jī)溶劑為體積濃度 45~55%丙酮或甲醇;解吸的有機(jī)溶劑為體積濃度70~80%丙酮或甲醇;步驟4) 中洗脫劑為體積濃度50~75%甲醇或乙醇;上述的步驟5)中結(jié)晶溶劑為乙腈、 甲醇或乙醇。
      上述步驟2)中萃取過(guò)程中控制溶液溫度為15~35°C, pH6-12;步驟3)中沖 洗和解吸過(guò)程中控制溶液溫度為15~35°C, pH6-12;步驟4)中用乙酸乙酯或丙 酮提取解吸液的次數(shù)為2-3次;混合溶液中甲醇和水的體積比為1: 1.5;步驟5)中結(jié)晶溫度為5~25°C,結(jié)晶時(shí)間為15~60小時(shí)。
      所述的鏈霉菌為本實(shí)驗(yàn)室自主篩選,其分類命名為鏈霉菌,菌種的拉丁學(xué)名 是&r印to/^ceysp.,分類株NJYH2618,并保藏于中國(guó)普通微生物菌種保藏管 理中心,其簡(jiǎn)稱為CGMCC,登記入冊(cè)的編號(hào)是CGMCCNo.2519,保藏時(shí)間是 2008年5月26日(見(jiàn)本發(fā)明人申請(qǐng)的專利,申請(qǐng)?zhí)枮?00810234807.6)。
      有益效果
      釆用本發(fā)明的生物發(fā)酵提純他克莫司的方法,利用自主篩選鑒定的鏈霉菌 5^印to,c^sp.NJYH2618,通過(guò)微生物發(fā)酵培養(yǎng)出含他克莫司的發(fā)酵液,采用 菌絲體抽提、發(fā)酵液萃取、大孔樹(shù)脂吸附、硅膠柱層析及冷卻結(jié)晶技術(shù)得到他克 莫司純品,純度〉98%,收率83%~93%。本發(fā)明操作方便、工藝簡(jiǎn)單、成本低廉, 適合工業(yè)化生產(chǎn)。
      具體實(shí)施例方式
      本發(fā)明提供一種生物發(fā)酵提純他克莫司的方法,下面列舉實(shí)施例予以進(jìn)一步 說(shuō)明。本發(fā)明實(shí)施例所用的發(fā)酵液見(jiàn)本發(fā)明人申請(qǐng)的專利(申請(qǐng)?zhí)枮?200810234807.6)實(shí)施例3所發(fā)酵得到的發(fā)酵液,并將發(fā)酵液進(jìn)行過(guò)濾,得發(fā)酵 過(guò)濾后的菌絲體和發(fā)酵上清液; 實(shí)例1:
      1) 用5倍體積的丙酮抽提2次鏈霉菌Sf^^ow少c^ sp. NJYH2618發(fā)酵過(guò)濾后的 菌絲體,得菌絲體抽提液并分離殘留物;
      2) 用等體積的乙酸乙酯萃取鏈霉菌S/w; tow少c^ sp. NJYH2618發(fā)酵上清液,溫 度為25'C, pH7.5,得疏水性萃取液;
      3) 合并菌絲體抽提液和疏水性萃取液得合并液,合并液經(jīng)截留分子量為1000 的聚醚砜超濾膜,去除蛋白質(zhì)和多糖等大分子物質(zhì),再進(jìn)入裝有D101大孔樹(shù)脂 的床層進(jìn)行吸附,其中大孔樹(shù)脂體積與合并液體積比為1: 5,用2倍大孔樹(shù)脂 體積的體積濃度45%丙酮沖洗,并用1/3倍大孔樹(shù)脂體積的體積濃度70%丙酮解 吸,溫度為25。C, pH7.5,得解吸液;
      4) 真空濃縮解吸液并用2倍體積的乙酸乙酯提取2次解吸液,無(wú)水硫酸鈉脫水, 再次真空濃縮;將濃縮后的濃縮液經(jīng)與濃縮體積比為1: 10的甲醇-水(l: 1, V/V)溶解,用硅膠-提取液(1: 2, V/V)的反相硅膠柱層析分離,2倍硅膠體 積的體積濃度50%甲醇作為洗脫劑,結(jié)合高效液相檢測(cè)收集含他克莫司的活性組 分;
      5) 真空濃縮高效液相檢測(cè)的活性組分,將活性組分溶于2倍體積的乙腈中,冷 卻于1(TC下保持約24小時(shí),純度>98%,收率85%。實(shí)例2:
      1) 用8倍體積的丙酮抽提2次鏈霉菌S^戶tomj;cM sp. NJYH2618發(fā)酵過(guò)濾后的 菌絲體,得菌絲體抽提液并分離殘留物;
      2) 用1.5倍體積的丙酮萃取鏈霉菌5^印tow少CM.sp.NJYH2618發(fā)酵上清液,溫 度為25。C, pH8.0,得疏水性萃取液;
      3) 合并菌絲體抽提液和疏水性萃取液得合并液,合并液經(jīng)截留分子量為1000 的聚醚砜超濾膜,去除蛋白質(zhì)和多糖等大分子物質(zhì),再進(jìn)入裝有SP207大孔樹(shù) 脂的床層進(jìn)行吸附,其中大孔樹(shù)脂體積與合并液體積比為1: 10,同2倍大孔樹(shù) 脂體積的體積濃度50%甲醇沖洗,并用1/2倍大孔樹(shù)脂體積的體積濃度75%甲醇 解吸,溫度為25"C, pH8.0,得解吸液;
      4) 真空濃縮解吸液并用3倍體積的乙酸乙酯提取解吸液2次,無(wú)水硫酸鎂脫水, 再次真空濃縮;將濃縮后的濃縮液經(jīng)與濃縮體積比為1: 15的甲醇-水(l: 1, V/V)溶解,用硅膠-提取液(1: 5, V/V)的反相硅膠柱層析分離,2.5倍硅膠 體積的體積濃度60%甲醇作為洗脫劑,結(jié)合高效液相檢測(cè)收集含他克莫司的活性 組分。
      5) 真空濃縮高效液相檢測(cè)的活性組分,將活性組分溶于3倍體積的甲醇中,冷 卻于5。C溫度下保持約20小時(shí),純度>98%,收率92%。
      實(shí)例3:
      1) 用10倍體積的乙酸乙酯抽提2次鏈霉菌S/r印tomyc^ sp. NJYH2618發(fā)酵過(guò)濾 后的菌絲體,得菌絲體抽提液并分離殘留物;
      2) 用2倍體積的丙酮萃取鏈霉菌S加; toff^c"sp.NJYH2618發(fā)酵上清液,溫度 為25'C, pH7.0,得疏水性萃取液;
      3) 合并菌絲體抽提液和疏水性萃取液得合并液,合并液經(jīng)截留分子量為1000 的聚醚砜超濾膜,去除蛋白質(zhì)和多糖等大分子物質(zhì),再進(jìn)入裝有D315大孔樹(shù)脂 的床層進(jìn)行吸附,其中大孔樹(shù)脂體積與合并液體積比為1: 20,用4倍大孔樹(shù)脂 體積的體積濃度55%丙酮沖洗,并用與大孔樹(shù)脂體積的相同體積濃度80%丙酮 解吸,溫度為25。C, pH7.0,得解吸液;
      4) 真空濃縮解吸液并用4倍體積的丙酮提取3次解吸液,無(wú)水硫酸鈉脫水,再 次真空濃縮;將濃縮后的濃縮液經(jīng)與濃縮液體積比為1: 20的甲醇-水(l: 1.5, V/V)溶解,用硅膠-提取液(1: 7, V/V)的反相硅膠柱層析分離,3倍硅膠體 積的體積濃度75%乙醇作為洗脫劑,結(jié)合高效液相檢測(cè)收集含他克莫司的活性組 分;
      5) 真空濃縮高效液相檢測(cè)的活性組分,將活性組分溶于5倍體積的乙醇中'冷 卻于15。C溫度下保持約48小時(shí),純度>98%'收率88%。
      權(quán)利要求
      1. 一種生物發(fā)酵提純他克莫司的方法,其特征在于利用自主篩選鑒定的鏈霉菌Streptomyces sp.NJYH2618,通過(guò)微生物發(fā)酵培養(yǎng)出含他克莫司的發(fā)酵液,采用菌絲體抽提、發(fā)酵液萃取、大孔樹(shù)脂吸附、硅膠柱層析及冷卻結(jié)晶技術(shù)得到他克莫司純品。
      2. 根據(jù)權(quán)利要求1所述的方法,具體步驟如下-1)用發(fā)酵過(guò)濾后的菌絲體5~10倍體積的有機(jī)溶劑抽提2 3次鏈霉菌S/re;^w;;c^ sp.NJYH2618發(fā)酵過(guò)濾后的菌絲體,得菌絲體抽提液并分離殘留物;2) 用發(fā)酵上清液1~2倍體積的疏水性溶劑萃取鏈霉菌Srrwtom^^ sp. NJYH2618 發(fā)酵上清液,控制溶液溫度和pH值,得疏水性萃取液;3) 合并菌絲體抽提液和疏水性萃取液得合并液,合并液經(jīng)超濾膜過(guò)濾后,進(jìn)入裝有大孔樹(shù)脂的床層進(jìn)行吸附,其中大孔樹(shù)脂體積與合并液體積比為1: 5~1:20,用1 4倍大孔樹(shù)脂體積的有機(jī)溶劑進(jìn)行沖洗,并用1/3~1倍大孔樹(shù)脂體積的有機(jī)溶劑進(jìn)行解吸,控制溶液溫度和pH值,得解吸液;4) 真空濃縮解吸液,并用1 4倍解吸液體積的乙酸乙酯或丙酮提取解吸液,無(wú) 水硫酸鈉或無(wú)水硫酸鎂脫水,再次真空濃縮;將真空濃縮后的濃縮液經(jīng)與濃縮液 體積比為l: 10 1: 20的甲醇-水混合溶液溶解,在反相硅膠柱中用和濃縮液體 積比為l: 2~1: 7的硅膠進(jìn)行層析分離,用2 3倍硅膠體積的洗脫劑進(jìn)行洗脫, 收集含他克莫司的活性組分;5) 真空濃縮含他克莫司的活性組分,并將活性組分溶于2 5倍體積的結(jié)晶溶劑 中冷卻結(jié)晶得到他克莫司。
      3. 根據(jù)權(quán)利要求2所述的方法,其特征在于所述的步驟l)中有機(jī)溶劑為丙酮、 乙酸乙酯或甲醇;步驟3)中沖洗的有機(jī)溶劑為體積濃度45~55%丙酮或甲醇; 解吸的有機(jī)溶劑為體積濃度70~80%丙酮或甲醇;步驟4)中洗脫劑為體積濃度 50~75%甲醇或乙醇。
      4. 根據(jù)權(quán)利要求2所述的方法,其特征在于所述的步驟2)中疏水性溶劑為丙酮、 乙酸乙酯或甲苯。
      5. 根據(jù)權(quán)利要求2所述的方法,其特征在于所述的步驟5)中結(jié)晶溶劑為乙腈、 甲醇或乙醇。
      6. 根據(jù)權(quán)利要求2所述的方法,其特征在于步驟2)中萃取過(guò)程中控制溶液溫度 為15 35。C, pH6-12;步驟3)沖洗和解吸過(guò)程中控制溶液溫度為15~35°C, pH 6-12;步驟4)中用乙酸乙酯或丙酮提取解吸液的次數(shù)為2-3次;甲醇和水混合 溶液中甲醇和水的體積比為1: 1.5;步驟5)中結(jié)晶溫度為5~25°C,結(jié)晶 時(shí)間為15~60小時(shí)。
      全文摘要
      本發(fā)明公開(kāi)了一種采用生物發(fā)酵提純他克莫司的方法,利用自主篩選鑒定的鏈霉菌Streptomyces sp.NJYH2618,通過(guò)微生物發(fā)酵培養(yǎng)出含他克莫司的發(fā)酵液,采用菌絲體抽提、發(fā)酵液萃取、大孔樹(shù)脂吸附、硅膠柱層析及冷卻結(jié)晶技術(shù)得到他克莫司純品,純度>98%。本發(fā)明操作方便、工藝簡(jiǎn)單、成本低廉,適合工業(yè)化生產(chǎn)。
      文檔編號(hào)C12P17/18GK101481715SQ200910029010
      公開(kāi)日2009年7月15日 申請(qǐng)日期2009年1月20日 優(yōu)先權(quán)日2009年1月20日
      發(fā)明者楊文革, 胡永紅, 林 陳 申請(qǐng)人:南京工業(yè)大學(xué)
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