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      快速純化及制備細菌pcr反應(yīng)模板的方法

      文檔序號:603848閱讀:799來源:國知局
      專利名稱:快速純化及制備細菌pcr反應(yīng)模板的方法
      技術(shù)領(lǐng)域
      本發(fā)明屬于分子生物學領(lǐng)域,尤其涉及了一種快速純化及制備細菌PCR反應(yīng)模板的方法。
      背景技術(shù)
      PCR技術(shù)已廣泛應(yīng)用于病原菌的診斷,具有靈敏度高、特異性強的優(yōu)點。自然標本中因含有大量的雜菌及異物(包括PCR反應(yīng)抑制物),對自然標本中特定病原菌的檢測,一般先使用針對該病原菌的特定培養(yǎng)液進行增菌培養(yǎng),或使用平板(鑒別)培養(yǎng)基進行培養(yǎng),然后取增菌液或挑取平板培養(yǎng)基中疑似的病原菌菌落,制備PCR反應(yīng)模板,進行PCR檢測。由于自然標本中存在PCR反應(yīng)抑制物,因此不宜省略增菌培養(yǎng)或鑒別培養(yǎng)的步驟。在整個檢測過程中,增菌培養(yǎng)及平板(鑒別)培養(yǎng)耗時費力。本研究以磁性細菌由來的磁珠(bacterial magnetic particles, BMPs)為載體 [K2],合成免疫BMPs[2、3],使用免疫BMPs,直接對糞便標本中的大腸桿菌0157進行捕獲、分離和洗凈,不進行增菌培養(yǎng)及平板(鑒別)培養(yǎng),探討快速純化及制備細菌PCR反應(yīng)模板的方法。使用免疫BMPs快速純化細菌PCR反應(yīng)模板,旨在縮短檢測時間,去除自然標本中存在的PCR反應(yīng)抑制物等影響檢測的成分。同時,也可以考慮應(yīng)用于某些在人工培養(yǎng)基中培養(yǎng)困難的病原菌的PCR反應(yīng)模板的制備。

      發(fā)明內(nèi)容
      本發(fā)明的目的是提供一種操作簡單,縮短了檢測時間,利用免疫BMPs捕獲自然標本(糞便)中的目標病原菌,通過分離和洗凈,去除標本中存在的PCR反應(yīng)抑制物等影響因素,可省略增菌培養(yǎng)及鑒別培養(yǎng),快速純化目標病原菌的PCR反應(yīng)模板的方法。為了解決上述技術(shù)問題,本發(fā)明通過下述技術(shù)方案得以解決 快速純化及制備細菌PCR反應(yīng)模板的方法,包括以下步驟
      步驟a 牛糞便標本中添加PBS溶液5 mL,混勻,1000 r/min離心30 s,去除大顆粒的雜質(zhì);
      步驟b 向含菌的牛糞稀釋液中添加免疫BMPs 0. 3 mg,混合均勻,反應(yīng)30 min后進行磁性誘導,從牛糞中分離出磁性凝集物;
      步驟c 分離出來的磁性凝集物使用PBS溶液分散清洗3次,清洗后,添加滅菌雙蒸水 100 μ L,分散,重新振蕩懸浮后至95°C加熱5 min ;再經(jīng)12000 r/min離心5 min ; 步驟d 回收上清液,制得PCR反應(yīng)模板。作為優(yōu)選,所述的PBS溶液的ph值為6. 8。作為優(yōu)選,所述的磁性誘導采用普通磁石進行誘導。作為優(yōu)選,所述的牛糞便標本中的大腸桿菌0157濃度為1 IO4 cfu/g。BMI3S系穩(wěn)定的單磁疇晶體,不同于一般合成磁珠的多磁區(qū)構(gòu)造,在溶液中分散性能明顯優(yōu)于普通鐵氧體磁珠,反應(yīng)表面積相對穩(wěn)定,檢測的敏感性及穩(wěn)定性較好[1~2]。另外,通常在人工合成的無機磁珠表面進行生物包被或修飾后穩(wěn)定性欠佳,而BMPs能改善這一現(xiàn)象,大量實驗結(jié)果均表明修飾后免疫BMPs的穩(wěn)定性及可操作性良好[2、4、5]。本研究的結(jié)果表明,對于大腸桿菌0157濃度為1 IO4 cfu/g的牛糞便標本,使用免疫BMPs處理后制備PCR反應(yīng)模板,PCR檢測結(jié)果,與通過增菌及平板培養(yǎng)后制備PCR反應(yīng)模板,檢測結(jié)果一致。表明使用免疫BMPs,可以直接對糞便標本中的大腸桿菌0157進行有效捕獲、分離和洗凈,可省略常規(guī)的增菌培養(yǎng)及平板(鑒別)培養(yǎng),快速純化細菌的PCR反應(yīng)模板。在大腸桿菌0157濃度低于IO3 cfu/g時,經(jīng)免疫BMPs處理后制備PCR反應(yīng)模板、 及通過增菌和平板培養(yǎng)后制備PCR反應(yīng)模板,比糞便標本直接制備PCR反應(yīng)模板,PCR檢測的敏感性明顯增高。美國農(nóng)業(yè)部動物排泄物病源菌研究實驗室的Shelton等[6]報告了一種快速定量及確定自然水體和人工水體中存在的大腸桿菌0157的方法,Shelton等的方法是將大腸桿菌0157的單克隆抗體吸附到人工合成的磁顆粒上,使其與病菌結(jié)合,磁性分離后進行培養(yǎng)檢測。這種方法可以檢出100 mL水中含有的數(shù)個大腸桿菌0157,這一方法有助于衛(wèi)生機構(gòu)對公共水上場所進行檢查。檢測糞便等非水溶液的樣品標本,在對病原菌的核酸提取過程中,糞便等自然標本中的鹽離子、尿素、血紅素等諸多混合物共同沉淀其中,成為下一步PCR反應(yīng)的抑制因素。因此,如何去除自然標本中PCR反應(yīng)的抑制物,是有效制備DNA模板的關(guān)鍵之一[7]。本研究采用免疫磁分離法,在分離牛糞標本中的大腸桿菌0157時,同時一并去除牛糞標本中可能存在的其他混合物。免疫磁分離法的主要特點是利用外磁場(普通磁石)對標的物進行誘導、分離,還可以對標的物進行清洗,去除自然標本中存在的,包括PCR反應(yīng)抑制物在內(nèi)的影響檢測結(jié)果的各種成分。Padhye等[8]用大腸桿菌0157單克隆抗體研究大腸桿菌0157以外的交叉反應(yīng), 未發(fā)現(xiàn)與沙門氏菌、結(jié)腸炎耶氏森菌、志賀氏菌和肺炎克雷伯民菌等有交叉反應(yīng),提示單克隆抗體對大腸桿菌0157有明顯的特異性,將大腸桿菌0157單克隆抗體包被于磁珠表面,可對標本中低濃度大腸桿菌0157進行磁捕獲及分離。使用不同的免疫BMPs,不僅可捕獲、分離多種病原菌,還可采用不同抗體、特定受體包被的BMI^s來捕獲、分離多種靶細胞[9]°]。此夕卜,也可將BMPs標記核酸探針,用于分離高質(zhì)量DNA或RNA,尤其適用于分離核酸含量較低的樣本[11]。修飾后的免疫Biffs作為特定載體,可與相應(yīng)抗原發(fā)生特異性結(jié)合反應(yīng),進行特定抗原的捕獲、分離和洗凈,快速純化其PCR反應(yīng)模板。同樣,病原菌通過增菌及平板培養(yǎng)后, 挑取疑似的病原菌菌落,制備PCR反應(yīng)模板,也去除了原標本中的PCR反應(yīng)抑制物。免疫磁分離法分離的是標本中的原始病原菌,而培養(yǎng)法獲取的是由原始病原菌增殖的菌落。對于實驗室內(nèi)培養(yǎng)困難的某些病原菌,可考慮使用經(jīng)免疫磁分離處理后制備PCR反應(yīng)模板的方法。本發(fā)明由于采用了以上技術(shù)方案,具有顯著的技術(shù)效果
      本發(fā)明利用免疫BMPs捕獲自然標本(糞便)中的目標病原菌,通過分離和洗凈,去除標本中存在的PCR反應(yīng)抑制物等影響因素,可省略增菌培養(yǎng)及鑒別培養(yǎng),快速純化目標病原菌的PCR反應(yīng)模板。本方法操作簡單,大大縮短了檢測時間,提高了檢測效率。
      具體實施例方式下面結(jié)合實施例對本發(fā)明作進ー步詳細描述 實施例1
      1材料和方法 1.1試劑
      大腸桿菌0157 vt\,vt2 PCR檢測試劑盒為TaKaRa公司產(chǎn)品(One Short PCR Typing Kit Ver. 2) ;PCR所需試劑已全部分裝在各離心管內(nèi),只需加入反應(yīng)模板,就能進行PCR反應(yīng)。檢測的目的基因及產(chǎn)物長度為:κ 1:349 bp ;Ki2,Ki2vha,Ki2vhb,Ki2vpl,Ki2vp2:112 bp。從磁性細菌中獲取BMPs,將大腸桿菌0157抗體接種于BMPs表面,形成免疫BMPs。BMPs 提取及免疫BMPs的合成見文獻[2、3]。大腸桿菌0157抗體及大腸桿菌0157鑒別用平板培養(yǎng)基由TSMERI TECH公司提供。1. 2 標本
      本研究使用大腸桿菌0157污染的牛糞標本47份,大腸桿菌0157濃度為1 IO4 cfu/ g ;使用無大腸桿菌0157污染的普通牛糞標本5份。1.3 PCR反應(yīng)模板
      (1)經(jīng)免疫BMPs處理后制備PCR反應(yīng)模板取含有大腸桿菌0157的牛糞便標本1 g, 添加Ph值為6. 8的PBS溶液5 mL,混勻,1000 r/min,離心30 s,去除大顆粒的雜質(zhì),含菌的牛糞稀釋液中添加免疫BMPs 0.3 mg,混合均勻,反應(yīng)30 min后,將結(jié)合了目標病原菌的免疫BMI^s用外磁場(普通磁石)進行磁性誘導,從牛糞中分離出來。分離出來的磁性凝集物使用PBS溶液分散清洗3回。清洗后,結(jié)合了目標病原菌的磁性凝集物,添加滅菌雙蒸水 100 μ L,分散,重新振蕩懸浮后至95°C加熱5 min。再經(jīng)12000 r/min離心5 min?;厥丈锨逡?,PCR檢測用。并且,取無大腸桿菌0157污染的普通牛糞便標本1 g,同樣方法進行處理,備測。(2)經(jīng)增菌及平板培養(yǎng)后制備PCR反應(yīng)模板增菌培養(yǎng)液組成為(g/L) Tryptone 20, bile salts 1. 12, lactose 5. 0, K2HPO4 4. 0, KHoPOa 1. 5g, NaCl 5. 0, soaium novobiocin:20 mg/L, pH7. 0。取含有大腸桿菌0157的牛糞便標本1 g,添加增菌培養(yǎng)液5 mL,混勻,1000 r/min,離心30 s,去除大顆粒的雜質(zhì),含菌的牛糞稀釋液,37°C振蕩培養(yǎng)12 h。取12 h培養(yǎng)后的增菌液0.1 mL,涂布于大腸桿菌0157平板培養(yǎng)基,37°C恒溫培養(yǎng)M h,然后挑取菌落少許,添加滅菌雙蒸水100 μ L,分散,重新振蕩懸浮后至95°C加熱5 min。 再經(jīng)12000 r/min離心5 min?;厥丈锨逡?,PCR檢測用。(3)標本直接制備PCR反應(yīng)模板取含有大腸桿菌0157的牛糞便標本1 g,添加 PBS溶液5 mL,混勻,1000 r/min,離心30 s,去除大顆粒的雜質(zhì),含菌的牛糞稀釋液經(jīng)5000 r/min離心5 min,棄上清液。沉淀物添加滅菌雙蒸水100 μ L,分散,重新振蕩懸浮后至 95°C加熱5 min。再經(jīng)12000 r/min離心5 min?;厥丈锨逡?,PCR檢測用。并且,取無大腸桿菌0157污染的普通牛糞便標本1 g,同樣方法進行處理,添加PBS溶液5 mL,混勻,1000 r/min,離心30 s,去除大顆粒的雜質(zhì),牛糞稀釋液經(jīng)5000 r/min離心5 min,棄上清液。 沉淀物添加滅菌雙蒸水100 μ L,分散,重新振蕩懸浮后至95°C加熱5 min。再經(jīng)12000 r/ min離心5 min?;厥丈锨逡?,PCR檢測用。1.4 PCR 檢測取回收的熱變性上清液25 μ L,加入PCR管內(nèi),滅菌雙蒸水25 yL為陰性對照。于 PCR儀中運行以下程序94°C 1 min,55°C 1 min,72°C 1 min,;35個循環(huán),最后72°C延伸10 min。PCR結(jié)束后,取10 μ L PCR產(chǎn)物,添加配套的上樣緩沖液1. 5 μ L,于瓊脂凝膠中電泳, 紫外透射儀中觀察結(jié)果。1. 5大腸桿菌0157菌濃度調(diào)查
      取含有大腸桿菌0157的牛糞便標本1 g,添加PBS溶液2. 5 mL,混勻,取含菌的牛糞稀釋液適量,涂布于大腸桿菌0157平板培養(yǎng)基,37°C恒溫培養(yǎng),觀察菌落生長并統(tǒng)計菌落數(shù)。結(jié)果
      1.無大腸桿菌0157污染的普通牛糞標本5份,經(jīng)(1)說明的方法,使用免疫BMPs處理后制備PCR反應(yīng)模板、以及(3)說明的方法,標本直接制備PCR反應(yīng)模板,PCR檢測結(jié)果均為陰性。2. 47份牛糞便標本中,經(jīng)檢測大腸桿菌0157濃度為1 10 cfu/g的12份,大腸桿菌0157濃度為11 IO2 cfu/g的19份,大腸桿菌0157濃度為101 IO3 cfu/g的13 份,大腸桿菌0157濃度為1001 IO4 cfu/g的3份。3.相同的牛糞便標本,分別以(1)使用免疫BMPs處理后制備PCR反應(yīng)模板、(2) 經(jīng)增菌及平板培養(yǎng)后制備PCR反應(yīng)模板、(3)標本直接制備PCR反應(yīng)模板三種方法制備PCR 反應(yīng)模板,PCR檢測顯示κ 及/或vtl基因陽性例的結(jié)果見表1。表1 PCR檢測顯示κ 及/或付2基因陽性例
      Table 1 PCR analysis showed that vtl and / or vt2 gene-positive cases
      權(quán)利要求
      1.快速純化及制備細菌PCR反應(yīng)模板的方法,其特征在于,包括以下步驟步驟a 牛糞便標本中添加PBS溶液5 mL,混勻,1000 r/min離心30 s,去除大顆粒的雜質(zhì);步驟b 向含菌的牛糞稀釋液中添加免疫BMPs 0. 3 mg,混合均勻,反應(yīng)30 min后進行磁性誘導,從牛糞中分離出磁性凝集物;步驟c 分離出來的磁性凝集物使用PBS溶液分散清洗3次,清洗后,添加滅菌雙蒸水 100 μ L,分散,重新振蕩懸浮后至95°C加熱5 min ;再經(jīng)12000 r/min離心5 min ;步驟d 回收上清液,制得PCR反應(yīng)模板。
      2.根據(jù)權(quán)利要求1所述的快速純化及制備細菌PCR反應(yīng)模板的方法,其特征在于所述的PBS溶液的ph值為6.8。
      3.根據(jù)權(quán)利要求1所述的快速純化及制備細菌PCR反應(yīng)模板的方法,其特征在于所述的磁性誘導采用普通磁石進行誘導。
      4.根據(jù)權(quán)利要求1所述的快速純化及制備細菌PCR反應(yīng)模板的方法,其特征在于所述的牛糞便標本中的大腸桿菌0157濃度為1 IO4 cfu/g。
      全文摘要
      本發(fā)明屬于分子生物學領(lǐng)域,公開了一種快速純化及制備細菌PCR反應(yīng)模板的方法,將大腸桿菌O157抗體接種于BMPs表面,制成免疫BMPs。使用免疫BMPs,對含有不同濃度大腸桿菌O157的糞便標本,進行目標病原菌的捕獲、分離和洗凈,再使用洗凈的病原菌制備PCR反應(yīng)模板。本發(fā)明利用免疫BMPs捕獲自然標本(糞便)中的目標病原菌,通過分離和洗凈,去除標本中存在的PCR反應(yīng)抑制物等影響因素,可省略增菌培養(yǎng)及鑒別培養(yǎng),快速純化目標病原菌的PCR反應(yīng)模板。
      文檔編號C12N15/10GK102533739SQ20121009510
      公開日2012年7月4日 申請日期2012年3月31日 優(yōu)先權(quán)日2012年3月31日
      發(fā)明者解宇 申請人:杭州師范大學
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