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      一種果糖基轉(zhuǎn)移酶及其基因、其分泌型表達載體和應(yīng)用的制作方法

      文檔序號:516948閱讀:405來源:國知局
      一種果糖基轉(zhuǎn)移酶及其基因、其分泌型表達載體和應(yīng)用的制作方法
      【專利摘要】本發(fā)明公開了一種果糖基轉(zhuǎn)移酶,所述果糖基轉(zhuǎn)移酶由SEQ ID NO:2的氨基酸序列組成;還公開了編碼該果糖基轉(zhuǎn)移酶的多核苷酸,含有該多核苷酸的表達載體,轉(zhuǎn)化體,以及應(yīng)用所述果糖基轉(zhuǎn)移酶基因生產(chǎn)果糖基轉(zhuǎn)移酶的方法,構(gòu)建的工程菌搖瓶發(fā)酵酶活最高可達508U/ml,是原始菌株酶活的約41倍。本發(fā)明還涉及所述果糖基轉(zhuǎn)移酶在制備蔗果低聚糖中的應(yīng)用以及利用所述果糖基轉(zhuǎn)移酶制備蔗果低聚糖的方法。
      【專利說明】一種果糖基轉(zhuǎn)移酶及其基因、其分泌型表達載體和應(yīng)用

      【技術(shù)領(lǐng)域】
      [0001] 本發(fā)明涉及一種果糖基轉(zhuǎn)移酶,其果糖基轉(zhuǎn)移酶基因及其分泌型表達載體和應(yīng) 用,屬于遺傳工程領(lǐng)域。

      【背景技術(shù)】
      [0002] 低聚果糖(FOS)又稱寡果糖或蔗果三糖族低聚糖,是指在果糖基轉(zhuǎn)移酶的作用 下,通過轉(zhuǎn)移果糖基作用生成蔗果三糖,蔗果四糖及蔗果五糖及其混合物。蔗果低聚糖是一 種非還原性糖,具有難消化性、不致齲齒、雙岐桿菌增殖作用及水溶性食用纖維等獨特的生 理活性。
      [0003] 果糖基轉(zhuǎn)移酶(fructosyltransferase,EC2. 4. L 9),屬于糖苷酶32家族。果糖 基轉(zhuǎn)移酶廣泛的存在于生物界,不同微生物來源的果糖基轉(zhuǎn)移酶性質(zhì)不同。微生物果糖基 轉(zhuǎn)移酶作用于蔗糖,進行分子內(nèi)轉(zhuǎn)移果糖基反應(yīng)生成F0S。其中黑曲霉來源的果糖基轉(zhuǎn)移酶 是工業(yè)上主要用微生物來源的酶源。
      [0004] 隨著分子生物學(xué)的發(fā)展,果糖基轉(zhuǎn)移酶分子生物學(xué)始于上世紀(jì)九十年代,1995年, 第1個果糖基轉(zhuǎn)移酶的基因得到克隆。其后,不同物種的果糖基轉(zhuǎn)移酶基因得到研究。其中 對絲狀真菌果糖基轉(zhuǎn)移酶的研究較多,并對一些編碼果糖基轉(zhuǎn)移酶的基因進行了克隆。到 目前為止文獻報道不太多。
      [0005] 畢赤酵母表達系統(tǒng)具有表達量高、生產(chǎn)成本低、產(chǎn)物可分泌到胞外和易于后續(xù)修 飾等優(yōu)點,利用畢赤酵母表達的蛋白已有上百種。畢赤酵母近年來已成為倍受青睞的外源 蛋白表達系統(tǒng)。
      [0006] 本研究室從黑曲霉中克隆得到黑曲霉果糖基轉(zhuǎn)移酶基因(fts,全長基因), 構(gòu)建了 pET22b-cFTS,pET22b-cFTSW質(zhì)粒并轉(zhuǎn)化大腸桿菌BL21,并構(gòu)建pGAPZA-cFTS, pGAPZ a A-cFTSW質(zhì)粒,線性化后電轉(zhuǎn)化畢赤酵母菌株GS115,得到陽性克隆搖瓶發(fā)酵48h, 測定培養(yǎng)液上清果糖基轉(zhuǎn)移酶(主要在胞外,少量在胞內(nèi))酶活力最高為508U / ml。


      【發(fā)明內(nèi)容】

      [0007] 本發(fā)明所要解決的技術(shù)問題是提供一種新型的果糖基轉(zhuǎn)移酶基因,以得到高表達 果糖基轉(zhuǎn)移酶的工程菌株,例如畢赤酵母菌株,從而得到大量的果糖基轉(zhuǎn)移酶。
      [0008] 本發(fā)明人在黑曲霉10(CGMCC3. 316,購自中國微生物菌種保藏管理委員會普通微 生物中心(CGMCC,中國北京朝陽區(qū)大屯路中科院微生物研究所,100101))中克隆得到一種 新型基因,其編碼的蛋白具有果糖基轉(zhuǎn)移酶活性。經(jīng)測序鑒定該基因的基因組核苷酸序列 為SEQ ID NO :1,cDNA序列為SEQ ID NO :3,編碼氨基酸序列為SEQ ID NO :2的蛋白,該蛋 白具有果糖基轉(zhuǎn)移酶活性,為一種果糖基轉(zhuǎn)移酶。本發(fā)明人進一步檢索發(fā)現(xiàn),該基因序列在 GenBank中沒有登記,屬于一種新基因發(fā)現(xiàn)。在此基礎(chǔ)上,本發(fā)明人進一步在大腸桿菌和酵 母菌中表達該基因,對其進行功能驗證,從而完成了本發(fā)明。
      [0009] 本發(fā)明人將編碼上述果糖基轉(zhuǎn)移酶的核苷酸序列克隆到表達載體中構(gòu)建重組表 達載體。其中所用的表達載體例如,但不限于,分泌型表達載體,包括,但不限于,pET-22b, pGAPZA或pGAPZ α A,這些載體均可從試劑公司購買得到。
      [0010] 具體而言,本發(fā)明人將從黑曲霉10中克隆的編碼果糖基轉(zhuǎn)移酶的核苷酸序列按 照常規(guī)分子克隆方法克隆到商購的pET-22b,pGAPZA或pGAPZ a A載體中,構(gòu)建了重組表達 載體 pET22b-cFTS,pET22b-cFTSW,pGAPZA-cFTS 和 pGAPZ a A-cFTSW。其中 pET22b-cFTS 和 pET22b-cFTSW用于在大腸桿菌中進行表達,pGAPZA-cFTS和pGAPZ α A-cFTSW用于在酵母菌 中進行表達。表達后可以獲得具有果糖基轉(zhuǎn)移酶活性的酶蛋白,將其稱為果糖基轉(zhuǎn)移酶。 [0011] 在優(yōu)選的實施方案中,提供一種制備果糖基轉(zhuǎn)移酶的方法,所述方法包括下述步 驟:
      [0012] (1)克隆或合成編碼SEQ ID NO :2所示的蛋白的核苷酸序列,并將其克隆到適當(dāng) 的表達載體中,構(gòu)建含有編碼SEQ ID NO :2所示的蛋白的核苷酸序列的重組表達載體;
      [0013] (2)將步驟(1)得到的重組表達載體轉(zhuǎn)入適當(dāng)?shù)乃拗骷毎?,進行培養(yǎng),表達SEQ ID NO :2所示的蛋白。
      [0014] 本領(lǐng)域技術(shù)人員應(yīng)該理解,上述方法還包括純化步驟,純化得到較高純度的果糖 基轉(zhuǎn)移酶。
      [0015] 本領(lǐng)域技術(shù)人員應(yīng)該理解,選擇分泌型載體來構(gòu)建表達本發(fā)明的果糖基轉(zhuǎn)移酶的 重組表達載體,目的是使目標(biāo)蛋白分泌到培養(yǎng)物上清中,而不是形成包涵體,從而得到的培 養(yǎng)物上清液本身就具有理想的果糖基轉(zhuǎn)移酶活性,并且可以經(jīng)過簡單的純化步驟即可得到 具有果糖基轉(zhuǎn)移酶活性的目標(biāo)蛋白,而不要經(jīng)過變性純化和復(fù)性的復(fù)雜過程。
      [0016] 本領(lǐng)域技術(shù)人員應(yīng)該理解,當(dāng)提及本發(fā)明的"果糖基轉(zhuǎn)移酶"時,該術(shù)語除了包括 由SEQ ID NO :2的氨基酸序列組成的蛋白之外,還包括由SEQ ID NO :2的氨基酸序列經(jīng)過 一個或多個氨基酸取代、缺失或插入而得到的具有與SEQ ID NO :2的氨基酸序列相同或相 似的果糖基轉(zhuǎn)移酶活性的蛋白。
      [0017] 因此,本發(fā)明提供下述:
      [0018] L 一種果糖基轉(zhuǎn)移酶,其為:
      [0019] (1)由SEQ ID NO :2的氨基酸序列組成的蛋白;或
      [0020] (2)由SEQ ID NO : 2的氨基酸序列經(jīng)過一個或多個氨基酸取代、缺失或插入而得 到的具有與SEQ ID NO :2的氨基酸序列相同或相似的果糖基轉(zhuǎn)移酶活性的蛋白。
      [0021] 2.編碼第1項所述的果糖基轉(zhuǎn)移酶的多核苷酸序列。
      [0022] 3.根據(jù)第2項所述的多核苷酸序列,其為如下⑴或⑵所示:
      [0023] (I) SEQ ID NO :1或3或4所示的核苷酸序列;
      [0024] (2)在嚴(yán)格條件下與(1)限定的核苷酸序列雜交且編碼具有果糖基轉(zhuǎn)移酶活性的 蛋白質(zhì)的核苷酸序列。
      [0025] 4.含有第2或3項所述的編碼果糖基轉(zhuǎn)移酶的多核苷酸序列的重組表達載體。
      [0026] 5.根據(jù)第4項所述的表達載體,其特征在于,所述表達載體為分泌型載體。
      [0027] 6.根據(jù)第4項所述的表達載體,其中所用的表達載體選自pET_22b,pGAPZA或 pGAPZ a A0
      [0028] 7.含有第2項所述的編碼果糖基轉(zhuǎn)移酶的多核苷酸序列或第4項所述的重組表達 載體的重組宿主細胞。
      [0029] 8.根據(jù)第7項所述的重組宿主細胞,所述重組宿主細胞為轉(zhuǎn)基因細胞系或基因工 程菌,例如,重組的大腸桿菌或畢赤酵母。
      [0030] 9.第2項所述的編碼果糖基轉(zhuǎn)移酶的多核苷酸序列,第4項所述的重組表達載體 或第7或8項所述的重組宿主細胞在果糖基轉(zhuǎn)移酶制劑生產(chǎn)中的應(yīng)用。
      [0031] 10. -種制備第1項所述的果糖基轉(zhuǎn)移酶的方法,所述方法包括下述步驟:培養(yǎng)第 7或8項所述的重組宿主細胞,得到第1項所述的果糖基轉(zhuǎn)移酶。
      [0032] 11.第1項所述的果糖基轉(zhuǎn)移酶在制備蔗果低聚糖中的應(yīng)用,所述應(yīng)用包括:以蔗 糖為底物,在反應(yīng)體系中加入第1項所述的果糖基轉(zhuǎn)移酶或第7或8項所述的重組宿主細 胞的培養(yǎng)物上清液,酶反應(yīng)后得到蔗果低聚糖,所述蔗果低聚糖包括蔗果三糖、蔗果四糖及 蔗果五糖及其混合物。
      [0033] 12. -種制備蔗果低聚糖的方法,所述方法包括:以蔗糖為底物,在反應(yīng)體系中加 入第1項所述的果糖基轉(zhuǎn)移酶或第7或8項所述的重組宿主細胞的培養(yǎng)物上清液,酶反應(yīng) 后得到蔗果低聚糖,所述蔗果低聚糖包括蔗果三糖、蔗果四糖及蔗果五糖及其混合物。

      【專利附圖】

      【附圖說明】
      [0034] 從下面結(jié)合附圖的詳細描述中,本發(fā)明的上述特征和優(yōu)點將更明顯,其中:
      [0035] 圖1顯示(A)重組表達載體pET22b-cFTS的物理圖譜;(B)重組表達載體 pET22b-cFTSW的物理圖譜;
      [0036] 圖2顯示(A)重組表達載體pGAPZA-cFTS的物理圖譜;(B)重組表達載體 pGAPZ a A-cFTSW的物理圖譜;
      [0037] 圖3顯示轉(zhuǎn)糖基產(chǎn)物的HPLC圖譜(G,葡萄糖;S,蔗糖;GF2,蔗果三糖;GF3,蔗果四 糖)。
      [0038] 序列說明
      [0039] SEQ ID NO :1果糖基轉(zhuǎn)移酶基因組DNA序列,其由1941個堿基組成,該序列 中含有1個內(nèi)含子,為5'端的第1767位到1820位
      [0040] SEQ ID NO :2果糖基轉(zhuǎn)移酶推導(dǎo)的氨基酸序列,由628個氨基酸殘基組成,自 氮端第1 一15位氨基酸殘基是N端信號膚序列
      [0041] SEQ ID NO :3果糖基轉(zhuǎn)移酶的cDNA堿基序列,具有N端信號肽序列,由1887 個堿基組成,簡稱cFTS
      [0042] SEQ ID NO :4 cFTSW序列,即去掉了 15個氨基酸的N端信號肽序列且不包含 最后的終止密碼子的核苷酸序列
      [0043] SEQ ID NO :5果糖基轉(zhuǎn)移酶的N端信號肽序列

      【具體實施方式】
      [0044] 下面參照具體的實施例進一步描述本發(fā)明,但是本領(lǐng)域技術(shù)人員應(yīng)該理解,本發(fā) 明并不限于這些具體的實施例。
      [0045] 以下通過實施例來進一步闡述本發(fā)明,所描述的實施例是示例性的,僅用于解釋 本發(fā)明,而不能解釋為對本發(fā)明的限制。下列實施例中未注明具體條件的試驗方法,除非另 有說明,本發(fā)明的實施例將采用本領(lǐng)域技術(shù)人員的能力范圍之內(nèi)的分子生物學(xué)等領(lǐng)域的傳 統(tǒng)技術(shù)。另外,除非另有說明,在本文中,核酸以5'至3'的方向從左向右書寫,氨基酸序列 則以氨基端到羧基端的方向從左到右書寫。基本上都按照常見的分子克隆手冊所述的條件 進行操作。
      [0046] 具體步驟如下:
      [0047] (1)克隆果糖基轉(zhuǎn)移酶基因;
      [0048] (2)構(gòu)建含有果糖基轉(zhuǎn)移酶基因的表達載體;
      [0049] (3)表達載體轉(zhuǎn)化受體菌;
      [0050] 所述表達載體為分泌型載體,優(yōu)選為pET_22b (購自Novagen),pGAPZA或 pGAPZ a A (這兩種載體購自Invitrogen)。
      [0051] 所述受體菌為大腸桿菌(E. coli BL21)或畢赤酵母。
      [0052] (4)培養(yǎng)轉(zhuǎn)化的受體菌,得到果糖基轉(zhuǎn)移酶。
      [0053] 果糖基轉(zhuǎn)移酶酶活測定方法:
      [0054] 參照王立梅等(2006,食品與生物技術(shù)學(xué)報25(2))取適當(dāng)稀釋的粗酶液0. 5ml與 25 %的蔗糖溶液(在0. IM pH5. 0磷酸-檸檬酸鹽緩沖液中配制)2ml混合均勻,45 °C下酶 解1小時,100°C煮沸15分鐘終止酶解反應(yīng)。果糖基轉(zhuǎn)移酶活通過測定酶解過程中所釋放 出的葡萄糖(G)和還原糖(R)的含量,按照下式計算酶解過程中所產(chǎn)生的果糖量(F)和被 轉(zhuǎn)移的果糖(Fe)量。
      [0055] F=R-G
      [0056] Fc=G-F=2G-R
      [0057] 在相同條件下,以加入失活酶液的蔗糖溶液作為對照。在上述條件下,以每分鐘轉(zhuǎn) 移1 μ mol果糖所需的酶量為一個果糖轉(zhuǎn)移酶活力單位。
      [0058] 材料和試劑:
      [0059] 所用限制性內(nèi)切酶,PCR試劑購自NEB公司;RNA提取及反轉(zhuǎn)錄試劑盒購自 Promega公司;T4DNA連接酶,DNA Marker等購于寶生物公司;pEASY-B載體,大腸桿菌感受 態(tài)細胞DH5 a,BL21,PCR純化試劑盒購自全式金,引物購于華大基因,DNA及質(zhì)粒提取試劑 盒購于天根生物;電轉(zhuǎn)移購自Bio-Rad公司;YPD、以及YPD-Zeocin均按照Invitrogen公司 操作手冊配制;其他試劑均為國內(nèi)外購買的分析純試劑。
      [0060] 實施例1 :黑曲霉果糖基轉(zhuǎn)移酶基因的克隆
      [0061] 提取黑曲霉10(CGMCC3. 316,購自中國微生物菌種保藏管理委員會普通微生物中 心(CGMCC,中國北京朝陽區(qū)大屯路中科院微生物研究所,100101))基因組DNA。設(shè)計引物進 行PCR反應(yīng),得到黑曲霉果糖基轉(zhuǎn)移酶全基因編碼序列(FTS),其中所用的引物序列如下:
      [0062] sense primer :
      [0063] 5,-TAGGCGGATCCCATGAAGCTTCAAACGGCTTC-3,
      [0064] anti-sense primer :
      [0065] 5' -AGGGCGGA ATTCTTA AGACTGACGATCCGGC-3;
      [0066] 提取黑曲霉10總RNA,并反轉(zhuǎn)錄成cDNA。設(shè)計引物進行PCR反應(yīng),得到黑曲霉果 糖基轉(zhuǎn)移酶cDNA編碼序列(cFTS,為SEQ ID NO :3),所用的引物序列如下同果糖基轉(zhuǎn)移酶 DNA引物序列。
      [0067] pET22b_cFTS 載體的構(gòu)建
      [0068] 所用的引物序列同果糖基轉(zhuǎn)移酶DNA序列引物。
      [0069] 用BamH I和EcoR I雙酶切擴增的果糖基轉(zhuǎn)移酶cDNA序列(SEQ ID NO :3)與 pET22b (購自Novagen)。經(jīng)酶切的目的片段與載體pET22b用T4DNA連接酶連接過夜,熱激 法轉(zhuǎn)化大腸感受態(tài)細胞,挑選陽性菌株提取質(zhì)粒即得到重組質(zhì)粒pET22b-cFTS。
      [0070] 實施例2 :pET22b-cFTSW載體的構(gòu)建
      [0071] 引物序列如下:
      [0072] cff s-p 11 :
      [0073] 5' -CTCGGAATTCAGCCTCTCCTTCCATGCAGAC-3'
      [0074] cffs-p2w :
      [0075] 5, -TAGCGGCCGCAGACTGACGATCCGGCCAAG-3,
      [0076] 將利用上述引物擴增得到的果糖基轉(zhuǎn)移酶核苷酸序列命名為cFTSW,其序列見SEQ ID NO :4。
      [0077] cFTSW(SEQ ID NO :4)與 cFTS(SEQ ID NO :3)的區(qū)別如下:
      [0078] cFTS是包含本身信號肽(蛋白氨基酸序列的前十五個氨基酸)的cDNA序列,由 1887個堿基組成;cFTSW是不包含自身信號肽的cDNA序列,由1839個堿基(不包含最后的 終止子)組成。
      [0079] 用EcoR I和Not I雙酶切擴增的cFTSW序列(SEQ ID NO :4)與載體pET22b (購 自Novagen)。經(jīng)酶切的目的片段與載體pET22b用T4DNA連接酶連接過夜,熱激法轉(zhuǎn)化大腸 感受態(tài)細胞,挑選陽性菌株提取質(zhì)粒即得到重組質(zhì)粒pET22b-cFTSW。
      [0080] 實施例3 :pGAPZA-cFTS載體的構(gòu)建
      [0081] 引物序列如下:
      [0082] ffs-pl :
      [0083] 5,-CTCGGAATTCATGAAGCTTCAAACGGCTTC-3'
      [0084] cffs-p2 :
      [0085] 5,-TAGCGGCCGCTTAAGACTGACGATCCGGC-3,
      [0086] 高保真Tag酶擴增果糖基轉(zhuǎn)移酶cDNA序列(SEQ ID NO :3),同時擴培含有pGAPZA 質(zhì)粒(購自Invitrogen)大腸桿菌菌株并提取pGAPZA質(zhì)粒。EcoR I和Not I雙酶切擴 增的果糖基轉(zhuǎn)移酶cDNA序列(SEQ ID NO :3)與載體pGAPZA,T4DNA連接酶過夜連接經(jīng)酶 切的目的片段與載體,轉(zhuǎn)化大腸桿菌感受態(tài)細胞,挑選陽性菌株提取質(zhì)粒即得到重組質(zhì)粒 pGAPZA-cFTS。
      [0087] 實施例4 :pGAPZ a A- cFTSW載體的構(gòu)建
      [0088] 所用的引物如下:
      [0089] cffs-pl :
      [0090] 5; -CTCGGAATTCGCCTCTCCTTCCATGCAGAC-3;
      [0091] cffs-p2w :
      [0092] 5,-TAGCGGCCGCAGACTGACGATCCGGCCAAG-3,
      [0093] 高保真Tag酶擴增不含自身信號肽序列的果糖基轉(zhuǎn)移酶cDNA序列(cFTSW,SEQ ID NO :4),同時擴培含有pGAPZa A質(zhì)粒(購自Invitrogen)的大腸桿菌菌株并提質(zhì)粒。EcoR I和Not I雙酶切擴增的cFTSW序列與pGAPZ a A,T4DNA連接酶過夜連接經(jīng)酶切的目的片段 與載體,轉(zhuǎn)化大腸桿菌感受態(tài)細胞,挑選陽性菌株提取質(zhì)粒即得到重組質(zhì)粒pGAPZA-cFTSW。
      [0094] 實施例 5 :pET22b-cFTS、pET22b-cFTSW 重組子轉(zhuǎn)化
      [0095] 重組的陽性菌株擴培后提取質(zhì)粒,熱激轉(zhuǎn)化大腸桿菌BL21表達菌株。
      [0096] 實施例 6 :pGAPZA_cFTS、pGAPZ a A-cFTSW 重組子轉(zhuǎn)化
      [0097] 重組的陽性菌株擴培后提取質(zhì)粒,用BspH I單酶切為線性質(zhì)粒,總量為5 - IOug 進行電轉(zhuǎn),轉(zhuǎn)入畢赤酵母GS115感受態(tài)細胞(畢赤酵母GS115購自Invitrogen,其感受態(tài)細 胞按照常規(guī)方法制備)。電轉(zhuǎn)儀設(shè)置為電壓1500v,電容25uF,電阻200 Ω。
      [0098] 實施例7 :重組子的篩選及分子驗證
      [0099] 熱激轉(zhuǎn)化大腸桿菌BL21后加入400ul LB培養(yǎng)基,37°C復(fù)蘇后涂布氨芐濃度為 IOOug / ml的LB平板。以長出的單菌落為模板,以基因特異引物進行PCR反應(yīng),得到相應(yīng) 大小條帶即確定為陽性菌株。
      [0100] 電轉(zhuǎn)化畢赤酵母GS115后加入Iml山梨醇溶液,30°C復(fù)蘇后涂布Zeocin濃度為 IOOug / ml的Yro平板,長出的單菌落接種Yro液體培養(yǎng)基培養(yǎng),取上清液測定果糖基轉(zhuǎn)移 酶活性,抗生素 Zeocin篩選的陽性畢赤酵母菌落的培養(yǎng)上清液均檢測到果糖基轉(zhuǎn)移酶活 性,由于各菌株表達果糖基轉(zhuǎn)移酶的能力有差別,可以選取果糖基轉(zhuǎn)移酶活性高的工程菌 株用于進一步的研究。
      [0101] 實施例8 :PET22b-cFTS、pET22b-cFTSW重組子陽性菌株搖瓶發(fā)酵
      [0102] 挑取陽性菌株單菌落,5ml試管培養(yǎng)過夜。取Iml到50ml LB三角瓶中, 37°C,250rpm,搖菌2. 5-3h,置于冰上5分鐘,(菌體溶度為0D6000. 6-0. 8)加入IOmM IPTG50-100ul誘導(dǎo),25°C,震蕩培養(yǎng)。每隔一段時間取樣測酶活(即,取培養(yǎng)物上清測酶 活),24小時后酶活力達到I. 68U / ml。
      [0103] 實施例9 :PGAPZA-cFTS、pGAPZ a A-cFTSW重組子陽性菌株搖瓶發(fā)酵
      [0104] 參考Invitrogen公司操作手冊,挑取陽性菌株單菌落接種至5ml YH)培養(yǎng)基中, 28°C,250rpm搖床培養(yǎng)過夜,按1-4%的比例轉(zhuǎn)接到50ml YH)培養(yǎng)基三角瓶中,相同條件培 養(yǎng),每隔12小時,取樣測酶活(S卩,取培養(yǎng)物上清測酶活),培養(yǎng)48小時后,胞外酶活達到最 高,為 508U / ml。
      [0105] 實施例10 :酵母工程菌產(chǎn)果糖基轉(zhuǎn)移酶的酶解產(chǎn)物分析
      [0106] 以25%蔗糖為底物,果糖基轉(zhuǎn)移酶含量為8單位每克蔗糖,pH5. 0,45°C下反應(yīng),每 隔一段時間(例如,反應(yīng)后20分鐘,2小時,12小時,24小時)取適量反應(yīng)混合物進行產(chǎn)物 分析。HPLC分析表明,產(chǎn)物中首先出現(xiàn)的蔗果三糖(GF2),蔗果四糖(GF3),最后是蔗果五 糖。反應(yīng)液中果寡糖最高占總質(zhì)量的58%。圖3顯示轉(zhuǎn)糖基產(chǎn)物的HPLC圖譜,圖譜數(shù)據(jù)與 反應(yīng)液中果寡糖最高占總質(zhì)量的58%相一致,該HPLC圖譜中沒有顯示鹿果五糖,反應(yīng)延長 可出現(xiàn)蔗果五糖。
      [0107] 應(yīng)該理解,盡管參考其示例性的實施方案,已經(jīng)對本發(fā)明進行具體地顯示和描述, 但是本領(lǐng)域的普通技術(shù)人員應(yīng)該理解,在不背離由權(quán)利要求書所定義的本發(fā)明的精神和范 圍的條件下,可以在其中進行各種形式和細節(jié)的變化,可以進行各種實施方案的任意組合。
      【權(quán)利要求】
      1. 一種果糖基轉(zhuǎn)移酶,其為: (1) 由SEQ ID NO :2的氨基酸序列組成的蛋白;或 (2) 由SEQ ID NO :2的氨基酸序列經(jīng)過一個或多個氨基酸取代、缺失或插入而得到的 具有與SEQ ID NO :2的氨基酸序列相同或相似的果糖基轉(zhuǎn)移酶活性的蛋白。
      2. 編碼權(quán)利要求1所述的果糖基轉(zhuǎn)移酶的多核苷酸序列。
      3. 根據(jù)權(quán)利要求2所述的多核苷酸序列,其為如下(1)或(2)所示: (1) SEQ ID NO :1或3或4所示的核苷酸序列; (2) 在嚴(yán)格條件下與(1)限定的核苷酸序列雜交且編碼具有果糖基轉(zhuǎn)移酶活性的蛋白 質(zhì)的核苷酸序列。
      4. 含有權(quán)利要求2或3所述的編碼果糖基轉(zhuǎn)移酶的多核苷酸序列的重組表達載體。
      5. 根據(jù)權(quán)利要求4所述的表達載體,其特征在于,所述表達載體為分泌型載體。
      6. 根據(jù)權(quán)利要求4所述的表達載體,其中所用的表達載體選自pET-22b,pGAPZA或 pGAPZ a A〇
      7. 含有權(quán)利要求2所述的編碼果糖基轉(zhuǎn)移酶的多核苷酸序列或權(quán)利要求4所述的重組 表達載體的重組宿主細胞。
      8. 根據(jù)權(quán)利要求7所述的重組宿主細胞,所述重組宿主細胞為轉(zhuǎn)基因細胞系或基因工 程菌,例如,重組的大腸桿菌或畢赤酵母。
      9. 權(quán)利要求2所述的編碼果糖基轉(zhuǎn)移酶的多核苷酸序列,權(quán)利要求4所述的重組表達 載體或權(quán)利要求7或8所述的重組宿主細胞在果糖基轉(zhuǎn)移酶制劑生產(chǎn)中的應(yīng)用。
      10. -種制備權(quán)利要求1所述的果糖基轉(zhuǎn)移酶的方法,所述方法包括下述步驟:培養(yǎng)權(quán) 利要求7或8所述的重組宿主細胞,得到權(quán)利要求1所述的果糖基轉(zhuǎn)移酶。
      【文檔編號】C12N15/63GK104419688SQ201310392334
      【公開日】2015年3月18日 申請日期:2013年9月2日 優(yōu)先權(quán)日:2013年9月2日
      【發(fā)明者】張國青, 鈔亞鵬, 楊敬, 錢世鈞, 石家驥 申請人:中國科學(xué)院微生物研究所
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