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      一種改進(jìn)的動物組織基因組dna提取方法

      文檔序號:491290閱讀:684來源:國知局
      一種改進(jìn)的動物組織基因組dna提取方法
      【專利摘要】本發(fā)明公開了一種改進(jìn)的動物組織基因組DNA提取方法,改進(jìn)之處是在苯酚提取前,先用蛋白酶K對細(xì)胞提取物進(jìn)行處理,將肽段降解成更小的單元以便于進(jìn)行苯酚提取。提純過程中的DNA酶活性經(jīng)低溫操作并用SDS解聚或檸檬酸三鈉和EDTA.Na2等螯合劑抑制。逐漸純化的DNA經(jīng)乙醇或異丙醇沉淀而收集,最終實(shí)現(xiàn)DNA分離純化之目的。
      【專利說明】一種改進(jìn)的動物組織基因組DNA提取方法

      【技術(shù)領(lǐng)域】
      [0001]本發(fā)明涉及一種改進(jìn)的動物組織基因組DNA提取方法,屬分子遺傳育種領(lǐng)域。

      【背景技術(shù)】
      [0002]提取DNA的基本程序包括細(xì)胞破碎一解聚核蛋白并去除蛋白質(zhì)一沉淀核酸并去除其它雜質(zhì)三步。破碎細(xì)胞的方法很多,高等動植物材料常用液氮研磨。除去細(xì)胞提取物中蛋白質(zhì)的標(biāo)準(zhǔn)方法是,加入苯酚或1:1的苯酚與氯仿的混合物。這些有機(jī)溶劑能夠沉淀出蛋白質(zhì)但仍保留核酸在溶液中。對于某些細(xì)胞提取物來說,其中的蛋白質(zhì)成分含量如此之多,以至于單使用苯酚提取并不足以徹底純化核酸。正確的處理方法是在苯酚提取前,先用蛋白酶K對細(xì)胞提取物進(jìn)行處理,將肽段降解成更小的單元以便于進(jìn)行苯酚提取。提純過程中的DNA酶活性經(jīng)低溫操作并用SDS解聚或檸檬酸三鈉和EDTA.Na2等螯合劑抑制。逐漸純化的DNA經(jīng)乙醇或異丙醇沉淀而收集,最終實(shí)現(xiàn)DNA分離純化之目的。


      【發(fā)明內(nèi)容】

      [0003]本發(fā)明的目的在于提供一種改進(jìn)的動物組織基因組DNA提取方法,為實(shí)現(xiàn)上述目的,本發(fā)明采用如下技術(shù)方案:
      一種改進(jìn)的動物組織基因組DNA提取方法,其特征在于它的溶液有以下組分:
      氯仿、無水乙醇、Tr i s飽和酚、異戊醇、醋酸鈉、飽和氯化鈉、7 5%冰乙醇、裂解液、Tris-HCl、EDTA、SDS 和雙蒸水。
      [0004]一種改進(jìn)的動物組織基因組DNA提取方法,其特征在它包括以下步驟:
      1、將組織樣剪碎保存;
      2、向組織塊的離心管中加入預(yù)冷TE;
      3、離心后棄上清液;
      4、加入飽和Nacl、裂解液,混勻后至室溫5min;
      5、加入等體積的酚:氯仿:異戊醇抽提一次,離心后吸出上層水相,移至另一干凈離心管中。再用等體積的氯仿:異戊醇抽提一次,離心后用抽提至無蛋白沉淀產(chǎn)生;
      6、吸上清,加入NaAc,混勻后,再加入預(yù)冷的無水乙醇,冰浴、離心,棄上清液;
      7、用冰乙醇漂洗I次,離心后棄上清液,將離心管倒置于滅菌的濾紙上使乙醇揮發(fā),風(fēng)干至無酒精味;
      8、加入TE,瓊脂糖凝膠電泳檢測,保存。

      【具體實(shí)施方式】
      [0005]一、試劑配制
      氯仿、無水乙醇、Tr i s飽和酚、異戊醇、醋酸鈉、飽和氯化鈉、7 5%冰乙醇、裂解液、Tris-HCl.EDTA, SDS 和雙蒸水。
      [0006]1、配置 10mlTE 溶液
      Tris-HCl (lmol/L, pH8.0),Iml ;
      EDTA (0.5 mol/1, pH8.0) ,200ul ;
      雙蒸水98.8ml ;
      2、配置100ml裂解液(注意會腐蝕手)
      Tris-HCl (lmol/L, pH8.0),Iml
      SDS (10% ),1ml 或 I 克
      EDTA (0.5mol/l,ρΗ8.0),20ml
      滅菌雙蒸水定容至于100ml。
      [0007] 二、操作步驟
      1、將組織樣剪碎-70°C保存,(稱取0.03g-0.05g加入1.5ml離心管中);
      2、向組織塊的離心管中加入900ul預(yù)冷TE,要防止組織塊聚成團(tuán),盡可能制成細(xì)胞懸液;
      3>3000r/min離心五分鐘后棄上清液;
      4、加入10ul飽和Nacl、400ul裂解液,混勻后至室溫5min;
      5、加入等體積的酹:氯仿:異戍醇(25:24:1體積比),抽提一次,4°C13000rpm/min離心lOmin,用大口的移液管頭(用剪刀將Iml移液管頭口剪成大于3mm中的口)小心吸出上層水相(不可碰到蛋白質(zhì)層),移至另一干凈離心管中,盡量不要吸出兩相的交界面。再用等體積的氯仿:異戍醇(24:1),抽提一次,4°C 13000rpm/min離心1min,用大口的移液管頭(用剪刀將Iml移液管頭口剪成大于3mm中的口)抽提至無蛋白沉淀產(chǎn)生;
      6、用剪過頭的移液管吸上清,加入1/10體積的3Mol/L的NaAc(PH=5.2),混勻后,再加入2倍體積的預(yù)冷的無水乙醇,冰浴10-20min, 13000rpm離心5分鐘,棄上清液;
      7、用50ul,70%冰乙醇漂洗I次,13000rpm離心5分鐘,棄上清液,將離心管倒置于滅菌的濾紙上10-15min使乙醇揮發(fā),風(fēng)干至無酒精味;
      8、加入50ulTE, 1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(電泳或紫外分光光度法),-20°C保存。
      【權(quán)利要求】
      1.一種改進(jìn)的動物組織基因組DNA提取方法,其特征在于它的溶液: 氯仿、無水乙醇、Tr i s飽和酚、異戊醇、醋酸鈉、飽和氯化鈉、7 5%冰乙醇、裂解液、Tris-HCl、EDTA、SDS 和雙蒸水; 上述改進(jìn)的動物組織基因組DNA提取方法包括以下步驟: (1)將組織樣剪碎_70°C保存(稱取0.03g-0.05g加入1.5ml離心管中); (2)向組織塊的離心管中加入900ul預(yù)冷TE,要防止組織塊聚成團(tuán),盡可能制成細(xì)胞懸液; (3)3000r/min離心五分鐘后棄上清液; (4)加入10ul飽和Nacl、400ul裂解液,混勻后至室溫5min; (5)加入等體積的酹:氯仿:異戍醇(25:24:1體積比),抽提一次,4°C13000rpm/min離心lOmin,用大口的移液管頭(用剪刀將Iml移液管頭口剪成大于3mm中的口)小心吸出上層水相(不可碰到蛋白質(zhì)層),移至另一干凈離心管中,盡量不要吸出兩相的交界面; 再用等體積的氯仿:異戊醇(24:1),抽提一次,41: 13000rpm/min離心lOmin,用大口的移液管頭(用剪刀將Iml移液管頭口剪成大于3mm中的口)抽提至無蛋白沉淀產(chǎn)生; (6)用剪過頭的移液管吸上清,加入1/10體積的3Mol/L的NaAc(PH=5.2),混勻后,再加入2倍體積的預(yù)冷的無水乙醇,冰浴10-20min, 13000rpm離心5分鐘,棄上清液; (7)用50ul,70%冰乙醇漂洗I次,13000rpm離心5分鐘,棄上清液,將離心管倒置于滅菌的濾紙上10-15min使乙醇揮發(fā),風(fēng)干至無酒精味; (8)加入50ulTE, 1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(電泳或紫外分光光度法),-20°C保存。
      2.根據(jù)權(quán)利要求1所述的溶液,其配制方法為: Cl)配置10mlTE溶液
      Tris-HCl (lmol/L, pH8.0),Iml ;
      EDTA (0.5 mol/1, pH8.0) ,200ul ; 雙蒸水98.8ml ; (2)配置100ml裂解液(注意會腐蝕手)
      Tris-HCl (lmol/L, pH8.0),Iml
      SDS (10% ),1ml 或 I 克
      EDTA (0.5mol/l,ρΗ8.0),20ml
      滅菌雙蒸水定容至于100ml。
      【文檔編號】C12N15/10GK104232623SQ201410561561
      【公開日】2014年12月24日 申請日期:2014年10月22日 優(yōu)先權(quán)日:2014年10月22日
      【發(fā)明者】焦婷, 趙生國, 車攏杰, 權(quán)金強(qiáng), 郭永博, 汪文強(qiáng), 鄭王山 申請人:甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)
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