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      基于豬瘟病毒ns3建立的間接elisa方法

      文檔序號:3565328閱讀:313來源:國知局
      專利名稱:基于豬瘟病毒ns3建立的間接elisa方法
      技術(shù)領(lǐng)域
      本發(fā)明屬于獸醫(yī)生物技術(shù)領(lǐng)域,是基于豬瘟病毒(Classical Swine FeverVirus CSFV)重組蛋白NS3為包被抗原,建立檢測CSFV抗體的間接ELISA方法。

      背景技術(shù)
      豬瘟(Classical Swine Fever CSF)是由CSFV引起的一種急性熱性傳染病,各種年齡階段的豬都可感染發(fā)病,該病被國際動物衛(wèi)生組織(OIE)列為A類傳染病,我國將其列為一類傳染病。雖然該病在北美洲、大洋洲及部分歐洲國家已經(jīng)消滅,但在其他養(yǎng)豬國家仍廣泛存在,并對養(yǎng)豬業(yè)造成嚴重危害。我國長期對豬群免疫接種豬瘟病毒兔化弱毒(Hog Cholera Lapizined Virus HCLV)疫苗,基本控制了豬瘟的大流行,但豬瘟在我國各地豬群中廣泛存在,并呈現(xiàn)地區(qū)性散發(fā)性特點,在豬群中存在一定隱性感染和持續(xù)性感染現(xiàn)象。
      當前CSF實驗室診斷方法主要存在的問題之一是如何有效地區(qū)分CSFV野毒株和疫苗毒株的感染,雖然有報道特異性RT-PCR能夠區(qū)分病毒野毒和疫苗毒感染,但其對技術(shù)性要求過高,不適合大規(guī)模的流行病學調(diào)查。酶聯(lián)免疫吸附試驗(ELISA)具有操作簡單、敏感性高、快速、易標準化等優(yōu)點,適合于大規(guī)模血清學檢測。但當前研制開發(fā)的絕大部分CSFV抗體檢測試劑盒,包括廣泛用于CSFV-Ab血清學檢測的IDEXX公司CSFV-Ab檢測試劑盒,同樣不能區(qū)分CSFV野毒株和疫苗毒株的感染產(chǎn)生的抗體。隨著基因工程疫苗技術(shù)的發(fā)展,現(xiàn)已研究開發(fā)出以CSFV E2作為抗原的基因工程標記疫苗,和基于CSFV Erns的鑒別診斷ELISA。雖然CSFV E2基因工程疫苗能夠?qū)σ赘胸i群提供保護,但在實際臨床中以Erns為抗原建立的鑒別診斷ELISA在血清學檢測方面存在敏感性低的缺陷(75~80%),導致CSFV基因工程標記疫苗在實際臨床應用中受到限制。上述問題存在導致開展CSFV凈化工作受到嚴重阻礙,使得我國豬群中CSFV長期存在并對養(yǎng)豬業(yè)造成巨大危害。


      發(fā)明內(nèi)容
      本發(fā)明所要解決的技術(shù)問題是針對上述現(xiàn)有技術(shù)的不足,提供一種基于豬瘟病毒NS3建立的間接ELISA方法,可用于豬群中CSFV NS3蛋白抗體檢測,以此判斷豬群中CSFV NS3抗體水平、豬群中CSF自然感染的情況,以及為CSFV E2基因工程標記疫苗提供鑒別診斷ELISA。
      為了解決上述技術(shù)問題,本發(fā)明所采用的技術(shù)方案是一種基于豬瘟病毒NS3建立的間接ELISA方法,該方法包括如下步驟 (1)、包被抗原的制備 根據(jù)GenBank中豬瘟病毒全基因序列(登錄號AF351433),設(shè)計兩條引物,上游引物fP5′-GATGAGCTCGGGCCTGCCGTTTGCAAGAAG-3′,下游引物rP5′-TCTCCTCGAGTTATAGA CCAACTACCTGTTTTAGTGC-3′,通過PCR方法從豬瘟病毒兔化弱毒(HCLV)cDNA中擴增到長度為2049bp NS3基因序列,將其克隆到原核表達載體pET-32a(+)(購自Novagen公司,產(chǎn)品編號69015-3)中,構(gòu)建重組原核表達載體pETNS3;將重組原核表達載體pETNS3轉(zhuǎn)化至大腸桿菌Rosetta(DE3)細胞,經(jīng)0.1mM IPTG誘導高效表達了重組蛋白NS3,該蛋白主要以包含體形式表達,部分為可溶性表達,采用Ni+親和層析方法(參照Novagen公司High-Affinity Ni-NTA Resin試劑盒說明書)純化得到重組蛋白NS3,制得抗原。對照孔包被的抗原硫氧還蛋白由pET-32a(+)空質(zhì)粒轉(zhuǎn)化至大腸桿菌Rosetta(DE3)細胞誘導表達,采用Ni+親和層析方法進行純化。
      (2)、以純化的重組蛋白NS3作為包被抗原建立間接ELISA ①包被用pH為9.6的0.05M碳酸鹽緩沖液稀釋包被抗原包被96孔ELISA板(美國Costa公司),檢測孔NS3蛋白包被量為200ng/孔,對照孔包被硫氧還蛋白40ng/孔,4℃條件下包被24小時后甩干,采用PBST(0.05M PH7.4PBS+0.05%吐溫-20,下同)洗滌2遍; ②封閉封閉采用PBST稀釋5%脫脂奶粉,300μl/孔,37℃條件下封閉2h后甩干,用PBST洗滌3次; ③血清作用條件血清樣品稀釋液為PBST稀釋5%脫脂奶粉,添加5%大腸桿菌裂解液,得100μl/孔,血清做50倍稀釋為2μl/孔;37℃條件下孵育1h后甩干,用PBST洗滌4次; ④酶標兔抗豬抗體作用條件酶標兔抗豬抗體(購自美國Sigma公司,產(chǎn)品目錄號A5670)用PBST做104倍稀釋,100μl/孔,37℃條件下孵育1h后甩干,用PBST洗滌4次; ⑤底物顯色TMB底物(購自Sigma公司,產(chǎn)品目錄號T8768)100μl/孔,37℃條件下作用10min后加2M H2SO4100μl/孔,終止反應; ⑥讀數(shù)采用酶標儀吸光度450nm下讀取數(shù)據(jù),計算結(jié)果。
      本發(fā)明中提及的PBST皆為0.05M PH7.4PBS+0.05%吐溫-20。(3)、間接NS3-ELISA結(jié)果判定標準 參考血清的確定經(jīng)IDEXX公司CSFV-Ab檢測試劑盒和IFA檢測為陽性的血清,在該NS3-ELISA條件下重復性檢測OD值為1.0±0.1確定為參考陽性血清;經(jīng)IDEXX公司CSFV-Ab檢測試劑盒和IFA檢測為陰性的血清,在該NS3-ELISA條件下重復性檢測OD值為0.1±0.05確定為參考陰性血清。
      S/P值判定結(jié)果計算公式如下 樣品OD值=檢測孔OD值-對照孔OD值 臨界OD值=陰性血清平均OD值(n>30)+3×標準差 樣品S/P值=樣品OD值/參考陽性血清OD值 臨界S/P值=臨界OD值/參考陽性血清OD值 判定標準當參考陽性血清OD值≥0.75,參考陰性血清OD值<0.25,同時參考陰性血清OD值/參考陽性血清OD值<0.2,表明試驗成立;臨界S/P值為0.3,S/P≥0.3判定為陽性,S/P<0.3判定為陰性。
      黃病毒科各成員NS3在功能方面相似,在人醫(yī)方面已有報道用丙型肝炎(HCV)重組蛋白NS3建立ELISA應用于感染人群血清學檢測。牛病毒性腹瀉病毒(Bovine Virus Diarrhea Virus BVDV)與CSFV同屬于瘟病毒屬,運用BVDV NS3建立ELISA檢測牛群中BVDV的抗體水平在國外已經(jīng)報道。利用分子生物學技術(shù)克隆表達CSFV NS3基因獲取重組蛋白NS3,運用WesternBlotting分析證明能與血清中的CSFV NS3特異性抗體結(jié)合,以重組蛋白NS3為抗原建立間接ELISA,依據(jù)ELISA原理以S/P值作為該方法的結(jié)果判定標準,使該方法在檢測血清抗體過程中標準化,減少在實驗操作過程中造成的系統(tǒng)誤差,可以作為一種可靠的CSFV抗體血清學檢測方法,成為CSFV E2基因工程標記疫苗一種候選鑒別ELISA檢測方法。NS3-ELISA的建立理論上能為我國利用CSFV E2基因工程標記疫苗代替?zhèn)鹘y(tǒng)HCLV提供鑒別診斷自然感染的方法,使得運用基因工程標記疫苗結(jié)合配套鑒別診斷ELISA凈化我國豬群中的CSFV感染有可靠的技術(shù)保障。
      本發(fā)明方法首次利用分子生物學基因克隆表達技術(shù),獲取CSFV重組蛋白NS3,以重組蛋白NS3為抗原建立起間接ELISA。該NS3-ELISA可用于豬群中CSFV NS3特異性抗體檢測,以此判斷豬群中CSFV NS3抗體水平、豬群中CSF自然感染的情況,以及為CSFV E2基因工程標記疫苗提供鑒別ELISA檢測方法。



      圖1是重組蛋白NS3在大腸桿菌Rosetta中誘導表達及蛋白純化SDS-PAGE分析圖。
      其中第1泳道蛋白質(zhì)標準,從上至下分別是97.2KDa、66.4KDa、44.3KDa、29KDa;第2泳道純化后的重組蛋白NS3;第3泳道誘導菌裂解后上清;第4泳道誘導菌裂解后沉淀;第5泳道誘導后全菌;第6泳道未誘導全菌;第7泳道Western Blotting分析誘導菌裂解液;第8泳道WesternBlotting分析未誘導菌裂解液。
      圖2是IFA檢測血清樣品結(jié)果圖。
      其中A參考陽性血清;B參考陰性血清;C陰性血清;D陽性血清。

      具體實施例方式 1、包被抗原的制備 1.1特異性引物設(shè)計與合成利用Primer 5.0引物分析軟件,根據(jù)GenBank收錄CSFV全基因序列(GenBank登陸號為AF351433)中NS3編碼區(qū)基因序列設(shè)計一對引物fP和rP,引物兩端分別設(shè)有Sac I和Xho I酶切位點,預計可擴增出CSFV基因組中5,142-7,191bp(長度為2,049bp)的基因片段。
      上游引物fP5′-GATGAGCTCGGGCCTGCCGTTTGCAAGAAG-3′;下游引物rP5′-TCTCCTCGAGTTATAGACCAACTACCTGTTTTAGTGC-3′。上、下游引物均由上海生工生物工程技術(shù)有限公司合成。
      1.2pETNS3原核表達載體的構(gòu)建采用NS3特異性上下游引物從質(zhì)粒pPOHCLV(包含HCLV全長cDNA)中擴增NS3基因片段,用限制性內(nèi)切酶SacI和Xho I(購自大連寶生物公司)分別對NS3PCR產(chǎn)物和pET-32a(+)載體進行酶切,用T4DNA連接酶連接兩者酶切產(chǎn)物(購自大連寶生物公司)。連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化到大腸桿菌DH5α感受態(tài)細胞中,采用PCR方法和酶切鑒定陽性克隆,陽性克隆送至上海英俊生物技術(shù)公司進行測序。
      挑取單個陽性克隆菌落PCR鑒定結(jié)果表明能擴增到2,000bp多目的條帶,與預計NS3基因片段大小一致。挑取單個陽性克隆菌落增菌培養(yǎng)后提取質(zhì)粒,用限制性內(nèi)切酶Sac I和Xho I進行酶切鑒定,酶切后得到5,300bp和2,000bp大小的片段。陽性克隆測序結(jié)果顯示NS3基因插入位置、插入方向和閱讀框正確,結(jié)果表明重組原核表達載體pETNS3構(gòu)建成功。
      1.3重組蛋白NS3誘導表達與鑒定將構(gòu)建好的重組原核表達載體pETNS3質(zhì)粒轉(zhuǎn)化到大腸桿菌Rosetta(DE3)感受態(tài)細胞中,挑單個菌落進行增菌培養(yǎng),LB液體培養(yǎng)基中添加50μg/ml濃度Amp和1%濃度葡萄糖,30℃條件下140rpm培養(yǎng)4h左右至對數(shù)生長期(620nm吸光度為0.6),加入IPTG終濃度為1mM,繼續(xù)培養(yǎng)5-6h后收菌。分別取誘導和非誘導菌液2ml,離心后收集細菌沉淀,用50μl PBS(0.05M PH7.4)懸浮細菌。樣品加2×SDS凝膠加樣緩沖液50μl混勻,煮沸處理5min后振蕩裂解細菌,稍離心后取上清進行SDS-PAGE,鑒定蛋白是否表達。取誘導培養(yǎng)菌液離心后棄上清收集細菌沉淀,用PBS懸浮細菌后超聲波裂解至清亮,4℃條件下10,000×g/min離心5min,分別取上清和沉淀懸浮液加2×SDS凝膠加樣緩沖液混勻,煮沸處理5min后SDS-PAGE鑒定蛋白表達方式。
      1.4蛋白純化取100ml LB液體培養(yǎng)基,按照1.3中蛋白誘導表達條件進行大量誘導培養(yǎng)。取包含體參照Novagen公司High-Affinity Ni-NTA Resin試劑盒說明書進行蛋白純化,取回收蛋白質(zhì)樣品加2×SDS凝膠加樣緩沖液煮沸處理5min后,進行SDS-PAGE鑒定蛋白純度?;厥盏鞍讟悠凡捎梅止夤舛扔嫓y定蛋白質(zhì)濃度,加入50%甘油置-20℃保存?zhèn)溆谩?br> SDS-PAGE分析顯示,重組蛋白NS3在大腸桿菌Rosetta(DE3)細胞中成功表達,主要以包含體的形式表達,部分以可溶性方式表達,蛋白分子量大小為95kDa,與預測的重組蛋白NS3大小基本一致(參見圖1)?;厥蘸蟮鞍踪|(zhì)樣品進行SDS-PAGE鑒定純度,結(jié)果表明蛋白純化效果較好,純度在90%以上,測定蛋白質(zhì)濃度為1.0mg/ml(見圖1)。
      1.5Western Blotting分析按照1.3中方法誘導表達蛋白,分別取誘導和非誘導全菌SDS-PAGE,參照常規(guī)Western Blotting方法進行操作,最后采用增強型HRP-DAB底物顯色試劑(購自北京天根生化科技公司)進行顯色。結(jié)果顯示與SDS-PAGE對比,pETNS3轉(zhuǎn)化Rosetta(DE3)誘導后在Western Blotting對應位置出現(xiàn)特異性的條帶,而對照未誘導菌則無(見圖1)。結(jié)果表明重組蛋白NS3能與陽性血清中抗體發(fā)生特異性抗原抗體反應。
      2、以重組蛋白NS3建立間接ELISA 取純化后重組蛋白NS3做包被抗原建立間接ELISA方法,采用方陣法摸索ELISA最佳蛋白包被濃度和血清稀釋濃度,以及ELISA最佳反應條件。最終確定條件如下 ①包被檢測孔重組蛋白NS3包被量為200ng/孔,對照孔硫氧還蛋白包被量為40ng/孔,4℃條件下包被24小時后甩干,采用PBST(0.05M PH7.4PBS+0.05%吐溫-20)洗滌2遍; ②封閉封閉采用PBST稀釋5%脫脂奶粉,300μl/孔,37℃條件下封閉2h后甩干,用PBST洗滌3次; ③血清作用條件血清稀釋液為PBST稀釋5%脫脂奶粉,添加5%的大腸桿菌裂解液,得100μl/孔,血清做50倍稀釋為2μl/孔;37℃條件下孵育1h后甩干,用PBST洗滌4次; ④酶標兔抗豬抗體作用條件酶標兔抗豬抗體用PBST做104倍稀釋后,100μl/孔,37℃條件下孵育1h后甩干,用PBST洗滌4次; ⑤底物顯色TMB底物100μl/孔,37℃條件下作用10min后加2M H2SO4終止反應; ⑥讀數(shù)采用酶標儀吸光度450nm下讀取數(shù)據(jù)。
      3、結(jié)果判定 檢測結(jié)果計算公式 樣品OD值=檢測孔OD值-對照孔OD值 樣品S/P值=樣品OD值/參考陽性血清OD值 判定標準當參考陽性血清OD值≥0.75,參考陰性血清OD值<0.25,同時參考陰性血清OD值/參考陽性血清OD值<0.2,表明試驗成立。血清樣品臨界S/P值為0.3,S/P≥0.3判定為陽性,S/P<0.3判定為陰性。
      ELISA重復性試驗按照確定好的ELISA條件,用參考陽性血清和參考陰性血清進行批次間重復性試驗,檢驗所建立ELISA的穩(wěn)定性,結(jié)果見下表1。結(jié)果顯示參考陽性血清10次重復性試驗后,NS3檢測孔OD值變異系數(shù)為3.8%,對照孔OD值變異系數(shù)為10.9%,檢測OD值變異系數(shù)為4.2%;參考陰性血清NS3檢測孔OD值變異系數(shù)為21%,對照孔OD值變異系數(shù)為10.5%,檢測OD值變異系數(shù)為40.6%。結(jié)果表明參考陽性血清重復性檢測變異性小,NS3檢測孔OD值和測定OD值變異系數(shù)均低于10%,檢測結(jié)果具有很好的重復性,所以該NS3-ELISA以S/P值作為判定標準;而參考陰性血清重復性變異性大,各個指標變異系數(shù)均大于10%,所以以P/N值判定結(jié)果變異性大,不適合作為本方法的判定標準。
      表1 批次間重復性試驗結(jié)果
      無交叉反應應用CSFV重組蛋白NS3建立起的間接NS3-ELISA檢測豬群中常見傳染性病毒性疾病,如豬繁殖與呼吸綜合癥病毒(PRRSV)參考陽性血清、偽狂犬病毒(PRV)參考陽性血清、口蹄疫病毒(FMDV)參考陽性血清和豬圓環(huán)病毒2型(PCV-2)參考陽性血清,結(jié)果均為陰性。表明運用NS3融合蛋白建立的相關(guān)ELISA方法與豬群中常見病原抗體之間無交叉反應。
      本發(fā)明的間接NS3-ELISA與IDEXX公司CSFV-Ab檢測試劑盒比較檢測不同年齡和種群豬的血清樣品325份,比較間接NS3-ELISA與IDEXX公司CSFV-Ab檢測試劑盒檢測結(jié)果之間一致性,結(jié)果顯示陽性血清符合率為88.42%,陰性血清符合率為85.19%,總符合率為87.08%,表明兩者之間檢測結(jié)果有較高的一致性,見下表2。
      表2 間接NS3-ELISA與IDEXX公司CSFV-Ab檢測試劑盒檢測結(jié)果對比表 IFA檢測42份NS3-ELISA與IDEXX公司CSFV-Ab檢測試劑盒檢測結(jié)果存在差異的血清樣NS3-ELISA和IDEXX公司CSFV-Ab檢測試劑盒檢測結(jié)果比較有42份樣品存在差異性,進一步采用IFA進行檢測,結(jié)果顯示與IFA結(jié)果比較NS3-ELISA的總符合率為66.67%,而IDEXX公司CSFV-Ab檢測試劑盒為33.33%。表明這42份血清樣品中NS3-ELISA檢測結(jié)果與IFA檢測結(jié)果有較好的一致性,同時從總的血清檢測結(jié)果來看NS3-ELISA在敏感性和特異性方面稍高于IDEXX公司CSFV-Ab檢測試劑盒。
      權(quán)利要求
      1.一種基于豬瘟病毒NS3建立的間接ELISA方法,其特征在于該方法根據(jù)間接ELISA的原理建立,包括如下步驟
      (1)、包被抗原的制備
      根據(jù)GenBank中豬瘟病毒全基因序列(登錄號AF351433),設(shè)計兩條引物,上游引物fP5′-GATGAGCTCGGGCCTGCCGTTTGCAAGAAG-3′,下游引物rP5′-TCTCCTCGAGTTATAGA CCAACTACCTGTTTTAGTGC-3′;通過PCR方法從豬瘟病毒兔化弱毒cDNA中擴增到長度為2049bp NS3基因序列,將其克隆到原核表達載體pET-32a(+)中,構(gòu)建重組原核表達載體pETNS3;將重組原核表達載體pETNS3轉(zhuǎn)化至大腸桿菌Rosetta(DE3)細胞,經(jīng)1mM IPTG誘導高效表達了重組蛋白NS3,該蛋白主要以包含體形式表達,部分為可溶性表達,采用Ni+親和層析方法純化得到重組蛋白NS3;
      (2)、以純化后的豬瘟病毒重組蛋白NS3做包被抗原建立間接ELISA
      ①包被用pH為9.6的0.05M碳酸鹽緩沖液稀釋包被抗原包被96孔ELISA板,檢測孔NS3蛋白包被量為200ng/孔,4℃條件下包被24小時后甩干,采用PBST洗滌2遍;
      ②封閉封閉采用PBST稀釋5%脫脂奶粉,300μl/孔,37℃條件下封閉2h后甩干,用PBST洗滌3次;
      ③血清作用條件血清樣品稀釋液為PBST稀釋5%脫脂奶粉,添加5%大腸桿菌裂解液,得100μl/孔,血清做50倍稀釋為2μl/孔;37℃條件下孵育1h后甩干,用PBST洗滌4次;
      ④酶標兔抗豬抗體作用條件酶標兔抗豬抗體用PBST做104倍稀釋后,100μl/孔,37℃條件下孵育1h后甩干,用PBST洗滌4次;
      ⑤底物顯色TMB底物100μl/孔,37℃條件下作用10min后加2M H2SO4100μl/孔,終止反應;
      ⑥讀數(shù)采用酶標儀吸光度450nm下讀取數(shù)據(jù);
      (3)、結(jié)果判定標準當參考陽性血清OD值≥0.75,參考陰性血清OD值<0.25,同時參考陰性血清OD值/參考陽性血清OD值<0.2,表明試驗成立,樣品臨界S/P值為0.3,S/P≥0.3判定為陽性,S/P<0.3判定為陰性。
      全文摘要
      一種基于豬瘟病毒(Classical Swine Fever Virus CSFV)NS3建立的間接ELISA方法,通過基因克隆表達技術(shù),獲取豬瘟病毒重組蛋白NS3。以重組蛋白NS3為包被抗原建立起間接ELISA方法,包括抗原重組蛋白NS3的制備、間接ELISA建立、判定標準的建立及臨床血清學檢測的應用??捎糜谪i群中CSFV NS3特異性抗體檢測,以此判斷豬群中CSFV NS3抗體水平、豬群中CSFV自然感染的情況,以及為CSFV E2基因工程標記疫苗提供鑒別ELISA檢測方法。目前該方法是國際上首次利用CSFV NS3建立檢測豬群中CSFV抗體的ELISA,其敏感性和特異性明顯高于基于Ems建立的ELISA。
      文檔編號C07K14/18GK101799471SQ20091021556
      公開日2010年8月11日 申請日期2009年12月23日 優(yōu)先權(quán)日2009年12月23日
      發(fā)明者余興龍, 蔣大良, 李潤成, 葛猛 申請人:湖南農(nóng)業(yè)大學
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