本發(fā)明屬于分子生物學(xué)領(lǐng)域,特別涉及一種準(zhǔn)確快速捕獲循環(huán)腫瘤細胞的方法。
背景技術(shù):
循環(huán)腫瘤細胞(ctc)是指從腫瘤上脫落并進入循環(huán)系統(tǒng)的癌細胞,ctc非常稀少,每毫升血液中109血細胞只有幾個ctc。ctc可以作為癌癥的生物標(biāo)志物,指示腫瘤的發(fā)生發(fā)展以及轉(zhuǎn)移惡變。大部分癌癥相關(guān)死亡由轉(zhuǎn)移引起,轉(zhuǎn)移過程中腫瘤細胞脫離原發(fā)灶,通過血流到達新的組織,并在一定條件下發(fā)展為轉(zhuǎn)移灶。循環(huán)腫瘤細胞(ctc)早在140多年前就被發(fā)現(xiàn),但由于其含量非常少以及分離檢測方法的局限,直到近年才日益受到廣泛關(guān)注。大部分ctcs在伴隨外周循環(huán)的過程中發(fā)生凋亡,或直接被血細胞吞噬,只有少數(shù)能逃逸并發(fā)展成為轉(zhuǎn)移灶(cancerres2003;63:3805)。這提示著我們:分離、鑒定和研究最具轉(zhuǎn)移潛能的ctc是關(guān)鍵。
ctc具有特定的標(biāo)志物,利用針對這些標(biāo)志物的抗體可以標(biāo)記、分離或檢測?,F(xiàn)有大多是將標(biāo)志物抗體偶聯(lián)在磁珠或其他固體介質(zhì)上進行ctc捕獲,其難點在于ctc數(shù)量非常低,難以進行分離提取。
技術(shù)實現(xiàn)要素:
針對上述問題,本發(fā)明的目的是提供一種簡單可行的準(zhǔn)確快速捕獲循環(huán)腫瘤細胞的方法。
為實現(xiàn)上述目的,本發(fā)明所采用的技術(shù)方案是:
一種準(zhǔn)確快速捕獲循環(huán)腫瘤細胞的方法,篩選出兩個高親合力抗體,兩個所述抗體同時結(jié)合到ctc標(biāo)志物兩個臨近的抗原表位上,分別偶聯(lián)單鏈核苷酸;
所述兩個抗體結(jié)合完成后,加入第三個單鏈核苷酸,所述第三個單鏈核苷酸與一個抗體上偶聯(lián)的單鏈核苷酸的3’端及另一個抗體上偶聯(lián)的單鏈核苷酸的5’端互補,通過退火和連接,兩個抗體上的核苷酸連接成一條完整的核苷酸鏈,與熒光探針進行雜交,利用流式分選儀對標(biāo)有熒光探針的ctc進行捕獲。
作為優(yōu)選,兩個所述抗體分別偶聯(lián)單鏈核苷酸時,核苷酸序列在人基因組中不存在。
作為優(yōu)選,所述退火和連接的條件為37℃的條件下溫浴1小時。
作為優(yōu)選,所述雜交是將熒光探針稀釋至100nm,在稀釋后的反應(yīng)溶液中加入鮭魚精dna減少非特異結(jié)合,將該溶液加入細胞中,混合均勻后置于37℃溫浴1小時。
作為優(yōu)選,兩個所述抗體分別為ec1和ac2。
本發(fā)明具有以下有益效果:
利用鄰位連接技術(shù),通過用兩個抗體同時結(jié)合一個標(biāo)志物,可以有效的捕獲到目的ctc,同時基于鄰位連接技術(shù),兩個抗體上的ssdna高效地連成了一條完整的dna分子,并被熒光探針分子識別。流式分析儀篩選計數(shù)標(biāo)本,篩選到的ctc細胞的特異性可達到99%。
附圖說明
圖1為用于捕獲目的ctc的雙標(biāo)抗體的表達和純化;
圖2為蛋白免疫共沉淀實驗證明特異性的雙標(biāo)抗體可以與ctc表面的抗原蛋白分子特異性結(jié)合;
圖3為雙標(biāo)抗體在分別混有1個ctc,10個ctc和100個ctc的10ml血液中,可以有效捕獲目的ctc;
圖4為被雙標(biāo)抗體捕獲后的ctc,同時分子交聯(lián)在雙標(biāo)抗體分子上的ssdna,退火后連接成為一條完整的dna鏈可以被熒光探針識別,并通過熒光顯微鏡檢測到。
具體實施方式
下面結(jié)合附圖對本發(fā)明的具體實施方式作進一步說明。在此需要說明的是,對于這些實施方式的說明用于幫助理解本發(fā)明,但并不構(gòu)成對本發(fā)明的限定。此外,下面所描述的本發(fā)明各個實施方式中所涉及的技術(shù)特征只要彼此之間未構(gòu)成沖突就可以相互組合。
一種準(zhǔn)確快速捕獲循環(huán)腫瘤細胞的方法,篩選出兩個高親合力抗體,兩個所述抗體同時結(jié)合到ctc標(biāo)志物兩個臨近的抗原表位上,分別偶聯(lián)單鏈核苷酸。
如圖1所示,利用大腸桿菌表達目標(biāo)抗體,破壁,再利用鎳柱親和純化目標(biāo)蛋白,采用咪唑洗脫,得到純化的目標(biāo)蛋白,用于后續(xù)的捕獲實驗。通過上述的純化手段用于后續(xù)檢測實驗的抗體的純化,以使實驗結(jié)果準(zhǔn)確。
如圖2所示,通過蛋白免疫共沉淀實驗證明,特異性的雙標(biāo)抗體可以與ctc表面的抗原蛋白分子特異性結(jié)合。圖2中,抗體1為ec1,抗體2為ac2,均是可識別epcam的蛋白;對照抗體是h10,不能喝目標(biāo)蛋白epcam結(jié)合。
兩個抗體結(jié)合完成后,加入第三個單鏈核苷酸,所述第三個單鏈核苷酸與一個抗體上偶聯(lián)的單鏈核苷酸的3’端及另一個抗體上偶聯(lián)的單鏈核苷酸的5’端互補,通過退火和連接,兩個抗體上的核苷酸連接成一條完整的核苷酸鏈,與熒光探針進行雜交,利用流式分選儀對標(biāo)有熒光探針的ctc進行捕獲。
其中,兩個所述抗體分別偶聯(lián)單鏈核苷酸時,核苷酸序列在人基因組中不存在。
退火和連接的條件為37℃的條件下溫浴1小時。
如圖3所示,雙標(biāo)抗體在分別混有1個ctc,10個ctc和100個ctc的10ml血液中,可以有效捕獲目的ctc。同時分子交聯(lián)在雙標(biāo)抗體分子上的ssdna,退火后連接成為一條完整的dna鏈,被realtimepcr實驗檢出。
如圖4所示,被雙標(biāo)抗體捕獲后的ctc,同時分子交聯(lián)在雙標(biāo)抗體分子上的ssdna,退火后連接成為一條完整的dna鏈可以被熒光探針識別,并通過熒光顯微鏡檢測到。
雜交是將熒光探針用濃度為1mg/ml的bsa稀釋至100nm,在稀釋后的反應(yīng)溶液中加入濃度為300ng/ml的鮭魚精dna減少非特異結(jié)合,將該溶液加入細胞中,混合均勻后置于37℃溫浴1小時。
雜交體系為:1mg/mlbsa;300ng/mlsalmonspermdna;1×ssc;0.05%tween20;100nm熒光探針;dh2o。其中,bsa用于封閉細胞中蛋白質(zhì)的非特異結(jié)合,降低雜交背景;salmonspermdna(鮭魚精dna)用于封閉細胞中dna的非特異結(jié)合位點,降低雜交背景、提高雜交特異性。1xssc:dna雜交緩沖液;tween20(吐溫20),非離子型表面活性劑,減少探針的非特異性結(jié)合。熒光探針:和靶序列互補的dna片段,帶有熒光信號,用于檢測。
以上結(jié)合附圖對本發(fā)明的實施方式作了詳細說明,但本發(fā)明不限于所描述的實施方式。對于本領(lǐng)域的技術(shù)人員而言,在不脫離本發(fā)明原理和精神的情況下,對這些實施方式進行多種變化、修改、替換和變型,仍落入本發(fā)明的保護范圍內(nèi)。