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      Fpg酶的制備方法及Fpg酶的反應(yīng)體系與流程

      文檔序號(hào):39617991發(fā)布日期:2024-10-11 13:32閱讀:22來(lái)源:國(guó)知局
      Fpg酶的制備方法及Fpg酶的反應(yīng)體系與流程

      本申請(qǐng)涉及生物,具體涉及一種fpg酶的制備方法及fpg酶的反應(yīng)體系。


      背景技術(shù):

      1、fpg(甲酰胺嘧啶?[fapy]-dna?糖基化酶)也稱作8-氧代鳥(niǎo)嘌呤?dna?糖基化酶),是二代測(cè)序pe測(cè)序(paired-end,雙末端測(cè)序)非常重要的酶,這種酶能夠?qū)?-氧代-7,8-二氫鳥(niǎo)嘌呤(8-氧代鳥(niǎo)嘌呤,8-oxog)切割位點(diǎn)的引物進(jìn)行剪切,但此酶進(jìn)行標(biāo)簽純化時(shí)無(wú)活性或者活性低,因此,需要對(duì)fpg酶的表達(dá)體系和純化工藝進(jìn)行了研究,提升了酶的比活以及切割活性。


      技術(shù)實(shí)現(xiàn)思路

      1、基于此,本申請(qǐng)一實(shí)施例有必要提供一種fpg酶的制備方法,該方法純化得到的酶的純度高,并具有高的酶活。

      2、具體技術(shù)方案如下:

      3、fpg酶的制備方法,該方法包括如下步驟:

      4、制備含有fpg基因的無(wú)標(biāo)簽的重組表達(dá)載體,將所述重組表達(dá)載體轉(zhuǎn)化到宿主菌中,制備重組菌;

      5、誘導(dǎo)所述重組菌表達(dá)蛋白,收集菌體,裂解菌體,制備裂解后的樣品;

      6、對(duì)所述的樣品進(jìn)行蛋白純化,制備fpg酶;

      7、其中,所述樣品包括上清液蛋白和/或包涵體蛋白;

      8、所述上清液蛋白進(jìn)行純化步驟包括:

      9、用benzonase核酸酶處理所述樣品,離心收集上清液;

      10、所述上清液經(jīng)硫酸銨沉淀,收集沉淀;

      11、重懸所述沉淀,進(jìn)行疏水層析和陽(yáng)離子親和層析純化蛋白;

      12、所述包涵體蛋白進(jìn)行純化包括如下步驟:

      13、所述樣品經(jīng)離心,收集包涵體蛋白;

      14、將所述包涵體蛋白進(jìn)行溶解和復(fù)性;

      15、復(fù)性后的包涵體蛋白經(jīng)透析后進(jìn)行陽(yáng)離子親和層析純化蛋白。

      16、在其中一個(gè)實(shí)施例中,所述疏水層析滿足如下條件中的至少一個(gè):

      17、采用hitrap?phenyl?hp層析柱;

      18、用結(jié)合緩沖液b平衡柱子;

      19、以1ml/min-3ml/min的流速進(jìn)行上樣;

      20、用所述結(jié)合液b預(yù)洗脫除去雜蛋白;以及,

      21、用結(jié)合緩沖液b與洗脫緩沖液進(jìn)行線性梯度洗脫,收集線性洗脫樣品;

      22、和/或,

      23、所述陽(yáng)離子親和層析滿足如下條件中的至少一個(gè):

      24、采用hitrap?sp?sepharose?ff層析柱;

      25、用結(jié)合緩沖液b平衡柱子;

      26、以1ml/min-3ml/min的流速進(jìn)行上樣;

      27、用所述結(jié)合緩沖液b預(yù)洗脫除去雜蛋白;以及,

      28、用結(jié)合緩沖液b與洗脫緩沖液進(jìn)行線性梯度洗脫,收集線性洗脫樣品;

      29、其中,所述結(jié)合緩沖液b包括20mm-25mm?tris-hcl、50mm-55mm?nacl以及5%v/v-8%v/v甘油,ph值為7.2-7.6;

      30、所述洗脫緩沖液包括20mm-25mm?tris-hcl、1m-2m?nacl以及5%v/v-8%v/v甘油,ph值為7.2-7.6。

      31、在其中一個(gè)實(shí)施例中,將所述包涵體蛋白進(jìn)行溶解和復(fù)性的步驟包括如下:

      32、所述包涵體蛋白經(jīng)洗滌緩沖液洗滌,離心,用溶解緩沖液溶解所得沉淀,處理3h-5h后低溫離心獲得可溶性包涵體蛋白;以及,

      33、向所述可溶性包涵體蛋白中加入復(fù)性緩沖液,待所述可溶性包涵體蛋白復(fù)性后離心收集上清,透析;

      34、其中,所述洗滌緩沖液包括20mm-25mm?tris-hcl、1m-2m?edta、2m-3?m尿素、1m-2mnacl、1%v/v-2%v/v?tritonx-100,ph8.0-8.5;

      35、所述溶解緩沖液包括20mm-25mm?tris-hcl、100mm-105mm?nacl、5mm-6mm?dtt、8m-9m尿素、0.1%m/v-0.3%m/v?peg8000、50mm-55mm?l-arg以及5%v/v-8%v/v甘油,ph值為8.0-8.5;

      36、所述復(fù)性緩沖液包括20mm-25mm?tris-hcl、100mm-120mm?nacl、0.1%m/v-0.3%m/vpeg8000、50mm-55mm?l-arg、5%v/v-8%v/v甘油,ph值為8.0-8.5。

      37、所述的制備方法得到的fpg酶。

      38、fpg酶的緩沖液,所述緩沖液包括以下工作濃度的組分:10mm-12mm?bis-tris-propane-hcl、10mm-12mm?mgcl2、1mm-2mm?dtt和100μg/ml-110μg/ml?recombinantalbumin,ph值為8.5-9.0。

      39、fpg酶的反應(yīng)體系,所述反應(yīng)體系包括2μm-5μm含8-氧代鳥(niǎo)嘌呤切割位點(diǎn)的核酸序列、10mm-12mm?bis-tris-propane-hcl、10mm-12mm?mgcl2、1mm-2mm?dtt、0.32u/μl-2u/μlfpg酶和100μg/ml-110μg/ml?recombinant?albumin。

      40、相對(duì)于傳統(tǒng)技術(shù),本申請(qǐng)具備如下有益效果:

      41、本申請(qǐng)對(duì)fpg酶的表達(dá)體系和純化工藝進(jìn)行了研究,通過(guò)無(wú)標(biāo)簽fpg酶表達(dá)純化工藝所得到的無(wú)標(biāo)簽fpg酶的純度高,且具有更高的酶活,并通過(guò)優(yōu)化fpg酶反應(yīng)體系來(lái)提升該酶對(duì)含8-氧代鳥(niǎo)嘌呤切割位點(diǎn)核酸的切割效率。



      技術(shù)特征:

      1.fpg酶的制備方法,其特征在于,該方法包括如下步驟:

      2.根據(jù)權(quán)利要求1所述的制備方法,其特征在于,誘導(dǎo)所述重組菌表達(dá)蛋白的步驟包括將菌體培養(yǎng)至od600值為0.5-0.8,用iptg誘導(dǎo)表達(dá);

      3.根據(jù)權(quán)利要求1所述的制備方法,其特征在于,所述硫酸銨沉淀的步驟包括向所述上清液中加入飽和硫酸銨溶液,使硫酸銨達(dá)到30%-70%飽和度,冷藏處理,離心獲得沉淀。

      4.根據(jù)權(quán)利要求3所述的制備方法,其特征在于,所述硫酸銨沉淀為硫酸銨分級(jí)沉淀,其包括如下步驟:

      5.根據(jù)權(quán)利要求1-4r任一項(xiàng)所述的制備方法,其特征在于,用結(jié)合緩沖液a重懸所述沉淀,制備上柱樣品,所述上柱樣品采用疏水層析進(jìn)行蛋白純化,經(jīng)透析后采用陽(yáng)離子親和層析進(jìn)行蛋白純化;其中,所述結(jié)合緩沖液a包括20mm-25mm?tris-hcl、2mm-3mm?nacl以及5%v/v-8%v/v甘油,ph值為7.2-7.6。

      6.根據(jù)權(quán)利要求1或2所述的制備方法,其特征在于,所述疏水層析滿足如下條件中的至少一個(gè):

      7.根據(jù)權(quán)利要求1或2所述的制備方法,其特征在于,將所述包涵體蛋白進(jìn)行溶解和復(fù)性的步驟包括如下:

      8.fpg酶的緩沖液,其特征在于,所述緩沖液包括以下工作濃度的組分:10mm-12mmbis-tris-propane-hcl、10mm-12mm?mgcl2、1mm-2mm?dtt和100μg/ml-110μg/mlrecombinant?albumin,ph值為8.5-9.0。

      9.fpg酶的反應(yīng)體系,其特征在于,所述反應(yīng)體系包括2μm-5μm含8-氧代鳥(niǎo)嘌呤切割位點(diǎn)的核酸序列、10mm-12mm?bis-tris-propane-hcl、10mm-12mm?mgcl2、1mm-2mm?dtt、0.32u/μl-2u/μl?fpg酶和100μg/ml-110μg/ml?recombinant?albumin。

      10.fpg酶活的檢測(cè)方法,其特征在于,該方法包括采用權(quán)利要求9所述的反應(yīng)體系進(jìn)行切割反應(yīng);


      技術(shù)總結(jié)
      本申請(qǐng)涉及Fpg酶的制備方法及Fpg酶的反應(yīng)體系,該制備方法如下步驟:制備含有FPG基因的無(wú)標(biāo)簽的重組表達(dá)載體,將所述重組表達(dá)載體轉(zhuǎn)化到宿主菌中,制備重組菌;誘導(dǎo)所述重組菌表達(dá)蛋白,收集菌體,裂解菌體,制備裂解后的樣品;對(duì)所述的樣品進(jìn)行蛋白純化,制備Fpg酶;其中,所述樣品包括上清液蛋白;所述上清液蛋白進(jìn)行純化步驟包括:用Benzonase核酸酶處理所述樣品,離心收集上清液;所述上清液經(jīng)硫酸銨沉淀,收集沉淀;重懸所述沉淀,進(jìn)行疏水層析和陽(yáng)離子親和層析純化蛋白。制備得到的酶活性高,且純度高。

      技術(shù)研發(fā)人員:劉金枝,李漢東,鄒艷,劉鵬
      受保護(hù)的技術(shù)使用者:深圳市大道測(cè)序生物科技有限公司
      技術(shù)研發(fā)日:
      技術(shù)公布日:2024/10/10
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