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      一種凝血酶的提取方法

      文檔序號(hào):10467088閱讀:948來源:國(guó)知局
      一種凝血酶的提取方法
      【專利摘要】本發(fā)明涉及酶提取領(lǐng)域,公開了一種凝血酶的提取方法,包括:a、向血液中加入抗凝劑,離心分離后取上清液得到抗凝血漿;b、將抗凝血漿經(jīng)過層析、洗脫后,制得凝血酶原溶液;c、向凝血酶溶液中添加活化劑進(jìn)行活化,制得凝血酶粗液;d、將磁性吸附微球加入到凝血酶粗液中并進(jìn)行攪拌,用磁石對(duì)磁性吸附微球進(jìn)行吸附;取出磁性吸附微球后用含氯化鈉的Tris?HCl緩沖液洗滌,再用含氯化鈉的Tris?HCl緩沖液對(duì)磁性吸附微球進(jìn)行洗脫,然后用磁石分離收集洗脫液;e、對(duì)洗脫液經(jīng)過透析脫鹽和濃縮后,最后經(jīng)過冷凍干燥制得凝血酶。本發(fā)明方法提取時(shí)間短、效率高,提取的凝血酶純度、比活高。且磁性吸附微球可重復(fù)利用,成本低。
      【專利說明】
      一種凝血酶的提取方法
      技術(shù)領(lǐng)域
      [0001 ]本發(fā)明涉及酶提取領(lǐng)域,尤其涉及一種凝血酶的提取方法。
      【背景技術(shù)】
      [0002] 凝血酶是一種專一性很強(qiáng)的絲氨酸蛋白水解酶,能水解血纖維蛋白原的四個(gè)Arg-Gly肽鍵,產(chǎn)生不溶性的血纖維蛋白,使血液變成凝膠而發(fā)生凝固。因此凝血酶作為止血?jiǎng)?廣泛地應(yīng)用于醫(yī)藥領(lǐng)域中。
      [0003] 目前凝血酶的制備工藝,一般包括以下過程:在動(dòng)物血漿中加入抗凝劑制得抗凝 血漿,然后通過吸附洗脫、沉淀等方法制得凝血酶原,將凝血酶原激活后,制得凝血酶粗液, 將凝血酶粗液再進(jìn)一步純化,干燥后制得粉狀凝血酶。
      [0004] 申請(qǐng)?zhí)枮?61036508的中國(guó)專利公開了 一種牛凝血酶的提取分離方法:把過量的 枸緣酸鈉加入牛血液中,在常規(guī)離心分離出的??鼓獫{中加入氯化鋇溶液,用帆布過濾 出沉淀物,壓干,硫酸銨溶液洗脫、鹽析、激活,再經(jīng)CN-S印hadexC-50柱層析制得牛凝血酶。
      [0005] 申請(qǐng)?zhí)枮?007101564302的中國(guó)專利公開了一種凝血酶原分離及其激活的方法, 該方法利用透析或超濾控制凝血酶原粗提液的電導(dǎo)率的方法,使凝血酶原粗提液中的雜蛋 白和凝血酶原在不同的電導(dǎo)率下發(fā)生沉淀,從而使凝血酶原和雜蛋白分離。另一方面,選用 碳酸鈣作為激活劑對(duì)凝血酶原進(jìn)行激活。
      [0006] 通過上述方法雖然能夠從動(dòng)物血液中提取出凝血酶,但是提取效率較低,提取過 程中凝血酶損失較多,且制得的產(chǎn)品純度也不夠高。

      【發(fā)明內(nèi)容】

      [0007] 為了解決上述技術(shù)問題,本發(fā)明提供了一種凝血酶的提取方法。本發(fā)明方法提取 時(shí)間短、效率高,提取的凝血酶純度、比活高。且磁性吸附微球可重復(fù)利用,成本低。
      [0008] 本發(fā)明的具體技術(shù)方案為:一種凝血酶的提取方法,包括以下步驟: a、向血液中加入抗凝劑,離心分離后取上清液,制得抗凝血漿。
      [0009] b、將抗凝血漿經(jīng)過陰離子層析柱層析,并用洗脫劑對(duì)層析柱進(jìn)行洗脫后,制得凝 血酶原溶液。
      [0010] C、向凝血酶溶液中添加活化劑進(jìn)行活化60-90min,制得凝血酶粗液。
      [0011] d、將磁性吸附微球加入到凝血酶粗液中并進(jìn)行攪拌,20-40min后用磁石隔著容器 壁對(duì)磁性吸附微球進(jìn)行吸附;取出磁性吸附微球后用含0.05-0.15mol/L氯化鈉的pH值為 7.2的Tris-HCl緩沖液洗滌,再用含1.75-2.25mol/L氯化鈉的pH值為7.2的Tris-HCl緩沖液 對(duì)磁性吸附微球進(jìn)行洗脫,然后用磁石分離收集洗脫液。
      [0012] e、對(duì)洗脫液經(jīng)過透析脫鹽和濃縮后,最后經(jīng)過冷凍干燥制得凝血酶。
      [0013] 本發(fā)明采用磁性吸附微球?qū)δ高M(jìn)行親和吸附純化,與傳統(tǒng)層析法純化相比, 其對(duì)凝血酶的吸附量大,吸附效率高,純化度高,純化后的凝血酶比活高,且可減少洗脫液 用量,磁性吸附微球可回收利用,大大降低了成本。
      [0014] 作為優(yōu)選,步驟a中所述抗凝劑為4_5wt%的檸檬酸鈉溶液,且抗凝劑的添加量為 血液體積的4-6%。
      [0015] 作為優(yōu)選,步驟b中所述洗脫劑為pH值為6-8的檸檬酸鈉溶液。
      [0016] 作為優(yōu)選,步驟c中所述活化劑為氯化鈣溶液,所述活化劑添加后鈣離子的濃度為 0?2-0?25mol/L。
      [0017] 作為優(yōu)選,在步驟c制得凝血酶粗液后,在進(jìn)行步驟d之前,凝血酶粗液還經(jīng)過泡沫 純化處理:將凝血酶粗液轉(zhuǎn)移至泡沫分離柱中,對(duì)泡沫分離柱的底部進(jìn)行鼓氣,其中,泡沫 分離柱的內(nèi)徑為8-10mm,凝血酶粗液的裝載高度為40-60cm,鼓氣速率為1.5-2.5L/min,凝 血酶粗液溫度為30-40°C ;鼓氣后在泡沫分離柱頂部收集泡沫液,并對(duì)泡沫液加熱滅泡。
      [0018] 本發(fā)明在步驟c中制得凝血酶粗液后,對(duì)其進(jìn)行泡沫純化處理,泡沫純化法方法簡(jiǎn) 單,無污染、時(shí)間短,成本低。其依據(jù)表面吸附原理,對(duì)液體進(jìn)行鼓泡后,泡沫分離柱頂部鼓 出泡沫,以泡沫為載體,凝血酶聚集在氣液界面(即泡沫表面)上,而其他物質(zhì)非蛋白物質(zhì)以 及部分雜蛋白物質(zhì)仍舊存留在液體中,分離收集泡沫液實(shí)現(xiàn)分離,滅泡后即得到純化后的 凝血酶。再經(jīng)過后續(xù)的純化后,制得的凝血酶純度更高,比活更高。
      [0019] 作為優(yōu)選,凝血酶粗液在轉(zhuǎn)移至泡沫分離柱前,向凝血酶粗液中添加凝血酶粗液 質(zhì)量1-3%的環(huán)糊精并攪拌均勻。
      [0020] 雖然泡沫純化法具有許多優(yōu)點(diǎn),但是對(duì)于凝血酶粗液而言,由于其自身的乳化、氣 泡性能較差,會(huì)造成泡沫純化過程中的氣泡效率低下,純化時(shí)間長(zhǎng),純化效果降低。如果添 加普通的乳化劑又會(huì)帶來更多雜質(zhì),從而影響純化度。環(huán)糊精的內(nèi)部具有疏水空腔,而其 表面具有親水端基,在泡沫純化前與凝血酶粗液混合并與凝血酶復(fù)合后,能夠增加液體的 乳化活性,使得液體的起泡性能增加,從而增加回收率。并且在后續(xù)過程中,環(huán)糊精與凝 血酶容易洗脫分離,對(duì)純度的影響較小。
      [0021] 作為優(yōu)選,步驟d中所述磁性吸附微球的粒徑為20-60微米,包括四氧化三鐵磁粉、 包裹于磁粉外表面的復(fù)合材料以及與復(fù)合材料偶聯(lián)的配基。
      [0022]在上述磁性吸附微球,四氧化三鐵作為磁核,復(fù)合材料作為吸附載體,而配基能夠 增加與凝血酶的親和性,提高凝血酶的收率。
      [0023]作為優(yōu)選,所述磁性吸附微球的制備方法為:將環(huán)糊精、殼聚糖溶解于5_7wt% 的乙酸溶液中,制得混合溶液,其中環(huán)糊精的濃度為l_2wt%,殼聚糖的濃度為2_4wt% ; 向混合溶液中添加環(huán)糊精和殼聚糖總質(zhì)量0.6-1.0倍的四氧化三鐵磁粉,在超聲波分散 條件下繼續(xù)向混合溶液中逐漸滴加混合溶液體積〇. 5-1倍的乳化液;混合溶液充分乳化后, 繼續(xù)添加乳化后混合溶液體積1-3%的6-lOwt%戊二醛溶液并攪拌均勻,然后用磁石隔著 容器壁對(duì)磁粉進(jìn)行吸附,去除上清液,取固體物質(zhì)并洗凈后制得磁性微球;將磁性微球浸沒 于水中溶脹5-10min后取出,按固液比0.75-0.1.25g/mL將磁性微球加入到活化液中,在40-50°C活化0.5-1.5h,取出磁性微球并洗凈;將肝素與磁性微球按質(zhì)量比0.4-0.5:1混合制得 懸浮液,將懸浮液pH值調(diào)節(jié)至4-5,添加懸浮液體積2-3倍的3wt %的1-乙基-3-二甲氨丙基-碳二亞胺,在4°C下靜置10_14h,取出磁性微球并洗凈后、干燥后,制得磁性吸附微球。
      [0024]本發(fā)明方法制得的磁性吸附微球,以四氧化三鐵為磁核,以環(huán)糊精和殼聚糖的 復(fù)合材料包裹磁核,在復(fù)合材料商偶聯(lián)上對(duì)凝血酶具有親和性的肝素,制得的磁性吸附微 球,對(duì)凝血酶的特異性吸附效果好,吸附量大,吸附效果高;且純化方法簡(jiǎn)單,可重復(fù)利用, 降低成本。其中,以環(huán)糊精和殼聚糖的復(fù)合材料作為載體,不僅提高了磁性吸附微球的吸 附容量,而且在前序的泡沫純化步驟中,環(huán)糊精與凝血酶復(fù)合后,由于也含有環(huán)糊精, 因此其對(duì)凝血酶的親和性進(jìn)一步增強(qiáng),使得吸附效率、純化效果更好。
      [0025] 作為優(yōu)選,所述乳化液由等體積的吐溫-60和無水乙醇組成;所述活化液由lmol/L 的氫氧化鈉溶液、二甲基亞砜和環(huán)氧氯丙烷按體積比6-8:1:0.6-0.8組成。
      [0026]作為優(yōu)選,步驟d中,所述磁性吸附微球的質(zhì)量為凝血酶粗液的0.25-1%。
      [0027] 與現(xiàn)有技術(shù)對(duì)比,本發(fā)明的有益效果是:本發(fā)明方法提取時(shí)間短、效率高,提取的 凝血酶純度、比活高。且磁性吸附微球可重復(fù)利用,成本低。
      【具體實(shí)施方式】
      [0028] 下面結(jié)合實(shí)施例對(duì)本發(fā)明作進(jìn)一步的描述。
      [0029] 實(shí)施例1 一種凝血酶的提取方法,包括以下步驟: a、取豬新鮮血液,向血液中加入4.5wt %的檸檬酸鈉溶液,檸檬酸鈉溶液的體積為血液 體積的5%,離心分離后取上清液,制得抗凝血漿。
      [0030] b、將抗凝血漿經(jīng)過陰離子層析柱層析,并用pH值為7左右的檸檬酸鈉溶液對(duì)層析 柱進(jìn)行洗脫后,制得凝血酶原溶液。
      [0031] c、向凝血酶溶液中添加氯化鈣溶液,進(jìn)行活化75min,添加后鈣離子的濃度為 0.225mol/L,活化后制得凝血酶粗液。
      [0032]向凝血酶粗液中添加凝血酶粗液質(zhì)量2%的環(huán)糊精并攪拌均勻。將凝血酶粗液 轉(zhuǎn)移至泡沫分離柱中,對(duì)泡沫分離柱的底部進(jìn)行鼓氣,其中,泡沫分離柱的內(nèi)徑為9mm,凝血 酶粗液的裝載高度為50cm,鼓氣速率為2L/min,凝血酶粗液溫度為35°C ;鼓氣后在泡沫分離 柱頂部收集泡沫液,并對(duì)泡沫液加熱至55°C滅泡,制得純化后的凝血酶粗液。
      [0033] d、磁性吸附微球的制備:將環(huán)糊精、殼聚糖溶解于6wt %的乙酸溶液中,制得混 合溶液,其中環(huán)糊精的濃度為1.5wt%,殼聚糖的濃度為3wt% ;向混合溶液中添加環(huán)糊 精和殼聚糖總質(zhì)量0.8倍的四氧化三鐵磁粉,在超聲波分散條件下繼續(xù)向混合溶液中逐漸 滴加混合溶液體積0.75倍的乳化液;所述乳化液由等體積的吐溫-60和無水乙醇組成?;旌?溶液充分乳化后,繼續(xù)添加乳化后混合溶液體積2%的8wt%戊二醛溶液并攪拌均勻,然后 用磁石隔著容器壁對(duì)磁粉進(jìn)行吸附,去除上清液,取固體物質(zhì)并洗凈后制得磁性微球;將磁 性微球浸沒于水中溶脹7.5min后取出,按固液比lg/mL將磁性微球加入到活化液中,所述活 化液由lmol/L的氫氧化鈉溶液、二甲基亞砜和環(huán)氧氯丙烷按體積比7:1:0.7組成。在45°C活 化lh,取出磁性微球并洗凈;將肝素與磁性微球按質(zhì)量比0.45:1混合制得懸浮液,將懸浮液 pH值調(diào)節(jié)至4.5左右,添加懸浮液體積2.5倍的3wt%的1-乙基-3-二甲氨丙基-碳二亞胺,在 4°C下靜置12h,取出磁性微球并洗凈后、干燥后,制得粒徑為20-60微米的磁性吸附微球。
      [0034]將磁性吸附微球加入到純化后的凝血酶粗液中并進(jìn)行攪拌,所述磁性吸附微球的 質(zhì)量為凝血酶粗液的0.65 %。攪拌30min后用磁石隔著容器壁對(duì)磁性吸附微球進(jìn)行吸附;取 出磁性吸附微球后用含0. lmol/L氯化鈉的pH值為7.2的Tris-HCl緩沖液洗滌,再用含2mol/ L氯化鈉的pH值為7.2的Tris-HCl緩沖液對(duì)磁性吸附微球進(jìn)行洗脫,然后用磁石分離收集洗 脫液,并將此洗脫液標(biāo)記為A1。
      [0035] e、對(duì)洗脫液經(jīng)過常規(guī)方法的透析脫鹽和濃縮后,最后經(jīng)過冷凍干燥制得凝血酶。
      [0036] 實(shí)施例2 一種凝血酶的提取方法,包括以下步驟: a、取豬新鮮血液,向血液中加入4wt %的檸檬酸鈉溶液,檸檬酸鈉溶液的體積為血液體 積的4%,離心分離后取上清液,制得抗凝血漿。
      [0037] b、將抗凝血漿經(jīng)過陰離子層析柱層析,并用pH值為6左右的檸檬酸鈉溶液對(duì)層析 柱進(jìn)行洗脫后,制得凝血酶原溶液。
      [0038] c、向凝血酶溶液中添加氯化鈣溶液,進(jìn)行活化60min,添加后鈣離子的濃度為 0.2mol/L,活化后制得凝血酶粗液。
      [0039] 向凝血酶粗液中添加凝血酶粗液質(zhì)量1 %的環(huán)糊精并攪拌均勻。將凝血酶粗液 轉(zhuǎn)移至泡沫分離柱中,對(duì)泡沫分離柱的底部進(jìn)行鼓氣,其中,泡沫分離柱的內(nèi)徑為8mm,凝血 酶粗液的裝載高度為60cm,鼓氣速率為1.5L/min,凝血酶粗液溫度為40 °C;鼓氣后在泡沫分 離柱頂部收集泡沫液,并對(duì)泡沫液加熱至50°C滅泡,制得純化后的凝血酶粗液。
      [0040] d、磁性吸附微球的制備:將e-環(huán)糊精、殼聚糖溶解于5wt %的乙酸溶液中,制得混 合溶液,其中環(huán)糊精的濃度為lwt%,殼聚糖的濃度為向混合溶液中添加環(huán)糊精 和殼聚糖總質(zhì)量0.6倍的四氧化三鐵磁粉,在超聲波分散條件下繼續(xù)向混合溶液中逐漸滴 加混合溶液體積0.5倍的乳化液;所述乳化液由等體積的吐溫-60和無水乙醇組成?;旌先?液充分乳化后,繼續(xù)添加乳化后混合溶液體積1%的l〇wt%戊二醛溶液并攪拌均勻,然后用 磁石隔著容器壁對(duì)磁粉進(jìn)行吸附,去除上清液,取固體物質(zhì)并洗凈后制得磁性微球;將磁性 微球浸沒于水中溶脹5min后取出,按固液比0.75g/mL將磁性微球加入到活化液中,所述活 化液由lmol/L的氫氧化鈉溶液、二甲基亞砜和環(huán)氧氯丙烷按體積比6:1:0.6組成。在40°C活 化1.5h,取出磁性微球并洗凈;將肝素與磁性微球按質(zhì)量比0.4:1混合制得懸浮液,將懸浮 液pH值調(diào)節(jié)至4左右,添加懸浮液體積2倍的3wt %的1-乙基-3-二甲氨丙基-碳二亞胺,在4 °C下靜置10h,取出磁性微球并洗凈后、干燥后,制得粒徑為20-60微米的磁性吸附微球。
      [0041] 將磁性吸附微球加入到純化后的凝血酶粗液中并進(jìn)行攪拌,所述磁性吸附微球的 質(zhì)量為凝血酶粗液的0.25 %。攪拌20min后用磁石隔著容器壁對(duì)磁性吸附微球進(jìn)行吸附;取 出磁性吸附微球后用含0.0 5 m 〇 1 / L氯化鈉的p H值為7.2的T r i s - H C1緩沖液洗滌,再用含 1.75mol/L氯化鈉的pH值為7.2的Tris-HCl緩沖液對(duì)磁性吸附微球進(jìn)行洗脫,然后用磁石分 離收集洗脫液,并將此洗脫液標(biāo)記為A2。
      [0042] e、對(duì)洗脫液經(jīng)過常規(guī)方法的透析脫鹽和濃縮后,最后經(jīng)過冷凍干燥制得凝血酶。 [0043] 實(shí)施例3 一種凝血酶的提取方法,包括以下步驟: a、取豬新鮮血液,向血液中加入5wt %的檸檬酸鈉溶液,檸檬酸鈉溶液的體積為血液體 積的6%,離心分離后取上清液,制得抗凝血漿。
      [0044] b、將抗凝血漿經(jīng)過陰離子層析柱層析,并用pH值為8左右的檸檬酸鈉溶液對(duì)層析 柱進(jìn)行洗脫后,制得凝血酶原溶液。
      [0045] c、向凝血酶溶液中添加氯化鈣溶液,進(jìn)行活化9 0 m i n,添加后鈣離子的濃度為 0.25mol/L,活化后制得凝血酶粗液。
      [0046] 向凝血酶粗液中添加凝血酶粗液質(zhì)量3%的環(huán)糊精并攪拌均勻。將凝血酶粗液 轉(zhuǎn)移至泡沫分離柱中,對(duì)泡沫分離柱的底部進(jìn)行鼓氣,其中,泡沫分離柱的內(nèi)徑為10mm,凝 血酶粗液的裝載高度為40cm,鼓氣速率為2.5L/min,凝血酶粗液溫度為30°C ;鼓氣后在泡沫 分離柱頂部收集泡沫液,并對(duì)泡沫液加熱至60°C滅泡,制得純化后的凝血酶粗液。
      [0047] d、磁性吸附微球的制備:將環(huán)糊精、殼聚糖溶解于7wt %的乙酸溶液中,制得混 合溶液,其中環(huán)糊精的濃度為2wt%,殼聚糖的濃度為向混合溶液中添加環(huán)糊精 和殼聚糖總質(zhì)量1.0倍的四氧化三鐵磁粉,在超聲波分散條件下繼續(xù)向混合溶液中逐漸滴 加混合溶液體積1倍的乳化液;所述乳化液由等體積的吐溫-60和無水乙醇組成?;旌先芤?充分乳化后,繼續(xù)添加乳化后混合溶液體積3%的6wt%戊二醛溶液并攪拌均勻,然后用磁 石隔著容器壁對(duì)磁粉進(jìn)行吸附,去除上清液,取固體物質(zhì)并洗凈后制得磁性微球;將磁性微 球浸沒于水中溶脹l〇min后取出,按固液比0.1.25g/mL將磁性微球加入到活化液中,所述活 化液由lmol/L的氫氧化鈉溶液、二甲基亞砜和環(huán)氧氯丙烷按體積比8:1:0.8組成。在50°C活 化0.5h,取出磁性微球并洗凈;將肝素與磁性微球按質(zhì)量比0.5:1混合制得懸浮液,將懸浮 液pH值調(diào)節(jié)至5左右,添加懸浮液體積3倍的3wt %的1-乙基-3-二甲氨丙基-碳二亞胺,在4 °C下靜置14h,取出磁性微球并洗凈后、干燥后,制得粒徑為20-60微米的磁性吸附微球。 [0048]將磁性吸附微球加入到純化后的凝血酶粗液中并進(jìn)行攪拌,所述磁性吸附微球的 質(zhì)量為凝血酶粗液的1 %。攪拌40min后用磁石隔著容器壁對(duì)磁性吸附微球進(jìn)行吸附;取出 磁性吸附微球后用含〇.15mol/L氯化鈉的pH值為7.2的Tris-HCl緩沖液洗滌,再用含 2.25mol/L氯化鈉的pH值為7.2的Tris-HCl緩沖液對(duì)磁性吸附微球進(jìn)行洗脫,然后用磁石分 離收集洗脫液,并將此洗脫液標(biāo)記為A3。
      [0049] e、對(duì)洗脫液經(jīng)過常規(guī)方法的透析脫鹽和濃縮后,最后經(jīng)過冷凍干燥制得凝血酶。
      [0050] 實(shí)施例4 實(shí)施例4與實(shí)施例1的不同之處在于,實(shí)施例4的步驟c中,凝血酶粗液在泡沫純化前不 添加環(huán)糊精。其中,對(duì)實(shí)施例4中步驟e之前得到的洗脫液標(biāo)記為A4。
      [0051 ] 實(shí)施例5 實(shí)施例5與實(shí)施例1的不同之處在于,實(shí)施例5的步驟c中,凝血酶粗液不經(jīng)過泡沫純化。 其中,對(duì)實(shí)施例5中步驟e之前得到的洗脫液標(biāo)記為A5。
      [0052]按照《中國(guó)藥典》2010版二部中有關(guān)凝血酶效價(jià)標(biāo)準(zhǔn)測(cè)檢測(cè)方法對(duì)實(shí)施例1-5中的 A1-5進(jìn)行凝血酶效價(jià)檢測(cè);按照《中國(guó)藥典》2010版二部附錄VII M的蛋白質(zhì)含量測(cè)定法中 福林酚法對(duì)實(shí)施例1-5中國(guó)的A1-5進(jìn)行蛋白濃度測(cè)定。測(cè)試結(jié)果如下表所示。
      [0053]本發(fā)明中所用原料、設(shè)備,若無特別說明,均為本領(lǐng)域的常用原料、設(shè)備;本發(fā)明中 所用方法,若無特別說明,均為本領(lǐng)域的常規(guī)方法。
      [0054]以上所述,僅是本發(fā)明的較佳實(shí)施例,并非對(duì)本發(fā)明作任何限制,凡是根據(jù)本發(fā)明 技術(shù)實(shí)質(zhì)對(duì)以上實(shí)施例所作的任何簡(jiǎn)單修改、變更以及等效變換,均仍屬于本發(fā)明技術(shù)方 案的保護(hù)范圍。
      【主權(quán)項(xiàng)】
      1. 一種凝血酶的提取方法,其特征在于包括以下步驟: a、 向血液中加入抗凝劑,離心分離后取上清液,制得抗凝血漿; b、 將抗凝血漿經(jīng)過陰離子層析柱層析,并用洗脫劑對(duì)層析柱進(jìn)行洗脫后,制得凝血酶 原溶液; c、 向凝血酶溶液中添加活化劑進(jìn)行活化60-90min,制得凝血酶粗液; d、 將磁性吸附微球加入到凝血酶粗液中并進(jìn)行攪拌,20-40min后用磁石隔著容器壁對(duì) 磁性吸附微球進(jìn)行吸附;取出磁性吸附微球后用含0.05-0.15mol/L氯化鈉的pH值為7.2的 Tris-HCl緩沖液洗滌,再用含1.75-2.25 mol/L氯化鈉的pH值為7.2的Tris-HCl緩沖液對(duì)磁 性吸附微球進(jìn)行洗脫,然后用磁石分離收集洗脫液; e、 對(duì)洗脫液經(jīng)過透析脫鹽和濃縮后,最后經(jīng)過冷凍干燥制得凝血酶。2. 如權(quán)利要求1所述的一種凝血酶的提取方法,其特征在于,步驟a中所述抗凝劑為4-5wt%的檸檬酸鈉溶液,且抗凝劑的添加量為血液體積的4-6%。3. 如權(quán)利要求1所述的一種凝血酶的提取方法,其特征在于,步驟b中所述洗脫劑為pH 值為6-8的檸檬酸鈉溶液。4. 如權(quán)利要求1所述的一種凝血酶的提取方法,其特征在于,步驟c中所述活化劑為氯 化鈣溶液,所述活化劑添加后鈣離子的濃度為0.2-0.25mol/L。5. 如權(quán)利要求1所述的一種凝血酶的提取方法,其特征在于,在步驟c制得凝血酶粗液 后,在進(jìn)行步驟d之前,凝血酶粗液還經(jīng)過泡沫純化處理:將凝血酶粗液轉(zhuǎn)移至泡沫分離柱 中,對(duì)泡沫分離柱的底部進(jìn)行鼓氣,其中,泡沫分離柱的內(nèi)徑為8-10mm,凝血酶粗液的裝載 高度為40-60cm,鼓氣速率為1.5-2.5L/min,凝血酶粗液溫度為30-40°C ;鼓氣后在泡沫分離 柱頂部收集泡沫液,并對(duì)泡沫液加熱滅泡。6. 如權(quán)利要求5所述的一種凝血酶的提取方法,其特征在于,凝血酶粗液在轉(zhuǎn)移至泡沫 分離柱前,向凝血酶粗液中添加凝血酶粗液質(zhì)量1-3%的β-環(huán)糊精并攪拌均勻。7. 如權(quán)利要求1所述的一種凝血酶的提取方法,其特征在于,步驟d中所述磁性吸附微 球的粒徑為20-60微米,包括四氧化三鐵磁粉、包裹于磁粉外表面的復(fù)合材料以及與復(fù)合材 料偶聯(lián)的配基。8. 如權(quán)利要求7所述的一種凝血酶的提取方法,其特征在于,所述磁性吸附微球的制備 方法為:將β-環(huán)糊精、殼聚糖溶解于5-7wt%的乙酸溶液中,制得混合溶液,其中β-環(huán)糊精的 濃度為l_2wt%,殼聚糖的濃度為2-4wt%;向混合溶液中添加 β-環(huán)糊精和殼聚糖總質(zhì)量0.6-1.0倍的四氧化三鐵磁粉,在超聲波分散條件下繼續(xù)向混合溶液中逐漸滴加混合溶液體積 〇. 5-1倍的乳化液;混合溶液充分乳化后,繼續(xù)添加乳化后混合溶液體積1-3%的6-lOwt%戊 二醛溶液并攪拌均勻,然后用磁石隔著容器壁對(duì)磁粉進(jìn)行吸附,去除上清液,取固體物質(zhì)并 洗凈后制得磁性微球;將磁性微球浸沒于水中溶脹5-10min后取出,按固液比0.75_ 0.1.25g/mL將磁性微球加入到活化液中,在40-50°C活化0.5-1.5h,取出磁性微球并洗凈; 將肝素與磁性微球按質(zhì)量比〇. 4-0.5:1混合制得懸浮液,將懸浮液pH值調(diào)節(jié)至4-5,添加懸 浮液體積2-3倍的3wt%的1-乙基-3-二甲氨丙基-碳二亞胺,在4°C下靜置10_14h,取出磁性 微球并洗凈后、干燥后,制得磁性吸附微球。9. 如權(quán)利要求1或8所述的一種凝血酶的提取方法,其特征在于,所述乳化液由等體積 的吐溫-60和無水乙醇組成;所述活化液由lmol/L的氫氧化鈉溶液、二甲基亞砜和環(huán)氧氯丙 烷按體積比6-8:1:0.6-0.8組成。10.如權(quán)利要求1或8所述的一種凝血酶的提取方法,其特征在于,步驟d中,所述磁性吸 附微球的質(zhì)量為凝血酶粗液的〇. 25-1%。
      【文檔編號(hào)】C12N9/74GK105821025SQ201610214486
      【公開日】2016年8月3日
      【申請(qǐng)日】2016年4月6日
      【發(fā)明人】柯祖敏, 泮立珽, 吳方策
      【申請(qǐng)人】浙江豐安生物制藥有限公司
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