本發(fā)明涉及微生物技術(shù)領(lǐng)域,特別涉及一種可抑制生物浸出過程中黃鉀鐵礬生成的寡營養(yǎng)細菌組合。
背景技術(shù):
根據(jù)現(xiàn)有研究知道,黃銅礦難用于生物浸出的原因不僅是其具有較高的晶格能,更重要的是在浸出過程中礦物表面會生成一層致密的鈍化膜,從而阻礙營養(yǎng)物質(zhì)、微生物和反應(yīng)產(chǎn)物在礦物表面與溶液之間的傳遞,并抑制銅的持續(xù)浸出。而這層鈍化膜的成分及其生成機制與礦物表面的吸附微生物、胞外多聚物、礦物分解產(chǎn)物和溶液中生成產(chǎn)物等有著密切的聯(lián)系。一般認為,浸礦微生物吸附到礦物表面后,通過產(chǎn)生胞外多聚物富集三價鐵離子,從而氧化分解黃銅礦。黃銅礦分解釋放的單質(zhì)硫會附著在胞外多聚物上面,成為影響礦物浸出的一部分。隨著反應(yīng)的進行,溶液中的氧化還原地位和三價鐵離子濃度逐步升高,各種鐵礬沉淀會隨之產(chǎn)生。另外,由于浸礦系統(tǒng)中胞外多聚物一旦生成,很難降解或溶解,它們會一直覆蓋在礦物表面,從而介導(dǎo)各類沉淀物質(zhì)覆蓋于礦物表面。因此,可以認為鈍化膜就是指存在于礦物表面與溶液之間,阻礙礦物持續(xù)分解的一層致密的由無機物和有機物共同組成的物質(zhì),它們主要包括礦物分解過程中產(chǎn)生的單質(zhì)硫和非溶性硫化合物,浸出系統(tǒng)中生成的各種鐵礬沉淀(主要指黃鉀鐵礬),吸附微生物本身及其分泌的胞外多聚物,部分浸出副產(chǎn)物如硫酸鉛等。
黃鉀鐵礬(KFe3(OH)6(SO4)2)是生物冶金過程中一種常見的浸出產(chǎn)物,并覆蓋于礦物表面。當浸出系統(tǒng)中黃鉀鐵礬較多時,它們會在礦物表面結(jié)合其他物質(zhì)形成一層致密的鈍化膜,從而抑制黃銅礦的持續(xù)浸出。有研究表明,浸礦系統(tǒng)中黃鉀鐵礬一旦生成,比較難以去除。因此,減少或阻礙黃鉀鐵礬沉淀的形成對黃銅礦生物浸出尤其重要。
生物浸出體系以及酸性礦坑水中的有機碳濃度往往低于20mg/l,是典型的寡營養(yǎng)環(huán)境,其中生長著豐富的寡營養(yǎng)微生物。在硫化礦的生物浸出體系中,寡營養(yǎng)細菌的主要作用是分解具有浸礦功能的細菌產(chǎn)生的有機代謝物,從而消除有機廢物對浸礦微生物的毒害,并進而促進礦物的浸出效果。到目前為止,科學(xué)研究者已經(jīng)從該環(huán)境中分離出了許多寡營養(yǎng)微生物,例如Alicyclobacillus spp.、Acidocella spp.、Acidisphaera spp.、Picrophilus spp.、Acidobacterium spp.、 Thermoplasma spp.、Acidomonas spp.等。
Alicyclobacillus(脂環(huán)酸芽孢桿菌屬細菌)是一類嗜酸耐熱、細胞膜中往往含有ω-環(huán)狀脂肪酸結(jié)構(gòu)的芽孢桿狀細菌,由Wisotzkey等在1992年命名成立。該屬細菌廣泛存在于酸性果汁飲料、礦山、熱泉和火山附近土壤等酸熱環(huán)境中。目前對該屬細菌的研究主要集中在食品防腐領(lǐng)域中。多項研究表明該屬細菌具有廣泛的底物利用特性,可以氧化Fe2+、元素硫以及硫化礦等,在厭氧或微氧的條件下可以還原Fe(OH)3以及針鐵礦等鐵的沉淀物中的Fe3+,因此該屬細菌在生物冶金中具有巨大應(yīng)用潛力。
技術(shù)實現(xiàn)要素:
本發(fā)明的目的在于,提供一個寡營養(yǎng)細菌組合。該菌組合可以利用外加碳源,還原體系中的三價鐵離子,從而抑制黃鉀鐵礬的生成。
本發(fā)明的第二個目的是提供一種可以分離培養(yǎng)寡營養(yǎng)細菌組合的培養(yǎng)基。
本發(fā)明的第三個目的是提供一種可以富集培養(yǎng)寡營養(yǎng)細菌組合的培養(yǎng)基。
本發(fā)明的第四個目的是提供一種寡營養(yǎng)細菌的富集、分離培養(yǎng)方法。
本發(fā)明的第五個目的是提供一種利用寡營養(yǎng)細菌組合體系抑制黃銅礦生物浸出過程中黃鉀鐵礬生成的應(yīng)用。
為實現(xiàn)上述目的,本發(fā)明采用以下技術(shù)方案:
本發(fā)明提供一種寡營養(yǎng)細菌組合,由脂環(huán)酸芽孢桿菌(Alicyclobacillus sp.)Biometek-A,脂環(huán)酸芽孢桿菌(Alicyclobacillus sp.)Biometek-B和脂環(huán)酸芽孢桿菌(Alicyclobacillus sp.)Biometek-AP-AC組成;
其中,脂環(huán)酸芽孢桿菌(Alicyclobacillus sp.)Biometek-A的保藏單位為:中國微生物菌種保藏管理委員會普通微生物中心,地址為:北京市朝陽區(qū)北辰西路1號院3號,中國科學(xué)院微生物研究所,保藏日期為:2012年12月26日,保藏編號為:CGMCC No.7038;
脂環(huán)酸芽孢桿菌(Alicyclobacillus sp.)Biometek-B的保藏單位為:中國微生物菌種保藏管理委員會普通微生物中心,地址為:北京市朝陽區(qū)北辰西路1號院3號,中國科學(xué)院微生物研究所,保藏日期為:2012年12月26日,保藏編號為:CGMCC No.7039;
脂環(huán)酸芽孢桿菌(Alicyclobacillus sp.)Biometek-AP-AC的保藏單位為:中國微生物菌種保藏管理委員會普通微生物中心,地址為:北京市朝陽區(qū)北辰西路1號院3號,中國科學(xué)院微生物研究所,保藏日期為:2012年12月26日,保藏編號為:CGMCC No.7040。
優(yōu)選地,所述脂環(huán)酸芽孢桿菌(Alicyclobacillus sp.)Biometek-A,脂環(huán)酸芽孢桿菌(Alicyclobacillus sp.)Biometek-B和脂環(huán)酸芽孢桿菌(Alicyclobacillus sp.)Biometek-AP-AC的比例為1:1:1。
本發(fā)明還提供用于分離培養(yǎng)上述寡營養(yǎng)細菌組合的培養(yǎng)基為:0.25g酵母粉;0.5g蛋白胨;0.25g NaCl和1000ml蒸餾水,混勻后添加吉蘭膠30g/L,調(diào)pH至3.0,121℃滅菌25分鐘。
本發(fā)明還提供用于富集培養(yǎng)上述寡營養(yǎng)細菌組合的培養(yǎng)基為:0.25g酵母粉,0.5g蛋白胨,0.25g NaCl和1000ml蒸餾水,調(diào)pH至3.0,121℃滅菌25分鐘。
本發(fā)明還提供所述的寡營養(yǎng)細菌組合的培養(yǎng)方法為:將寡營養(yǎng)細菌組合接種入上所述的培養(yǎng)基中,在30-55℃的溫度下,100rpm搖床培養(yǎng)3-20天。
如上所述的寡營養(yǎng)細菌,其獲得方法為:
所述寡營養(yǎng)細菌組合的樣品來自江西德興銅礦采集礦堆浸礦堆,經(jīng)過富集、培養(yǎng)、純化步驟獲得純菌,采用分子生物學(xué)技術(shù)確定菌種的系統(tǒng)發(fā)育地位,技術(shù)路線為:總DNA提取→16S rDNA片段擴增→測定序列→Blast比較分析;
本發(fā)明通過對照試驗進行了Biometek-A,Biometek-B和Biometek-AP-AC按1:1:1組合對黃銅礦的的生物浸出的影響實驗研究,利用X-射線衍射光譜(XRD)分析技術(shù),探索Biometek-A,Biometek-B和Biometek-AP-AC在黃銅礦生物浸出中對黃鉀鐵礬的影響。
具體方法為:向200mL普通自來水中加入5-10w/v%黃銅礦礦粉和0.05-0.5w/v%酵母粉,酸平衡至pH1.6-1.75;待礦物進行酸平衡之后,開始進行生物浸出實驗,設(shè)置4組生物浸出實驗,分別為空白對照組,不接種任何細菌培養(yǎng)物;自養(yǎng)菌群組,接種已經(jīng)馴化好的自養(yǎng)菌群Acidithiobacillus caldus OY(CCTCC NO:M2010356);寡營養(yǎng)細菌組,接種Biometek-A,Biometek-B和Biometek-AP-AC(1:1:1);4,混合菌組,同時接種數(shù)量比例為1:1的自養(yǎng)菌群Acidithiobacillus caldus OY(CCTCC NO:M2010356)和Biometek-A,Biometek-B和Biometek-AP-AC(1:1:1)。每組實驗設(shè)置3個平行重復(fù)。4種浸礦體系的礦渣進行了X-射線衍射光譜(XRD)分析。
其中所用Acidithiobacillus caldus OY為可用于黃銅礦的浸礦微生物,該菌已保藏于中國典型培養(yǎng)物保藏中心,地址:中國武漢武漢大學(xué),保藏時間:2010年12月17日,保藏編號:CCTCC NO:M2010356。
本發(fā)明的有益效果在于:
本發(fā)明提供一種寡營養(yǎng)細菌組合,及其培養(yǎng)基和富集、分離培養(yǎng)方法,以 及該寡營養(yǎng)菌組合在抑制生物浸出過程中黃鉀鐵礬生成中的應(yīng)用。該菌組合可以利用外加碳源,還原體系中的三價鐵離子,從而抑制黃鉀鐵礬的生成總量,并且即使形成黃鉀鐵礬也不是包裹于礦石表面,而是成為絮狀顆粒聚集在一起形成團塊狀,不影響黃銅礦礦石的生物浸出,提高了黃銅礦的生物浸出效率,解決了黃銅礦難于生物浸出的問題。
附圖說明
圖1為本發(fā)明的寡營養(yǎng)細菌組合培養(yǎng)時所用抽濾裝置。
圖2A為本發(fā)明的寡營養(yǎng)細菌Biometek-A的掃描電鏡照片。
圖2B為本發(fā)明的寡營養(yǎng)細菌Biometek-B的掃描電鏡照片。
圖2C為本發(fā)明的寡營養(yǎng)細菌Biometek-AP-AC的掃描電鏡照片。
圖3為本發(fā)明的寡營養(yǎng)細菌的DNA提取電泳圖。
圖4為本發(fā)明的寡營養(yǎng)細菌的16S rDNA PCR擴增產(chǎn)物電泳圖譜。
圖5A-圖5D為浸出體系的浸渣XRD圖譜,其中圖5A為空白對照組,圖5B為本發(fā)明的寡營養(yǎng)細菌組合組,圖5C為自養(yǎng)菌Acidithiobacillus caldus OY組,圖5D為寡營養(yǎng)細菌組合和Acidithiobacillus caldus OY的混合菌組。
圖6A-圖6E為不同浸出體系中黃銅礦浸出前后的掃描電鏡照片,其中,圖6A為浸出前,圖6B為空白對照,圖6C為本發(fā)明的寡營養(yǎng)細菌組合組,圖6D為自養(yǎng)菌Acidithiobacillus caldus OY組,圖6E為寡營養(yǎng)細菌組合和Acidithiobacillus caldus OY的混合菌組。
具體實施方式
下面結(jié)合實施例對本發(fā)明作進一步說明,以下所舉實施例是為便于更好地理解本發(fā)明,但并不用來限定本發(fā)明。下述實施例中的實驗方法,如無特殊說明,均為常規(guī)方法。下述實施例中所用的實驗材料,如無特殊說明,均為自常規(guī)生化試劑商店購買得到。
本發(fā)明所涉及的寡營養(yǎng)細菌組合,由脂環(huán)酸芽孢桿菌(Alicyclobacillus sp.)Biometek-A,脂環(huán)酸芽孢桿菌(Alicyclobacillus sp.)Biometek-B和脂環(huán)酸芽孢桿菌(Alicyclobacillus sp.)Biometek-AP-AC組成。均保藏于中國微生物菌種保藏管理委員會普通微生物中心,地址為:北京市朝陽區(qū)北辰西路1號院3號,中國科學(xué)院微生物研究所,保藏日期均為:2012年12月26日,保藏編號分別為:CGMCC No.7038,CGMCC No.7039和CGMCC No.7040。該三種寡營養(yǎng)細菌按1:1:1比例組成。
實施例1:寡營養(yǎng)細菌的獲得
步驟1、富集
本發(fā)明所獲得的含寡營養(yǎng)細菌的水樣取自江西德興銅礦采集礦坑水。按照100ml水樣加入0.3g酵母粉比例,在不同溫度(30℃、45℃、55℃)下平行培養(yǎng)三組,100rpm搖床輕輕震蕩培養(yǎng)1周。利用顯微鏡檢測判斷細菌生長情況,發(fā)現(xiàn)在45℃下細菌生長情況最好,收集45℃溫度下寡營養(yǎng)菌培養(yǎng)液。
步驟2、培養(yǎng)基配制
分離培養(yǎng)基基本配制方法為:稱取0.25g酵母粉、0.5g蛋白胨、0.25g NaCl和1000mL蒸餾水,混合均勻加人吉蘭膠30g/L。按比例配制100mL培養(yǎng)基,調(diào)pH為3.0,121℃滅菌25分鐘,滅菌后每10mL倒一塊平板,備用。
富集培養(yǎng)基基本配制方法為:稱取0.25g酵母粉、0.5g蛋白胨、0.25g NaCl和1000mL蒸餾水,調(diào)pH為3.0,121℃滅菌25分鐘。
步驟3、培養(yǎng)
使用如圖1所示抽濾裝置,采用膜過濾法(0.2μm)將上述步驟1中收獲的寡營養(yǎng)細菌培養(yǎng)液過濾,并將細菌用20mL無菌水洗下。以5v/v%的接種量接種于100mL富集培養(yǎng)基中,45℃搖床100rpm進行培養(yǎng),并設(shè)有不接種對照即空白對照(CK)。培養(yǎng)兩周后觀察細菌生長情況。
步驟4、分離純化
將步驟3培養(yǎng)的寡營養(yǎng)細菌進行梯度稀釋(10-1,10-2,10-3,10-4,10-5),分別取100μL稀釋液涂步驟2制作的分離培養(yǎng)基平板,45℃培養(yǎng)三天。得到部分單菌落。
將單菌落按上述梯度稀釋法依次進行純化,共純化4次,得到3株菌落形態(tài)稍有差異的純菌菌落,分別命名為Biometek-A,Biometek-B和Biometek-AP-AC。
步驟5、形態(tài)觀察
通過掃描電鏡觀察分離菌種的形態(tài)特征,菌體形態(tài)如圖2A至圖2C所示。
實施例2:寡營養(yǎng)細菌Biometek-A,Biometek-B和Biometek-AP-AC的系統(tǒng)發(fā)育地位的確定
步驟1、DNA提取
分別使用如下方法提取Biometek-A,Biometek-B和Biometek-AP-AC,獲得相應(yīng)的菌的總DNA:
在無菌條件下取1.5ml菌液加入Eppendorf離心管中;經(jīng)4℃、5000rpm離心5分鐘,收集菌體;以1×TES液懸浮菌體,經(jīng)5000rpm離心5分鐘,洗滌菌體2次;將菌體重新懸浮于435μl的TES液中,將菌體充分打散;加入溶菌酶(20mg/ml) 125ul,蛋白酶K(10mg/ml)2.5μl,37℃水浴輕輕振蕩保溫2小時,加入50μl 20%的SDS,于37℃水浴輕輕振蕩保溫,至溶液完全澄清;加入5M NaClO4 125μl,用等體積的酚:氯仿:異戊醇(25:24:1)抽提4~5次,至界面無蛋白膜出現(xiàn)為止;加入Rnase 2~5μl(10mg/ml),在37℃保溫30~60分鐘;用氯仿:異戊醇(24:1)抽提一次;吸取上層水相置于冰浴,加入1/10倍體積的3MNaAc-EDTA-Na2,并加入2倍體積冷的無水乙醇,翻轉(zhuǎn)混勻,冰浴5分鐘;經(jīng)12000rpm離心20分鐘,使DNA沉淀;加入70%乙醇脫鹽,4℃過夜,離心,吸出乙醇;加入95%乙醇脫水,離心,吸出乙醇;風(fēng)干,加50μL蒸餾水溶解,獲得總DNA。
將提取獲得的Biometek-A,Biometek-B和Biometek-AP-AC的總DNA分別標記為1、2、3。
步驟2、DNA提取結(jié)果
分別取三種菌的總DNA,各自按5μL DNA與1μL上樣緩沖液的比例混合,用0.8%的瓊脂糖凝膠進行電泳,90V電泳30min,然后取出,放入濃度為10mg/ml的EB中染色20min,再放入AlphaImager 2200凝膠成像系統(tǒng),在波長為302nm的紫外光激發(fā)熒光,攝錄成像,結(jié)果如圖3,其中M為DNA marker。
由圖3可見三種菌分別提取的總DNA大小均在23KB左右,并且DNA均較完整,紫外分光光度計測定OD260/OD280為1.82,可見純度較高,沒有蛋白和RNA殘留,將三種菌的DNA濃度均調(diào)整為25μg/ml用于后續(xù)的實驗的模板DNA。
步驟3、PCR擴增16S rDNA部分序列
分別對三種菌擴增16S rDNA部分序列,反應(yīng)步驟如下:
A、設(shè)計通用引物:
27F:5'-AGA GTT TGA TCC TGG CTC AG-3'
1492R:5'-GGT TAC CTT GTT ACG ACT T-3'
B、PCR反應(yīng)體系(50μl):
C、PCR反應(yīng)條件:
步驟4、16S rDNA PCR擴增產(chǎn)物電泳檢測
將三種菌的PCR產(chǎn)物使用2%瓊脂糖凝膠進行電泳,90V電泳30min,兩側(cè)條帶M為DNA marker。從圖4可看出,三種菌的PCR產(chǎn)物的大小均在1500bp左右,符合所用的引物,且條帶單一,亮度較大,說明PCR條件較好。
步驟5、PCR產(chǎn)物測序
將三種菌的PCR產(chǎn)物送上海生工測序。
步驟6、序列分析
所測得的序列經(jīng)Blast分析表明,3個分離菌種均屬于Alicyclobacillus屬,分別命名為Biometek-A,Biometek-B和Biometek-AP-AC。送交中國科學(xué)院微生物研究所菌種保藏中心(CGMCC)進行保藏,地址為:北京市朝陽區(qū)北辰西路1號院3號,中國科學(xué)院微生物研究所,保藏日期:2012年12月26日,保藏編號分別為:CGMCC No.7038,CGMCC No.7039和CGMCC No.7040。
實施例3:寡營養(yǎng)細菌組合影響黃銅礦生物浸出體系中黃鉀鐵礬的生成實驗。
寡營養(yǎng)細菌組合是分別將鑒定保藏的Biometek-A,Biometek-B和Biometek-AP-AC菌種接種到步驟2配置的200mL富集培養(yǎng)基中,45℃搖床100rpm培養(yǎng)一周,獲得三種細菌培養(yǎng)液。分別將培養(yǎng)液按照常規(guī)方法濃縮成菌泥,再根據(jù)菌量按照1:1:1的比例將三種菌混合。
自養(yǎng)菌Acidithiobacillus caldus OY的制備方法為:將自養(yǎng)菌Acidithiobacillus caldus OY接種到200mL 9K培養(yǎng)基(9K培養(yǎng)基配方:(NH4)2SO4 3.0g;KCl 0.1g;K2HPO4 0.5g;MgSO4·7H2O 0.5g;Ca(NO3)2 0.01g;FeSO4·7H2O 44.22g;蒸餾水1000.0ml;pH為1.8,按常規(guī)方法滅菌)中,45℃搖床100rpm培養(yǎng)一周。然后將菌液按照常規(guī)方法濃縮成菌泥。
反應(yīng)體系:取300mL的燒瓶,裝入200mL普通自來水,并加入10%黃銅礦礦 粉,0.1%酵母粉,用20%濃度的硫酸進行酸平衡至pH為1.7。
待礦物進行酸平衡之后,開始進行生物浸出實驗,設(shè)置4組生物浸出實驗,分別為:空白對照,不接種任何細菌培養(yǎng)物;寡營養(yǎng)細菌組,接種本發(fā)明的寡營養(yǎng)細菌Biometek-A,Biometek-B和Biometek-AP-AC組合(三種菌比例1:1:1);自養(yǎng)菌組,接種已經(jīng)馴化好的自養(yǎng)菌群Acidithiobacillus caldus OY;混合菌組,接種寡營養(yǎng)細菌Biometek-A,Biometek-B和Biometek-AP-AC組合和Acidithiobacillus caldus OY的混合菌,二者接種比例為1:1。保證每組總接菌量相同。每組實驗設(shè)置3個平行重復(fù)。
接種后,在45℃搖床100rpm培養(yǎng)一周,對4組浸礦體系中的礦渣進行了X-射線衍射光譜(XRD)分析。其結(jié)果如圖5A至圖5D所示。可以看到在寡營養(yǎng)細菌組(圖5B)和自養(yǎng)菌組(圖5C)的礦渣表面均檢測到黃銅礦CuFeS2和黃鉀鐵礬KFe3(SO4)2(OH)6,在混合菌組(圖5D)中的礦渣表面檢測到了黃銅礦CuFeS2和水合氫鐵礬的混合物(Fe,H3O)Fe3(SO4)2(OH)6,在無菌的空白對照組(圖5A)的礦渣表面檢測到了黃銅礦CuFeS2、黃鐵礦FeS2和元素硫S0。
同時,對不同浸出體系中的黃銅礦的浸渣進行了掃描電鏡觀察和微區(qū)分析(SEM-EDS),結(jié)果如圖6A至圖6E所示。在不同的浸礦體系中,黃鉀鐵礬等沉淀物在黃銅礦表面的賦存狀態(tài)不同。具體表現(xiàn)為,浸出前(圖6A)和無菌浸礦組(圖6B)中,鐵離子主要以Fe2+形式出現(xiàn),沒有生成可觀測到的鐵沉淀物,更沒有觀察到黃鉀鐵礬的存在,圖6A中A表示浸礦前礦石的表面光滑。在寡營養(yǎng)細菌組(圖6C)中,黃銅礦表面沒有明顯的黃鉀鐵礬,僅有少量黃鉀鐵礬呈絮狀聚集在一起,圖中B所示落在礦石上的很松散的黃鉀鐵礬。自養(yǎng)菌組(圖6D)中,形成大量黃鉀鐵礬顆粒,并覆蓋在黃銅礦表面,形成一層厚厚的鐵礬層(如圖中C所示)。在混合菌組(圖6E)中,黃銅礦表面觀察到有少量的黃鉀鐵礬顆粒(如圖中D所示),另有部分黃鉀鐵礬呈絮狀顆粒聚集在一起形成團塊狀。
從上述結(jié)果可以看出,在浸礦自養(yǎng)菌Acidithiobacillus caldus OY單獨存在的浸礦體系中,黃鉀鐵礬大量生成并包裹在黃銅礦表面,影響黃銅礦的進一步浸出;而在含有寡營養(yǎng)細菌組合的體系中,黃鉀鐵礬生成量下降,并且絮狀顆粒聚集在一起形成團塊狀,而沒有包裹在黃銅礦表面,使得黃銅礦的生物浸出過程基本不受影響。