本發(fā)明涉及一種抗旱相關(guān)的新miRNA,尤其是一種來(lái)源于棉花的、能夠用于分析和調(diào)節(jié)棉花抗旱性的新miRNA;本發(fā)明還涉及此miRNA的前體、其前體的編碼基因及其用途。
背景技術(shù):
非生物脅迫影響植物的生長(zhǎng)發(fā)育,影響農(nóng)作物的產(chǎn)量,干旱脅迫是重要的非生物脅迫之一。在干旱脅迫下,棉花根系向土壤深層伸展,地上部分的主莖、果枝均受到抑制,節(jié)間縮短,植株變小,根莖比增大。另外,干旱脅迫下,棉花葉片氣孔部分或完全關(guān)閉,光合作用受到影響,蕾鈴脫落增加,降低產(chǎn)量。全世界干旱與半干旱地區(qū)耕地面積共約2.74億公頃,占總耕地的20%,對(duì)棉花抗旱性進(jìn)行研究,擴(kuò)大干旱和半干旱地區(qū)棉花種植面積對(duì)解決棉花供需矛盾和棉糧爭(zhēng)地矛盾意義重大。
miRNA是近年來(lái)研究發(fā)現(xiàn)的一種長(zhǎng)20-24 nt的內(nèi)源性非蛋白編碼RNA。miRNA基因最初轉(zhuǎn)錄產(chǎn)生pri-miRNA,然后在核內(nèi)被Drosha酶加工成大約70 nt的具有頸環(huán)結(jié)構(gòu)的pre-miRNA。隨后pre-miRNA被轉(zhuǎn)運(yùn)出核,在細(xì)胞質(zhì)中被Dicer酶作用,加工成成熟的miRNA。通過(guò)序列互補(bǔ)與特定靶基因的mRNA結(jié)合,引起mRNA降解或抑制mRNA翻譯從而對(duì)基因的表達(dá)起到負(fù)調(diào)節(jié)作用(Llave et al., 2002; Palatnik et al., 2003; Tang et al., 2003)。近年來(lái),越來(lái)越多的研究表明miRNA在植物非生物脅迫應(yīng)答機(jī)制中有非常重要的作用,相關(guān)miRNAs被不斷報(bào)道。棉花中,已有研究證明miRNA在抗鹽、抗旱等非生物脅迫響應(yīng)機(jī)制中有重要作用。
本發(fā)明中,利用solexa技術(shù),分別對(duì)正常條件下和干旱脅迫條件下生長(zhǎng)的棉花葉片中小RNA進(jìn)行測(cè)序,及前體序列分析,鑒定得到棉花中干旱脅迫相關(guān)的新的miRNA,并利用Real-time PCR技術(shù)對(duì)其在干旱脅迫下的表達(dá)模式進(jìn)行了驗(yàn)證。
技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:
本發(fā)明要解決的技術(shù)問(wèn)題是提供一種與植物應(yīng)對(duì)干旱脅迫相關(guān)的miRNA——ghr-miR01,本發(fā)明同時(shí)提供此miRNA的前體序列及其前體的編碼基因序列,利用此miRNA能夠分析和調(diào)節(jié)棉花的抗旱性,對(duì)棉花應(yīng)對(duì)環(huán)境脅迫的試驗(yàn)研究進(jìn)而培育優(yōu)良的棉花品種具有實(shí)際應(yīng)用意義。
為解決上述技術(shù)問(wèn)題,本發(fā)明所采取的技術(shù)方案如下。
一種與植物應(yīng)對(duì)干旱脅迫相關(guān)的miRNA,其具有序列表中SEQ ID NO:1所示的核苷酸序列。
上述miRNA的前體序列,其具有序列表中SEQ ID NO:3所示的核苷酸序列。
上述miRNA前體序列的編碼基因,其具有序列表中SEQ ID NO:4所示的核苷酸序列。
上述miRNA對(duì)應(yīng)的DNA序列,其具有序列表中SEQ ID NO:2所示的核苷酸序列。
上述所述miRNA的cDNA Gene Specific RT Primer的引物序列,其具有序列表中SEQ ID NO:5所示的核苷酸序列。
上述miRNA在實(shí)時(shí)熒光定量PCR操作中的引物序列,ghr-miR01F具有序列表中SEQ ID NO:6所示的核苷酸序列,ghr-miR01R具有序列表中SEQ ID NO:7所示的核苷酸序列; U6-F具有序列表中SEQ ID NO:8所示的核苷酸序列;U6-R具有序列表中SEQ ID NO:9所示的核苷酸序列。
上述的miRNA在植物應(yīng)對(duì)干旱脅迫試驗(yàn)分析中的應(yīng)用,通過(guò)實(shí)時(shí)熒光定量PCR法測(cè)定所述miRNA在植物中的表達(dá)模式,如果與非脅迫植物相比所述miRNA在目的植物中表達(dá)未明顯上調(diào)(比如上調(diào)不足2倍),提示目的植物未受到干旱脅迫,則返回修改試驗(yàn)設(shè)計(jì)。
上述的miRNA在植物應(yīng)對(duì)非干旱脅迫試驗(yàn)分析中的應(yīng)用,在植物應(yīng)對(duì)非干旱脅迫試驗(yàn)的分析中,通過(guò)實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法測(cè)定所述miRNA在植物中的表達(dá)模式,如果與非脅迫植物相比所述miRNA在目的植物中的表達(dá)未明顯上調(diào)(比如上調(diào)不足2倍),則排除目的植物受到干旱脅迫的影響,從而排除干旱脅迫對(duì)非干旱脅迫試驗(yàn)數(shù)據(jù)的影響。
上述的miRNA在培育抗旱轉(zhuǎn)基因植物中的應(yīng)用,在目的植物中過(guò)表達(dá)SEQ ID NO:1所示的miRNA,或采用其反義寡核苷酸抑制SEQ ID NO:1所示miRNA的表達(dá),或過(guò)表達(dá)SEQ ID NO:4所示miRNA前體的基因序列,培育出具有高抗旱性的轉(zhuǎn)基因目的植物。
上述miRNA的應(yīng)用優(yōu)選實(shí)施在棉花作物品種上。
采用上述技術(shù)方案所產(chǎn)生的有益效果在于:
本發(fā)明提供了一種新的棉花miRNA,Solexa測(cè)序和實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)結(jié)果表明,本發(fā)明miRNA的表達(dá)受到干旱脅迫的調(diào)節(jié),說(shuō)明其在棉花適應(yīng)干旱脅迫機(jī)制中起重要作用。
基于此,可以在植物應(yīng)對(duì)干旱脅迫的試驗(yàn)分析中,通過(guò)實(shí)時(shí)熒光定量PCR法測(cè)定miRNA在植物中的表達(dá)模式來(lái)確認(rèn)目的植物是否受到干旱脅迫,避免實(shí)驗(yàn)操作失誤導(dǎo)致的試驗(yàn)結(jié)果偏差。
在植物應(yīng)對(duì)非干旱脅迫的應(yīng)激試驗(yàn)研究中,還可以利用本發(fā)明的miRNA檢測(cè)目的植物是否受干旱脅迫的影響。在植物應(yīng)對(duì)非干旱脅迫試驗(yàn)的分析中,通過(guò)實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法測(cè)定所述miRNA在植物中的表達(dá)模式,如果與非脅迫植物相比所述miRNA在目的植物中的表達(dá)未明顯上調(diào),則排除目的植物受到干旱脅迫的影響,從而排除干旱脅迫對(duì)非干旱脅迫試驗(yàn)數(shù)據(jù)的影響。
另外,本發(fā)明的研究強(qiáng)烈的提示上述miRNA還可應(yīng)用于培育抗旱轉(zhuǎn)基因植物,即在目的植物中過(guò)表達(dá)SEQ ID NO:1所示的miRNA,或采用其反義寡核苷酸抑制SEQ ID NO:1所示miRNA的表達(dá),或過(guò)表達(dá)SEQ ID NO:4所示miRNA前體的基因序列,培育出具有高抗旱性的轉(zhuǎn)基因目的植物。
附圖說(shuō)明
圖1為ghr-miR01在Solexa測(cè)序中非干旱脅迫和干旱脅迫條件下表達(dá)次數(shù)的比較,結(jié)果顯示,ghr-miR01在正常生長(zhǎng)條件下表達(dá)數(shù)為12,干旱處理后表達(dá)次數(shù)為339,表明ghr-miR01的表達(dá)受到干旱脅迫的調(diào)節(jié),說(shuō)明其在棉花適應(yīng)干旱脅迫機(jī)制中起重要作用。
圖2為ghr-miR01前體序列的莖環(huán)結(jié)構(gòu)圖,可見其前體序列折疊成一種穩(wěn)定的莖環(huán)結(jié)構(gòu),屬于miRNA前體典型的二級(jí)結(jié)構(gòu),符合miRNA前體的結(jié)構(gòu)特征。
圖3為實(shí)時(shí)熒光定量PCR對(duì)ghr-miR01在干旱脅迫條件下和正常條件下表達(dá)特征的分析結(jié)果,結(jié)果顯示ghr-miR01的表達(dá)受干旱誘導(dǎo)明顯上調(diào),達(dá)19.1倍,說(shuō)明其在棉花適應(yīng)干旱脅迫機(jī)制中起重要作用。
具體實(shí)施方式
以下實(shí)施例詳細(xì)說(shuō)明了本發(fā)明。本發(fā)明所使用的各種原料及各項(xiàng)設(shè)備均為常規(guī)市售產(chǎn)品,均能夠通過(guò)市場(chǎng)購(gòu)買直接獲得。以下實(shí)施例中的定量試驗(yàn),設(shè)置三次重復(fù)實(shí)驗(yàn),結(jié)果取平均值。
本發(fā)明提供的miRNA來(lái)源于棉花(石早1號(hào)棉花)葉片,命名為ghr-miR01,其長(zhǎng)度為21nt;參看附圖2,其前體序列可折疊成一種穩(wěn)定的莖環(huán)結(jié)構(gòu),屬于miRNA前體典型的二級(jí)結(jié)構(gòu),符合miRNA前體的結(jié)構(gòu)特征。
實(shí)施例1:Solexa測(cè)序分析驗(yàn)證ghr-miR01在棉花抗旱機(jī)制中的作用
一、材料培養(yǎng)及干旱處理:石早1號(hào)棉花種子播種于蛭石和營(yíng)養(yǎng)土3:1混合的基質(zhì)的培養(yǎng)盆中,溫度為28 ℃,相對(duì)濕度為70%。對(duì)照材料分別于播種后第7、14、21、28天澆水,每次澆水150 mL,第35天取幼嫩葉片,液氮冷凍,-80 ℃儲(chǔ)藏;干旱處理材料分別于播種后第7、14、21澆水,每次澆水150 mL,第35天取幼嫩葉片,液氮冷凍,-80 ℃儲(chǔ)藏。
二、Solexa測(cè)序分析及新miRNA的鑒定:上步所得樣品送往上海美吉生物公司,進(jìn)行solexa測(cè)序及分析。參看圖1,結(jié)果顯示,ghr-miR01在正常生長(zhǎng)條件下表達(dá)數(shù)為12,干旱處理后表達(dá)次數(shù)為339,這表明ghr-miR01的表達(dá)受到干旱脅迫的調(diào)節(jié),說(shuō)明其在棉花適應(yīng)干旱脅迫機(jī)制中起重要作用,在棉花中過(guò)表達(dá)ghr-miR01,或采用其反義寡核苷酸抑制ghr-miR01的表達(dá),將影響棉花對(duì)干旱脅迫的適應(yīng)能力,培育出具有高抗旱性的轉(zhuǎn)基因棉花,對(duì)提高棉花的產(chǎn)量具有重大的意義。用Mfold在線軟件對(duì)其前體序列進(jìn)行二級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè),結(jié)果顯示符合miRNA前體的發(fā)夾結(jié)構(gòu)特征(圖2):要有較低的折疊自由能能量,RNA和其周圍序列應(yīng)該形成一個(gè)發(fā)夾式的二級(jí)結(jié)構(gòu);小RNA序列在二級(jí)結(jié)構(gòu)的臂部即位于5′arm或3′臂上;在前體發(fā)夾結(jié)構(gòu)上,miRNA最多只能有6 nt的錯(cuò)配;前體發(fā)夾結(jié)構(gòu)上,miRNA與miRNA*之間沒(méi)有大的loop 或break。
實(shí)施例2:Real-time PCR分析驗(yàn)證ghr-miR01在棉花抗旱機(jī)制中的作用
一、材料培養(yǎng)及NaCl處理
石早1號(hào)棉花種子播種與蛭石和營(yíng)養(yǎng)土3:1混合的基質(zhì)的培養(yǎng)盆中,溫度為28 ℃,相對(duì)濕度為70%。對(duì)照材料分別于播種后第7、14、21、28天澆水,每次澆水150 mL,第35天取幼嫩葉片,液氮冷凍,-80 ℃儲(chǔ)藏;干旱處理材料分別于播種后第7、14、21澆水,每次澆水150 mL,第35天取幼嫩葉片,液氮冷凍,-80℃儲(chǔ)藏。
二、RNA的分離
用GIANGEN公司的多糖多酚植物總RNA提取試劑盒(目錄號(hào):DP441)提取總RNA,提取方法如下:
1、勻漿處理。50-100 mg葉樣用液氮在研缽內(nèi)快速磨碎,加入500 μL已加入β-巰基乙醇的SL液,立即渦旋劇烈震蕩;
2、12,000 rpm 離心2 min;
3、將上清液轉(zhuǎn)移至過(guò)濾柱CS上,12,000 rpm 離心2 min,小心吸取收集管中的上清至新的RNase-Free的離心管中,吸頭避免接觸收集管中的細(xì)胞碎片沉淀;
4、緩慢加入0.4倍上清體積的無(wú)水乙醇,混勻,將得到的溶液和沉淀一起轉(zhuǎn)入吸附柱CR3中,12,000 rpm離心15 sec,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱CR3放回收集管中;
5、向吸附柱CR3中加入350 μl 去蛋白液RW1,12,000 rpm離心15 sec,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱CR3放回收集管中;
6、DNase I 工作液的配制:取10 μl DNase I 儲(chǔ)存液放入新的RNase-Free離心管中,加入70 μl RDD溶液,輕柔混勻;
7、 向吸附柱CR3中央加入80 μl的DNase I 工作液,室溫放置15 min;
8、向吸附柱CR3中加入350 μl 去蛋白液RW1,12,000 rpm離心15 sec,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱CR3放回收集管中;
9、向吸附柱CR3中加入500 μl漂洗液RW(使用前先加入乙醇),12,000 rpm離心15 sec,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱CR3放回收集管中;
10、 重復(fù)步驟9;
11、12,000 rpm離心2 min,將吸附柱CR3放入一個(gè)新的RNase-Free離心管中,向吸附膜的中間部位懸空滴加30-50 μl RNase-Free ddH2O,室溫放置2 min,12,000 rpm離心1 min,得到RNA溶液。
三、反轉(zhuǎn)錄為cDNA
用TaKaRa公司的PrimeScript RT reagent kit with gDNA Eraser試劑盒,將提取的RNA轉(zhuǎn)錄為cDNA。
1、去除基因組DNA。在冰上配置10.0 μl反應(yīng)體系混合液:5×gDNA Eraser Buffer, 2.0 μl; gDNA Eraser, 1.0 μl; Total RNA, 2.0 μl; RNase Free dH2O, 5.0 μl。輕輕混勻上述配制的反應(yīng)液,短暫離心使得管壁上的反應(yīng)液沉落,42 ℃反應(yīng)2 min,4 ℃存放用于下步實(shí)驗(yàn)。
2、反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)。在冰上配置內(nèi)參基因U6所用混合液:步驟1的反應(yīng)液,10.0 μl;PrimeScript RT Enzyme Mix 1, 1.0 μl; RT Primer Mix, 4.0 μl; 5×PrimeScript Buffer 2,4.0 μl;RNase Free dH2O, 1.0 μl;總體積,20 μl,輕輕混勻上述配制的反應(yīng)液,短暫離心使得管壁上的反應(yīng)液沉落。在冰上配置miRNA所用混合液:步驟1的反應(yīng)液,10.0 μl;PrimeScript RT Enzyme Mix 1, 1.0 μl; Gene Specific RT Primer , 1.0 μl; 5×PrimeScript Buffer 2,4.0 μl;RNase Free dH2O, 4.0 μl;總體積,20 μl,輕輕混勻上述配制的反應(yīng)液,短暫離心使得管壁上的反應(yīng)液沉落。37 ℃,15 min; 85℃, 5 sec; 合成的cDNA反應(yīng)液放置-20 ℃保存,也可以直接進(jìn)行下游熒光定量檢測(cè)。
Gene Specific RT Primer 引物序列為:GTCGTATCCAGTGCAGGGTCCGAGGTATTC GCACTGGATACGACCGTCGT(SEQ ID NO:5)。
四、實(shí)時(shí)熒光定量PCR
混勻如下反應(yīng)體系,然后分裝入96孔光學(xué)板中,并覆蓋上專用光學(xué)膜。擴(kuò)增使用的儀器為ABI公司的熒光定量PCR儀。
20 μl反應(yīng)體系配制如下:反轉(zhuǎn)錄cDNA模板,2 μl;正向引物(10 μM),1 μl;反向引物(10 μM),1 μl;2×RealStar Green Power Mixture,10 μl;RNase Free dH2O,6 μl。
擴(kuò)增程序?yàn)椋簲U(kuò)增程序?yàn)椋?5 ℃, 30 sec;95 ℃, 15 s,60 ℃, 34 s,40 cycles;72 ℃ 30 s。
引物序列為:ghr-miR01F:GGACCGTGTTTCGCGCGTGG(SEQ ID NO:6);ghr-miR01R: GTGCAGGGTCCGAGGT(SEQ ID NO:7); U6-F:GGGGACATCCGATAAAATTGG(SEQ ID NO:8);U6-R:CATTTCTCGATTTGTGCGTGTC(SEQ ID NO:9);(U6為內(nèi)參基因)。
五、結(jié)果分析
參看圖3,實(shí)時(shí)熒光定量PCR分析的結(jié)果顯示ghr-miR01的表達(dá)受干旱誘導(dǎo)明顯上調(diào),達(dá)19.1倍,這同樣表明ghr-miR01的表達(dá)受到干旱脅迫的調(diào)節(jié)?;诖?,可以通過(guò)實(shí)時(shí)熒光定量PCR法測(cè)定所述miRNA在植物中的表達(dá)模式,從而確認(rèn)或排除目的植物受到干旱脅迫,同時(shí)上述試驗(yàn)結(jié)果強(qiáng)烈的提示上述miRNA還可應(yīng)用于培育抗旱轉(zhuǎn)基因植物。
上述描述僅作為本發(fā)明可實(shí)施的技術(shù)方案提出,不作為對(duì)其技術(shù)方案本身的單一限制條件。
序 列 表
<110> 石家莊市農(nóng)林科學(xué)研究院
<120> 一種與植物應(yīng)對(duì)干旱脅迫相關(guān)的miRNA——ghr-miR01及其應(yīng)用
<160> 9
<210> 1
<211> 21
<212> RNA
<213> 棉花(Anemone vitifolia Buch)
<400> 1
GUGUUUCGCG CGUGGACGAC G 21
<210> 2
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 2
GTGTTTCGCG CGTGGACGAC G 21
<210> 3
<211> 73
<212> RNA
<213> 棉花(Anemone vitifolia Buch)
<400> 3
UUGUCCACGC GCGACACGCA CUGCAUUUGU GCUUUUUCAA AGCUUUGUAU GUGUGUUUCG 60
CGCGUGGACG ACG 73
<210> 4
<211> 73
<212> DNA
<213> 棉花(Anemone vitifolia Buch)
<400> 4
TTGTCCACGC GCGACACGCA CTGCATTTGT GCTTTTTCAA AGCTTTGTAT GTGTGTTTCG 60
CGCGTGGACG ACG 73
<210> 5
<211> 50
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 5
GTCGTATCCA GTGCAGGGTC CGAGGTATTC GCACTGGATA CGACCGTCGT 50
<210> 6
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 6
GGACCGTGTT TCGCGCGTGG 20
<210> 7
<211> 16
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 7
GTGCAGGGTC CGAGGT 16
<210> 8
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 8
GGGGACATCC GATAAAATTG G 21
<210> 9
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 9
CATTTCTCGA TTTGTGCGTG TC 22