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      一種聯(lián)合檢測禽流感H7N9和H9N2的四通道熒光定量PCR檢測方法及試劑盒與流程

      文檔序號:12250073閱讀:745來源:國知局
      一種聯(lián)合檢測禽流感H7N9和H9N2的四通道熒光定量PCR檢測方法及試劑盒與流程

      本發(fā)明屬于分子檢測技術(shù)領(lǐng)域,具體涉及一種聯(lián)合檢測禽流感H7N9和H9N2的四通道熒光定量PCR檢測方法及試劑盒。



      背景技術(shù):

      在我國新發(fā)的人感染H7N9亞型病毒引起了廣泛的關(guān)注,病毒的常監(jiān)測、早診斷、預警成為極其重要工作。研究表明,禽源H9N2亞型禽流感病毒為H7N9亞型流感這一新型重組病毒提供了內(nèi)部基因。然而,雞源H9N2亞型禽流感病毒的流行和進化是如何促進新型禽流感H7N9出現(xiàn)的機制尚不清楚,中國農(nóng)業(yè)大學劉金華教授團隊對該機制進行了研究,研究表明在過去長達10多年中,多種H9N2基因型共同存在,G57基因型出現(xiàn)并隨著抗體特性變化更加適應雞宿主。在2010~2013年期間,也就是新型禽流感病毒H7N9出現(xiàn)前期,H9N2亞型禽流感病毒G57基因型成為免疫雞農(nóng)場的主要基因型,并引起了雞場禽流感的廣泛爆發(fā),最終為新型禽流感H7N9提供了內(nèi)部基因。禽農(nóng)場中H9N2病毒的流行和變化監(jiān)測可以為可能造成流感大流行的新型禽流感病毒出現(xiàn)提供重要的監(jiān)測和早期診斷預警。

      隨著分子生物學的快速發(fā)展,多重PCR已廣泛應用于禽病混合感染的鑒別診斷,其原理是設(shè)計能夠同時擴增出多種待測病原特定片段大小的多對引物,在PCR反應體系中加入多對引物,能夠?qū)Χ喾N病原進行鑒別診斷。多重RT-PCR因其靈敏性、特異性和操作的簡單性被廣泛應用于禽病的多重檢測,但結(jié)果判定需要電泳,費時費力,且反應產(chǎn)物容易產(chǎn)生污染而導致假陽性,而多重PCR是靠片段的大小來區(qū)別的,一般到了三重以上,片段大小差別大,其每種病毒的擴增效率不一樣,造成結(jié)果存在偏差。熒光定量PCR技術(shù)融合了PCR的多種優(yōu)點,通過直接檢測PCR反應過程中熒光信號的變化實現(xiàn)對目的分子的定量,不需要電泳檢測,并且整個過程完全閉管式操作,污染機率降低,避免了常規(guī)PCR容易造成的假陽性問題。相對常規(guī)PCR,熒光定量PCR在敏感性、特異性與速度等方面具有優(yōu)勢,但實時熒光PCR技術(shù)受到熒光種類及儀器自身的限制,最多只能對5個靶標進行檢測,且實驗成功的難度極大。



      技術(shù)實現(xiàn)要素:

      本發(fā)明的一個目的在于提供一種用于聯(lián)合檢測禽流感H7N9和H9N2的熒光定量PCR引物組。

      本發(fā)明的另一個目的在于提供一種用于聯(lián)合檢測禽流感H7N9和H9N2的熒光定量PCR試劑盒。

      本發(fā)明的另一個目的在于提供一種用于聯(lián)合檢測禽流感H7N9和H9N2的熒光定量PCR檢測方法。

      本發(fā)明所采取的技術(shù)方案是:

      一種用于聯(lián)合檢測禽流感H7N9和H9N2的熒光定量PCR引物組,其包括用于檢測禽流感H7N9亞型的H7基因的引物對及熒光探針、用于檢測禽流感H7N9亞型的N9基因的引物對及熒光探針、用于檢測禽流感H9N2亞型的H9基因的引物對及熒光探針、用于檢測禽流感H9N2亞型的N2基因的引物對及熒光探針,用于檢測H7、N9、H9、N2基因的熒光探針報告基團不相同。

      作為優(yōu)選的,所述用于檢測禽流感H7N9亞型的H7基因的引物對及熒光探針的核苷酸序列如下所示:

      H7-F:5’-TGCACTGCATGTTTCCATTCTT-3’(SEQ ID NO.1);

      H7-R:5’-GGCTACAAAGATGTGATACTTTGGTTTAG-3’(SEQ ID NO.2);

      H7-P:5’FAM-ATGAAAACAAGGCCCATTGCAATGGC-BHQ13’(SEQ ID NO.3)。

      作為優(yōu)選的,所述用于檢測禽流感H7N9亞型的N9基因的引物對及熒光探針的核苷酸序列如下所示:

      N9-F:5’-TCGCGCCCTGATAAGCT-3’(SEQ ID NO.4);

      N9-R:5’-GCATTCCACCCTGCTGTTG-3’(SEQ ID NO.5);

      N9-P:5’VIC-CCACTATCATCACCGCCCACAGTGT-BHQ13”(SEQ ID NO.6)。

      作為優(yōu)選的,所述用于檢測禽流感H9N2亞型的H9基因的引物對及熒光探針的核苷酸序列如下所示:

      H9-F:5’-CAATGGGGTTTGCTGCCT-3’(SEQ ID NO.7);

      H9-R:5’-TTATATACAAATGTTGCATCTGC-3’(SEQ ID NO.8);

      H9-P:5’TexasRed-TTCTGGGCCATGTCCAATGGTTCT-BHQ23’(SEQ ID NO.9)。

      作為優(yōu)選的,所述用于檢測禽流感H9N2亞型的N2基因的引物對及熒光探針的核苷酸序列如下所示:

      N2-F:5’-TGACACTGCACTTCAAGCAA-3’(SEQ ID NO.10);

      N2-R:5’-TTGGTTCACATGTCACTACTTGAT-3’(SEQ ID NO.11);

      N2-P:5’CY5-ATGAATGCAGCATCCCCTCGAAC-BHQ23’(SEQ ID NO.12)。

      一種用于聯(lián)合檢測禽流感H7N9和H9N2的熒光定量PCR試劑盒,其包含上述的熒光定量PCR引物組。

      所述試劑盒還包含病毒RNA提取液、Tth DNA聚合酶、四通道熒光定量PCR Mix、陽性質(zhì)控品、陰性質(zhì)控品,所述四通道熒光定量PCR Mix中含有2×四通道熒光定量PCR buffer、dNTPs。

      所述2×四通道熒光定量PCR buffer中含有以下成分:Tricine pH8.7、Mg(OAc)2、KOAc、甘油、DMSO、N,N,N-三甲基甘氨酸。

      一種聯(lián)合檢測禽流感H7N9和H9N2的四通道熒光定量PCR檢測方法,包括如下步驟:

      1)提取待測樣品中的病毒RNA;

      2)以得到的總RNA為模板,使用上述的熒光定量PCR引物組進行四通道熒光定量PCR

      檢測;

      3)反應結(jié)束后,根據(jù)待測樣品的熒光Ct值判斷,待測樣品是否為禽流感病毒H7基因、

      N9基因、H9基因、N2基因陽性。

      四通道熒光定量PCR反應條件為:

      95℃1分鐘;58℃20分鐘;95℃1分鐘;

      95℃10秒,58℃70秒,68℃10s,采集熒光信號,40個循環(huán)。

      本發(fā)明的有益效果是:

      本發(fā)明方法能夠同時檢測出待測標本中禽流感病毒H7N9的H7基因和N9基因,以及禽流感病毒H9N2的H9基因和N2基因。由于該方法引入了特異性擴增引物和熒光探針,使得檢測的靈敏度和特異性得到很大程度的增強,從而避免了其他檢測方法特異性不高容易漏診和誤診的問題。同時,該試劑盒根據(jù)本方法原理制得的試劑盒,可方便地同時檢測出禽流感病毒H7N9的H7基因和N9基因,以及禽流感病毒H9N2的H9基因和N2基因,準確率高。

      該方法使用Tth DNA聚合酶,代替?zhèn)鹘y(tǒng)的Taq酶和MMLV酶的組合,在更高的溫度下進行逆轉(zhuǎn)錄,提升了四通道擴增這種復雜模版的擴增效果。因此該試劑盒具有廣泛的應用前景,適合在各級動物衛(wèi)生監(jiān)督機構(gòu)、疾病控制單位等大規(guī)模篩查的推廣應用。

      附圖說明

      圖1為四通道熒光PCR體系中禽流感病毒H7基因檢測的靈敏度實驗,從左到右依次為1×106、1×105、1×104、1×103、1×102、1×101cp/μl的標準品的擴增結(jié)果。由圖可知,H7基因檢測的靈敏度為1×102cp/μl。

      圖2為四通道熒光PCR體系中禽流感病毒N9基因檢測的靈敏度實驗,從左到右依次為1×106、1×105、1×104、1×103、1×102、1×101cp/μl的標準品的擴增結(jié)果。由圖可知,N9基因檢測的靈敏度為1×102cp/μl。

      圖3為四通道熒光PCR體系中禽流感病毒H9基因檢測的靈敏度實驗,從左到右依次為1×106、1×105、1×104、1×103、1×102、1×101cp/μl的標準品的擴增結(jié)果。由圖可知,H9基因檢測的靈敏度為1×102cp/μl。

      圖4為四通道熒光PCR體系中禽流感病毒N2基因檢測的靈敏度實驗,從左到右依次為1×106、1×105、1×104、1×103、1×102、1×101cp/μl的標準品的擴增結(jié)果。由圖可知,N2基因檢測的靈敏度為1×102cp/μl。

      圖5為四通道熒光PCR體系中禽流感病毒H7基因檢測的特異性實驗結(jié)果,檢測哈獸研H7抗原、H7N9棉拭子標本、H7N7棉拭子標本為陽性,檢測哈獸研H5N1抗原、H5N1疫苗、H9N2棉拭子標本、廣州永順NDV疫苗及陰性質(zhì)控品均為陰性。

      圖6為四通道熒光PCR體系中禽流感病毒N9基因檢測的特異性實驗結(jié)果,檢測H7N9棉拭子標本為陽性,檢測H7N7棉拭子標本、哈獸研H5N1抗原、華農(nóng)H5N1疫苗、H9N2棉拭子標本、廣州永順NDV疫苗及陰性質(zhì)控品均為陰性。

      圖7為四通道熒光PCR體系中禽流感病毒H9基因檢測的特異性實驗結(jié)果,檢測H9N2棉拭子標本為陽性,檢測H7N7棉拭子標本、哈獸研H5N1抗原、華農(nóng)H5N1疫苗、H7N9棉拭子標本、廣州永順NDV疫苗及陰性質(zhì)控品均為陰性。

      圖8為四通道熒光PCR體系中禽流感病毒N2基因檢測的特異性實驗結(jié)果,檢測H9N2棉拭子標本為陽性,檢測H7N7棉拭子標本、哈獸研H5N1抗原、華農(nóng)H5N1疫苗、H7N9棉拭子標本、廣州永順NDV疫苗及陰性質(zhì)控品均為陰性。

      具體實施方式

      下面結(jié)合實施例對本發(fā)明做進一步的說明,但并不局限于此。

      實施例1

      1、特異性引物及探針的設(shè)計

      根據(jù)禽流感病毒(Avian influenza virus)H1~H16的核酸序列,以及N1~N9的核酸序列,設(shè)計用于檢測禽流感病毒H7N9、H9N2基因的引物和探針(在life technology公司合成)。其序列如下:

      2、標本采集和預處理

      本方法及試劑盒適用標本類型包括禽類的組織、血清、咽拭子、分泌排泄物等。組織標本:無菌條件下取組織約100~200mg左右,置入1.5ml潔凈EP管中,保存待檢。血清:用一次性無菌注射器抽取受檢鳥靜脈血3-5ml,留取血清,保存待檢。咽及泄殖腔等拭子:用棉拭子取咽或泄殖腔分泌物,將拭子放入盛有1.0ml PBS的離心管中,立即送檢。分泌排泄物:無菌條件下采集,保存待檢。采集的標本應該盡快送檢,或者保存于-20℃。

      3、標本RNA提取

      3.1RNA提取液的組分:

      裂解液

      洗滌液

      3.2使用杭州萊楓生物生產(chǎn)的RNA純化柱進行純化,以如下步驟提取:

      1)200μl標本加入500μl裂解液,室溫靜止1min;

      2)12000rpm離心5分鐘,棄套管中液體;

      3)加入600μL洗滌液,振蕩混勻;

      4)12000rpm離心5分鐘,棄套管中液體;

      5)加入600μL洗滌液,振蕩混勻;

      6)12000rpm離心5分鐘,棄套管,換新的1.5mL離心管;

      7)加入50μL DEPC處理水,振蕩混勻;

      8)12000rpm離心5分鐘,管中液體即為所提取的RNA。

      4、陽性質(zhì)控品的制備

      H7N9假病毒陽性標準品序列如SEQ ID NO.13所示;H9N2假病毒陽性標準品序列如SEQ ID NO.14所示。

      將二者分別提交廈門致善生物,合成載體、用MS2噬菌體包裝成假病毒顆粒并測定濃度。

      返回的H7N9假病毒與H9N2假病毒,以1:1混合,作為試劑盒的陽性質(zhì)控品,-20±5℃條件下儲存。所得假病毒顆粒擴增前需進行RNA提取實驗。

      5’-GCGGTTATAAAGATGTGATACTTTGGTTTAGCTTCGGGGCATCATGTTTCATACTTCTTGCCATTGCAATGGGCCTTGTCTTCATATGTGTGAAGAATGGAAACATGCGGTGCACTATTTGTATATAATCGCGCCCTGATAAGCTGGCCACTATCATCACCGCCCACAGTATACAACAGCAGGGTGGAATGCATTGGG-3’(SEQ ID NO.13)

      5’-CAATGGGGTTTGCTGCCTTCTTGTTCTGGGCCATGTCCAATGGATCATGCAGGTGCAACATTTGTATATAATGACACTGCACTTCAAGCAAAATGAATGCAGCATCCCCTCGAACAATCAAGTAGTGACATGTGAACCAA-3’(SEQ ID NO.14)

      5、陰性質(zhì)控品的制備

      取純化水,高壓滅菌后,貯存于冷藏冰箱(2-8℃),超過7天未分裝的轉(zhuǎn)至-20±5℃條件下儲存。

      6、四通道熒光定量PCR擴增

      熒光定量PCR反應的反應體系總體積為25μl,組成如下:多通道熒光定量PCR Mix 20μl、DNA聚合酶1μl,以及提取標本RNA(或者陽性質(zhì)控品、陰性質(zhì)控品)4μl;其中四通道熒光定量PCR Mix中含有四通道熒光定量PCR buffer、dNTPs等成分。

      2×四通道熒光定量PCR buffer中含有以下成分:

      四通道熒光定量PCR Mix組成為:

      四通道熒光定量PCR反應條件為:

      95℃1分鐘;58℃20分鐘;95℃1分鐘;

      95℃10秒,58℃70秒,68℃10s,采集熒光信號,40個循環(huán)。

      7、結(jié)果分析和判定

      7.1結(jié)果分析條件設(shè)定

      1)設(shè)置基線(baseline):根據(jù)機型不同,設(shè)置3~15循環(huán),6~15循環(huán),特殊情況可對基線適當調(diào)整。

      2)設(shè)置閾值(threshold):以閾值線剛超過陰性對照擴增曲線(無規(guī)則的噪音線)的最高點。

      7.2結(jié)果判斷如下表:

      實施例2靈敏度實驗

      圖1為四通道熒光PCR體系中禽流感病毒H7基因檢測的靈敏度實驗,從左到右依次為1×106、1×105、1×104、1×103、1×102、1×101cp/μl的標準品的擴增結(jié)果。由圖可知,H7基因檢測的靈敏度為1×102cp/μl。

      圖2為四通道熒光PCR體系中禽流感病毒N9基因檢測的靈敏度實驗,從左到右依次為1×106、1×105、1×104、1×103、1×102、1×101cp/μl的標準品的擴增結(jié)果。由圖可知,N9基因檢測的靈敏度為1×102cp/μl。

      圖3為四通道熒光PCR體系中禽流感病毒H9基因檢測的靈敏度實驗,從左到右依次為1×106、1×105、1×104、1×103、1×102、1×101cp/μl的標準品的擴增結(jié)果。由圖可知,H9基因檢測的靈敏度為1×102cp/μl。

      圖4為四通道熒光PCR體系中禽流感病毒N2基因檢測的靈敏度實驗,從左到右依次為1×106、1×105、1×104、1×103、1×102、1×101cp/μl的標準品的擴增結(jié)果。由圖可知,N2基因檢測的靈敏度為1×102cp/μl。

      實施例3特異性實驗

      圖5為四通道熒光PCR體系中禽流感病毒H7基因檢測的特異性實驗結(jié)果,檢測哈獸研H7抗原、H7N9棉拭子標本、H7N7棉拭子標本為陽性,檢測哈獸研H5N1抗原、H5N1疫苗、H9N2棉拭子標本、廣州永順NDV疫苗及陰性質(zhì)控品均為陰性。

      圖6為四通道熒光PCR體系中禽流感病毒N9基因檢測的特異性實驗結(jié)果,檢測H7N9棉拭子標本為陽性,檢測H7N7棉拭子標本、哈獸研H5N1抗原、華農(nóng)H5N1疫苗、H9N2棉拭子標本、廣州永順NDV疫苗及陰性質(zhì)控品均為陰性。

      圖7為四通道熒光PCR體系中禽流感病毒H9基因檢測的特異性實驗結(jié)果,檢測H9N2棉拭子標本為陽性,檢測H7N7棉拭子標本、哈獸研H5N1抗原、華農(nóng)H5N1疫苗、H7N9棉拭子標本、廣州永順NDV疫苗及陰性質(zhì)控品均為陰性。

      圖8為四通道熒光PCR體系中禽流感病毒N2基因檢測的特異性實驗結(jié)果,檢測H9N2棉拭子標本為陽性,檢測H7N7棉拭子標本、哈獸研H5N1抗原、華農(nóng)H5N1疫苗、H7N9棉拭子標本、廣州永順NDV疫苗及陰性質(zhì)控品均為陰性。

      以上實驗結(jié)果表明:本發(fā)明方法及試劑盒可方便地同時檢測出禽流感病毒H7N9的H7基因和N9基因,以及禽流感病毒H9N2的H9基因和N2基因,靈敏度和特異性得到很大程度的增強。

      SEQUENCE LISTING

      <110> 廣東省農(nóng)業(yè)科學院動物衛(wèi)生研究所

      <120> 一種聯(lián)合檢測禽流感H7N9和H9N2的四通道熒光定量PCR檢測方法及試劑盒

      <130>

      <160> 14

      <170> PatentIn version 3.5

      <210> 1

      <211> 22

      <212> DNA

      <213> 人工序列

      <400> 1

      tgcactgcat gtttccattc tt 22

      <210> 2

      <211> 29

      <212> DNA

      <213> 人工序列

      <400> 2

      ggctacaaag atgtgatact ttggtttag 29

      <210> 3

      <211> 26

      <212> DNA

      <213> 人工序列

      <400> 3

      atgaaaacaa ggcccattgc aatggc 26

      <210> 4

      <211> 17

      <212> DNA

      <213> 人工序列

      <400> 4

      tcgcgccctg ataagct 17

      <210> 5

      <211> 19

      <212> DNA

      <213> 人工序列

      <400> 5

      gcattccacc ctgctgttg 19

      <210> 6

      <211> 25

      <212> DNA

      <213> 人工序列

      <400> 6

      ccactatcat caccgcccac agtgt 25

      <210> 7

      <211> 18

      <212> DNA

      <213> 人工序列

      <400> 7

      caatggggtt tgctgcct 18

      <210> 8

      <211> 23

      <212> DNA

      <213> 人工序列

      <400> 8

      ttatatacaa atgttgcatc tgc 23

      <210> 9

      <211> 24

      <212> DNA

      <213> 人工序列

      <400> 9

      ttctgggcca tgtccaatgg ttct 24

      <210> 10

      <211> 20

      <212> DNA

      <213> 人工序列

      <400> 10

      tgacactgca cttcaagcaa 20

      <210> 11

      <211> 24

      <212> DNA

      <213> 人工序列

      <400> 11

      ttggttcaca tgtcactact tgat 24

      <210> 12

      <211> 23

      <212> DNA

      <213> 人工序列

      <400> 12

      atgaatgcag catcccctcg aac 23

      <210> 13

      <211> 198

      <212> DNA

      <213> H7N9

      <400> 13

      gcggttataa agatgtgata ctttggttta gcttcggggc atcatgtttc atacttcttg 60

      ccattgcaat gggccttgtc ttcatatgtg tgaagaatgg aaacatgcgg tgcactattt 120

      gtatataatc gcgccctgat aagctggcca ctatcatcac cgcccacagt atacaacagc 180

      agggtggaat gcattggg 198

      <210> 14

      <211> 140

      <212> DNA

      <213> H7N9

      <400> 14

      caatggggtt tgctgccttc ttgttctggg ccatgtccaa tggatcatgc aggtgcaaca 60

      tttgtatata atgacactgc acttcaagca aaatgaatgc agcatcccct cgaacaatca 120

      agtagtgaca tgtgaaccaa 140

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