本發(fā)明涉及分子生物學(xué)及遺傳育種領(lǐng)域,具體地說(shuō),涉及一種與小麥寡分蘗基因Ltn3共分離的分子標(biāo)記R207及其應(yīng)用。
背景技術(shù):
小麥?zhǔn)俏覈?guó)僅次于水稻的第二大糧食作物,歷年種植面積分別占耕地面積的22%~30%,糧食作物總面積的22%~27%,主要分布在河南、河北、山東、山西、陜西、江蘇、四川、安徽等省份;總產(chǎn)量為1億噸以上,約占糧食作物產(chǎn)量的22%,是我國(guó)約一半人口的主食,因此高產(chǎn)小麥品種的選育一直是育種家關(guān)注的重點(diǎn)。
小麥糧食產(chǎn)量主要由三大要素構(gòu)成,產(chǎn)量=穗數(shù)*穗粒數(shù)*粒重。分蘗是禾本科作物中最重要的組成成分之一,它影響著分蘗的發(fā)生和形成,從而最終影響糧食的產(chǎn)量(Kebrom et al.Grasses provide new insights into regulation of shoot branching.Trends Plant Sci.2013,18:41-48;Hussien et al.Genetics of tillering in rice and barley.Plant Genome.2014,7:1-20)。,同時(shí)又是單子葉植物的一種特殊的分枝現(xiàn)象,具有重要的研究意義。
小麥分蘗遺傳研究總體進(jìn)展相對(duì)緩慢,現(xiàn)階段國(guó)內(nèi)外工作主要圍繞分蘗基因QTL的分子標(biāo)記定位及其遺傳效應(yīng)開(kāi)展。部分分蘗突變體由單基因控制,因而一些學(xué)者將其作為質(zhì)量性狀來(lái)研究(Richards RA.A tiller inhibition gene in wheat and its affect on plant growth.Austr J Agric Res.1988,39:749-757;Duggan BL,Richards RA,Tsuyuzaki H.Environmental effects on the expression of the tiller inhibition(tin)gene in wheat.Funct Plant Biol,2002,29:45–53)。同時(shí),也有很多學(xué)者將分蘗作為多基因控制的數(shù)量性狀來(lái)研究(Shaha MM,Gilla KS,Baenziger PS,Yen Y,Kaepplerc SM,Ariyarathne HM.Molecular mapping of loci for agronomic traits on chromosome 3A of bread wheat.Crop Sci.1999,39:1728-1732;謝玥,龍海,侯永翠,鄭有良.小麥寡分蘗材料H461分蘗性狀的遺傳分析.麥類作物學(xué)報(bào).2006,26:21-23;王巖.小麥永久F2群體構(gòu)建及株高和分蘗特性的QTL定位.山東農(nóng)業(yè)大學(xué)碩士學(xué)位論文,2009;溫明星.望水白多分蘗、矮稈突變體的鑒定及相關(guān)QTL定位.南京農(nóng)業(yè)大學(xué)碩士學(xué)位論文,2010;Jinpeng Zhang,Jun Wu,Weihua Liu,Xiang Lu,Xinming Yang,Ainong Gao,Xiuquan Li,Yuqing Lu,Lihui Li.Genetic mapping of a fertile tiller inhibition gene,ftin,in wheat.Mol Breeding.2013,31:441-449)。迄今為止,已報(bào)道的分蘗相關(guān)主效基因QTL位于1A,2A,3A,6A染色體,微效基因位于5A,3B,7B,1D、5D染色體,其中僅1A和3A上的tin基因研究較深入,完成了精細(xì)定位工作。
小麥材料H461相對(duì)于小麥品種川農(nóng)16(國(guó)審品種)具有寡分蘗、多穗粒數(shù)、多小穗數(shù)、高千粒重和高穗粒重等特性(侯永翠,鄭有良,蒲至恩,魏育明,李偉.穗數(shù)型小麥新品種川農(nóng)16與大穗型寡分蘗品系H461遺傳差異研究初報(bào).四川農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào).2003,21:94-9),已定位到一個(gè)顯著降低分蘗數(shù)量且穩(wěn)定遺傳的基因位于2D染色體長(zhǎng)臂上(Wang,Zhiqiang,et al."Identification and validation of novel low-tiller number QTL in common wheat."Theoretical and Applied Genetics 129.3(2016):603-612.)。利用雜合自交家族法,結(jié)合表型和基因型成功創(chuàng)制Ltn3近等基因系B95-1/B95-2,近等基因系雜交構(gòu)建次級(jí)F2群體,開(kāi)發(fā)目標(biāo)區(qū)間內(nèi)的多態(tài)性分子標(biāo)記,進(jìn)一步縮小基因區(qū)間,尋找共分離的分子標(biāo)記,促進(jìn)分蘗基因的圖位克隆,同時(shí)為小麥特異分蘗材料的創(chuàng)制及株型育種提供新基因資源,進(jìn)一步利用分子標(biāo)記輔助選擇,將增強(qiáng)分蘗預(yù)測(cè)的準(zhǔn)確性,提高株型育種效率,加速實(shí)現(xiàn)增加小麥單產(chǎn)的目標(biāo)。
分子標(biāo)記輔助選擇,不依賴于表現(xiàn)型選擇,即不受環(huán)境條件、基因間互作、基因型與環(huán)境互作等多種因素的影響,而是直接對(duì)基因型進(jìn)行選擇,因而能大大提高育種效率。競(jìng)爭(zhēng)性等位基因特異性PCR(Kompetitive Allele Specific PCR),可在廣泛的基因組DNA樣品中,對(duì)SNP和特定位點(diǎn)上的Indel進(jìn)行精準(zhǔn)的雙等位基因檢測(cè)。這種檢測(cè)方法具有操作簡(jiǎn)便、特異性好、高通量、快速、檢測(cè)成本低、結(jié)果準(zhǔn)確等優(yōu)勢(shì),并且實(shí)現(xiàn)了真正的閉管操作而受到普遍的關(guān)注。因此,篩選出與分蘗基因共分離的,且適用于熒光定量PCR平臺(tái)KASP技術(shù)的分子標(biāo)記,不僅能對(duì)小麥分蘗基因進(jìn)行選擇,有效調(diào)控小麥分蘗發(fā)生,塑造合理的分蘗發(fā)生群體,同時(shí)提高了選擇通量、速度和準(zhǔn)確性,解決了大規(guī)模推廣應(yīng)用的技術(shù)瓶頸,對(duì)規(guī)模化改良小麥育種群體質(zhì)量和產(chǎn)量具有重要意義。
技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:
本發(fā)明的目的是提供一種與小麥寡分蘗基因Ltn3共分離的分子標(biāo)記R207及其應(yīng)用。
為了實(shí)現(xiàn)本發(fā)明目的,本發(fā)明提供的與小麥寡分蘗基因Ltn3共分離的分子標(biāo)記R207,標(biāo)記R207位于小麥2D染色體長(zhǎng)臂上,核苷酸序列如下:5’-GGCATCTACATTCGCGTTCNTGCCTGCAGCGGTCAGTCTGATCACCAG-3’;其中,N為C或T。
本發(fā)明還提供所述分子標(biāo)記R207在小麥育種中的應(yīng)用。
本發(fā)明還提供所述分子標(biāo)記在鑒定寡分蘗小麥品種中的應(yīng)用。包括以下步驟:
1)提取待測(cè)小麥的基因組DNA;
2)以待測(cè)小麥的基因組DNA為模板,基于KASP檢測(cè)平臺(tái)技術(shù)設(shè)計(jì)引物,進(jìn)行熒光定量PCR擴(kuò)增;
3)采用熒光檢測(cè)儀分析PCR產(chǎn)物,進(jìn)行基因分型。
其中,步驟2)的引物序列如下:
R207-1:5’-GAAGGTGACCAAGTTCATGCTGGCATCTACATTCGCGTTCC-3’;
R207-2:5’-GAAGGTCGGAGTCAACGGATTGGCATCTACATTCGCGTTCT-3’;
R207-3:5’-CTGGTGATCAGACTGACCGC-3’;
并且,引物R207-1和R207-2的5’端分別連有不同的熒光探針;
所述熒光探針的序列如下:
F探針:5’-GAAGGTGACCAAGTTCATGCT-3’(可結(jié)合FAM熒光基團(tuán))
H探針:5’-GAAGGTCGGAGTCAACGGATT-3’(可結(jié)合HEX熒光基團(tuán))
熒光定量PCR擴(kuò)增反應(yīng)體系:2×KASP Mastermix 5μL,KASP Assay Mix 0.14μL,模板DNA 50ng、Dnase/RNase-free去離子水加至總量為10μL;其中,KASP Assay Mix中含有引物R207-1、R207-2和R207-3,體積比為2:2:5。即,在KASP Assay Mix中,將濃度為100μM的引物R207-1、R207-2和R207-3按2:2:5體積比混合。
熒光定量PCR程序:95℃活化15min;95℃變性20s,65℃退火延伸60s,循環(huán)10次,每次退火延伸溫度降低1℃;94℃變性20s,57℃退火延伸60s,循環(huán)30次;37℃60s,采集熒光信號(hào)。
步驟3)分析PCR產(chǎn)物的具體方法如下:
含有小麥寡分蘗基因Ltn3的小麥品種均出現(xiàn)與小麥H461相同的熒光信號(hào),而不含有小麥寡分蘗基因Ltn3的小麥品種均出現(xiàn)與小麥H461明顯不同的熒光信號(hào)。
本發(fā)明還提供一套基于KASP技術(shù)檢測(cè)所述分子標(biāo)記R207的引物組合,所述引物組合包括:
R207-1:5’-GAAGGTGACCAAGTTCATGCTGGCATCTACATTCGCGTTCC-3’;
R207-2:5’-GAAGGTCGGAGTCAACGGATTGGCATCTACATTCGCGTTCT-3’;
R207-3:5’-CTGGTGATCAGACTGACCGC-3’;
并且,引物R207-1和R207-2的5’端分別連有不同的熒光探針;
所述熒光探針的序列如下:
F探針:5’-GAAGGTGACCAAGTTCATGCT-3’(可結(jié)合FAM熒光基團(tuán))
H探針:5’-GAAGGTCGGAGTCAACGGATT-3’(可結(jié)合HEX熒光基團(tuán))
本發(fā)明還提供所述引物組合在小麥分子標(biāo)記輔助育種中的應(yīng)用。
本發(fā)明還提供一種鑒定小麥寡分蘗基因Ltn3的分子標(biāo)記的方法,以待測(cè)植株樣品的基因組DNA作為模板,用熒光定量PCR引物進(jìn)行熒光定量PCR擴(kuò)增,利用擴(kuò)增結(jié)果進(jìn)行基因型分型,將與近等基因系-寡分蘗植株分為同一類型的植株鑒定為含有小麥寡分蘗基因Ltn3的植株。
本發(fā)明還提供所述分子標(biāo)記R207在制備轉(zhuǎn)基因植物中的應(yīng)用,其中,所述基因?yàn)楣逊痔Y基因Ltn3。
本發(fā)明還提供上述方法在小麥品種改良中的應(yīng)用。
本發(fā)明首次公開(kāi)了基于競(jìng)爭(zhēng)性等位基因特異性PCR(KASP)平臺(tái)精確檢測(cè)小麥H461寡分蘗基因Ltn3的分子標(biāo)記R207,其為共顯性標(biāo)記,檢測(cè)準(zhǔn)確高效,通量高,擴(kuò)增方便穩(wěn)定。
本發(fā)明提供的分子標(biāo)記R207與寡分蘗基因Ltn3共分離,可用于分子標(biāo)記輔助選擇,檢測(cè)結(jié)果表明,該分子標(biāo)記能準(zhǔn)確跟蹤所述小麥寡分蘗基因,預(yù)測(cè)小麥的分蘗特性,進(jìn)而方便進(jìn)行分子設(shè)計(jì)育種。利用本發(fā)明提供的分子標(biāo)記及檢測(cè)方法能夠加強(qiáng)分蘗預(yù)測(cè)的準(zhǔn)確性,提高特異株型育種的成功率,加速實(shí)現(xiàn)增加小麥單產(chǎn)的目標(biāo)。
附圖說(shuō)明
圖1為本發(fā)明實(shí)施例1中小麥寡分蘗基因Ltn3在2D染色體上的位置及與分子標(biāo)記R207之間的連鎖遺傳圖譜。
圖2為本發(fā)明實(shí)施例1中B95-1×B95-2的部分次級(jí)F2群體植株用KASP引物做基因型分型的結(jié)果。
圖3為本發(fā)明實(shí)施例1中次級(jí)F2群體的重組子鑒定及基因Ltn3定位情況。
圖4為本發(fā)明實(shí)施例2中利用基于KASP設(shè)計(jì)的引物,對(duì)B95-1、B95-2、F1、H461、川農(nóng)16及川麥107做基因型分型的檢測(cè)結(jié)果。
具體實(shí)施方式
以下實(shí)施例用于說(shuō)明本發(fā)明,但不用來(lái)限制本發(fā)明的范圍。若未特別指明,實(shí)施例均按照常規(guī)實(shí)驗(yàn)條件,如Sambrook等分子克隆實(shí)驗(yàn)手冊(cè)(Sambrook J&Russell DW,Molecular Cloning:a Laboratory Manual,2001),或按照制造廠商說(shuō)明書(shū)建議的條件。
實(shí)施例1小麥寡分蘗基因Ltn3及分子標(biāo)記R207的獲得
本發(fā)明與小麥寡分蘗基因Ltn3共分離的分子標(biāo)記R207是通過(guò)以下方法獲得的:
(1)利用近等基因系寡分蘗小麥B95-1作為父本本,以近等基因系多分蘗小麥B95-2為母本本雜交,得到雜種F1,F(xiàn)1代單株自交獲得F2,獲得含有986個(gè)單株的次級(jí)F2群體。
(2)用CTAB法提取所述的親本,F(xiàn)1植株和次級(jí)F2群體的各單株的DNA,從數(shù)據(jù)庫(kù)http://plants.ensembl.org/Triticum_aestivum/Info/Index下載獲得目標(biāo)區(qū)間內(nèi)scaffold序列信息,設(shè)計(jì)測(cè)序引物對(duì)親本B95-1和B95-2進(jìn)行DNA擴(kuò)增測(cè)序,通過(guò)DNAMAN 6.0對(duì)測(cè)序結(jié)果進(jìn)行比對(duì),尋找差異位點(diǎn),對(duì)差異位點(diǎn)進(jìn)行KASP分子標(biāo)記開(kāi)發(fā)。獲得親本B95-1的帶型記為A,親本B95-2的帶型記為B,F(xiàn)1植株的帶型記為H。
(3)小麥成熟期田間鑒定所述次級(jí)F2群體植株的分蘗數(shù)。
(4)利用JoinMap4.0作圖軟件將獲得的所述次級(jí)F2群體基因型資料構(gòu)建小麥分子連鎖圖譜,尋找最優(yōu)的標(biāo)記數(shù)和標(biāo)記順序。
(5)設(shè)計(jì)熒光定量PCR引物,用于后續(xù)篩選。利用DNAMAN 6.0軟件設(shè)計(jì)熒光定量PCR引物7對(duì)(表1)。熒光定量PCR引物設(shè)計(jì)標(biāo)準(zhǔn):擴(kuò)增引物長(zhǎng)度18~25bp,擴(kuò)增產(chǎn)物長(zhǎng)度45-60bp,退火溫度57-62℃,GC含量在40%~60%之間。合成引物序列為:
正向引物1:F探針+擴(kuò)增引物序列
正向引物2:H探針+擴(kuò)增引物序列
反向引物:擴(kuò)增引物序列
F探針:5’-GAAGGTGACCAAGTTCATGCT-3’(可結(jié)合FAM熒光基團(tuán))
H探針:5’-GAAGGTCGGAGTCAACGGATT-3’(可結(jié)合HEX熒光基團(tuán))
表1 7對(duì)KASP引物序列及擴(kuò)增片段長(zhǎng)度
(6)競(jìng)爭(zhēng)性等位基因特異性PCR(KASP)分析
a)親本之間多態(tài)性分子標(biāo)記的篩選:選取上述設(shè)計(jì)的7對(duì)引物,以親本B95-1和B95-2的DNA為模板,進(jìn)行PCR擴(kuò)增,共獲得1對(duì)效果良好的分子標(biāo)記引物,命名為R207-1/2/3(核苷酸序列分別如SEQ ID NO:2-4所示)。擴(kuò)增產(chǎn)物為具有多肽性的分子標(biāo)記R207,核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示。
b)次級(jí)F2群體的KASP分析:用上述步驟獲得的具有多態(tài)性的分子標(biāo)記R207的PCR引物,擴(kuò)增親本B95-1、B95-2和次級(jí)F2群體植株的DNA,進(jìn)行基因型鑒定,獲得分子標(biāo)記數(shù)據(jù)。親本B95-1的類型記為A,擴(kuò)增片段大小長(zhǎng)47bp,單堿基差異位點(diǎn)為C。親本B95-2的類型記為B,擴(kuò)增片段長(zhǎng)47bp,單堿基差異位點(diǎn)為T。次級(jí)F2群體株系類型來(lái)源于B95-1的記為A,來(lái)源于B95-2的記為B,雜合記為H。
c)遺傳連鎖圖譜的構(gòu)建:根據(jù)分子標(biāo)記R207的鑒定數(shù)據(jù),結(jié)合已開(kāi)發(fā)的其他分子標(biāo)記的基因分型數(shù)據(jù),用作圖軟件JoinMap 4.0構(gòu)建遺傳高密度圖譜。并結(jié)合次級(jí)F2群體分蘗表型數(shù)據(jù)定位寡分蘗基因Ltn3與R207共分離。
小麥寡分蘗基因Ltn3在2D染色體上的位置及與分子標(biāo)記R207之間的連鎖遺傳圖譜見(jiàn)圖1。
B95-1×B95-2的部分次級(jí)F2群體植株用KASP引物做基因型分型的結(jié)果見(jiàn)圖2。
次級(jí)F2群體的重組子鑒定及基因Ltn3定位情況見(jiàn)圖3。
實(shí)施例2與小麥寡分蘗基因Ltn3共分離的分子標(biāo)記R207的應(yīng)用
基于KASP檢測(cè)平臺(tái)技術(shù)設(shè)計(jì)引物,對(duì)B95-1、B95-2、F1、H461、川農(nóng)16及川麥107做基因型分型檢測(cè)。
1、提取待測(cè)小麥三葉期的葉片基因組DNA;
2、以待測(cè)小麥的基因組DNA為模板,基于KASP檢測(cè)平臺(tái)技術(shù)設(shè)計(jì)引物,進(jìn)行熒光定量PCR擴(kuò)增;
3、采用熒光檢測(cè)儀分析PCR產(chǎn)物,進(jìn)行基因分型。
其中,步驟2的引物序列如下:
R207-1:5’-GAAGGTGACCAAGTTCATGCTGGCATCTACATTCGCGTTCC-3’;
R207-2:5’-GAAGGTCGGAGTCAACGGATTGGCATCTACATTCGCGTTCT-3’;
R207-3:5’-CTGGTGATCAGACTGACCGC-3’;
并且,引物R207-1和R207-2的5’端分別連有不同的熒光探針;
所述熒光探針的序列如下:
F探針:5’-GAAGGTGACCAAGTTCATGCT-3’(可結(jié)合FAM熒光基團(tuán))
H探針:5’-GAAGGTCGGAGTCAACGGATT-3’(可結(jié)合HEX熒光基團(tuán))
熒光定量PCR擴(kuò)增反應(yīng)體系:2×KASP Mastermix 5μL,KASP Assay Mix 0.14μL,模板DNA 50ng、Dnase/RNase-free去離子水加至總量為10μL;其中,KASP Assay Mix中含有引物R207-1、R207-2和R207-3,體積比為2:2:5。即,在KASP Assay Mix中,將濃度為100μM的引物R207-1、R207-2和R207-3按2:2:5體積比混合。
熒光定量PCR程序:95℃活化15min;95℃變性20s,65℃退火延伸60s,循環(huán)10次,每次退火延伸溫度降低1℃;94℃變性20s,57℃退火延伸60s,循環(huán)30次;37℃60s,采集熒光信號(hào)。
分析PCR產(chǎn)物的具體方法如下:
含有小麥寡分蘗基因Ltn3的小麥品種均出現(xiàn)與小麥H461相同的熒光信號(hào),而不含有小麥寡分蘗基因Ltn3的小麥品種均出現(xiàn)與小麥H461明顯不同的熒光信號(hào)?;蛐头中徒Y(jié)果見(jiàn)圖4。
雖然,上文中已經(jīng)用一般性說(shuō)明及具體實(shí)施方案對(duì)本發(fā)明作了詳盡的描述,但在本發(fā)明基礎(chǔ)上,可以對(duì)之作一些修改或改進(jìn),這對(duì)本領(lǐng)域技術(shù)人員而言是顯而易見(jiàn)的。因此,在不偏離本發(fā)明精神的基礎(chǔ)上所做的這些修改或改進(jìn),均屬于本發(fā)明要求保護(hù)的范圍。
序列表
<110> 四川農(nóng)業(yè)大學(xué)
<120> 與小麥寡分蘗基因Ltn3共分離的分子標(biāo)記R207及其應(yīng)用
<130> KHP161119103.5Q
<160> 6
<170> PatentIn version 3.3
<210> 1
<211> 48
<212> DNA
<213> 小麥
<220>
<221> misc_feature
<222> (20)..(20)
<223> n為c或t
<400> 1
ggcatctaca ttcgcgttcn tgcctgcagc ggtcagtctg atcaccag 48
<210> 2
<211> 41
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 2
gaaggtgacc aagttcatgc tggcatctac attcgcgttc c 41
<210> 3
<211> 41
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 3
gaaggtcgga gtcaacggat tggcatctac attcgcgttc t 41
<210> 4
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 4
ctggtgatca gactgaccgc 20
<210> 5
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 5
gaaggtgacc aagttcatgc t 21
<210> 6
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 6
gaaggtcgga gtcaacggat t 21