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      用于檢測熊源性成分的熒光PCR引物組及檢測方法與流程

      文檔序號:11506363閱讀:514來源:國知局
      用于檢測熊源性成分的熒光PCR引物組及檢測方法與流程

      本發(fā)明屬于分子檢測技術(shù)領(lǐng)域,具體涉及一種用于檢測熊源性成分的熒光pcr引物組及檢測方法。



      背景技術(shù):

      熊屬于哺乳綱食肉目熊科,目前在分屬問題上尚存爭議。根據(jù)boldsystems(http://www.boldsystems.org/),現(xiàn)存的熊科〔ursidae〕動物分5屬8種:熊貓屬〔ailuropoda〕(大熊貓〔ailuropodamelanoleuca〕),眼鏡熊屬〔tremarctos〕(眼鏡熊〔tremarctosornatus〕),馬來熊屬〔helarctos〕(馬來熊〔helarctosmalayanus〕),懶熊屬〔melursus〕(懶熊〔melursusursinus〕)和熊屬〔ursus〕(棕熊〔ursusarctos〕、美洲黑熊〔ursusamericanus〕、亞洲黑熊〔ursusthibetanus〕、北極熊〔ursusmaritimus〕)。大熊貓是瀕危旗艦物種,具有觀賞的作用,歷史上在中國廣泛分布,但由于棲息地的喪失,大熊貓數(shù)量在不斷地減少。亞洲黑熊的膽汁是亞洲傳統(tǒng)醫(yī)學(xué)的重要藥材,擁有重要的藥用價值;熊的皮毛、熊肉、熊脂、熊掌等也是物資交易的重要產(chǎn)品,因而具有很高的經(jīng)濟價值。正因如此,導(dǎo)致了熊在各個國家之間的非法貿(mào)易。除了亞洲黑熊和棕熊之外,其它幾個熊科物種也都納入國際自然保護聯(lián)盟組織之列。為了加強對熊類的保護,限制其非法貿(mào)易,建立一種更加合適的對來源于熊的可疑樣品的檢測方法是必需的。目前對熊產(chǎn)品的dna研究主要集中在熊基因分析及保護、熊屬性別、mhc基因及親子鑒定、熊膽成分檢測和熊種屬鑒定等方面,而對來自熊科物種產(chǎn)品的dna檢測與鑒定技術(shù)的研究還較為少見?,F(xiàn)有研究的主要方法有多重pcr、pcr測序、dna條形碼和微衛(wèi)星技術(shù)等,這些方法在一定程度上解決問題的同時,還不盡如人意,如常規(guī)pcr靈敏度較低,微衛(wèi)星技術(shù)需要大量篩選引物,擴增條件選擇較困難且標記開發(fā)費用較高。鑒于熒光pcr技術(shù)在dna檢測方面的優(yōu)點,本實驗擬建立一種熒光pcr檢測熊源性成分的方法。



      技術(shù)實現(xiàn)要素:

      本發(fā)明的目的在于提供一種用于檢測熊源性成分的熒光pcr引物組及檢測方法。

      本發(fā)明所采取的技術(shù)方案是:

      用于檢測熊源性成分的熒光pcr引物及探針,其是根據(jù)熊科動物的線粒體dna序列所設(shè)計的。

      所述引物及探針的核苷酸序列如下所示:

      f-primer:5’-ctcctatttacarttatagccac-3’(seqidno.1),

      r-primer:5’-gtratgayagtcgctcctcagaa-3’(seqidno.2),

      probe:5’-ggataygtcctaccctgrggccaaat-3’(seqidno.3)。

      一種用于檢測熊源性成分的試劑盒,其包括以上所述的熒光pcr引物及探針。

      一種熊源性成分的檢測方法,包括如下步驟:

      (1)提取樣品dna;

      (2)以樣品dna為模板,利用所述的熒光pcr引物、探針進行熒光pcr擴增;

      (3)根據(jù)擴增曲線來判斷樣品中是否含有熊源性成分。

      所述熒光pcr反應(yīng),25μl反應(yīng)體系中包括:2×taqpcrmastermix12.5μl,上下游引物各1.0μl,引物濃度為10μmol/l,探針0.5μl,探針濃度10μmol/l,dna模版5.0μl,補水至25μl。

      所述熒光pcr反應(yīng)條件參數(shù)如下所示:94℃3min;94℃15s,60℃40s,收集熒光信號,40個循環(huán)。

      本發(fā)明的有益效果是:

      本發(fā)明根據(jù)熊科線粒體dna(mtdna)序列設(shè)計的特異性引物、探針,用以建立taqman探針熒光pcr檢測熊源性成分的方法。本發(fā)明方法特異性好、靈敏度較高,最低可以檢測到10拷貝重組質(zhì)粒dna。而且方法的穩(wěn)定性好,對相同的樣品在兩個時間進行重復(fù)檢測,批內(nèi)變異系數(shù)分別為2.04%、2.09%,批間變異系數(shù)為6.86%。結(jié)果表明,本研究建立的方法可應(yīng)用于熊組織及其加工品中的熊源性成分的檢測。

      附圖說明

      圖1為熊樣品pcr檢測結(jié)果(m:dnamarkerdl2000;1:熊掌;2:熊膽;n:陰性對照);

      圖2為熊膽、熊掌熒光pcr檢測結(jié)果;

      圖3為特異性試驗結(jié)果;

      圖4為靈敏度試驗結(jié)果;

      圖5為第一次穩(wěn)定性試驗結(jié)果;

      圖6為第二次穩(wěn)定性試驗結(jié)果。

      具體實施方式

      下面結(jié)合實施例對本發(fā)明作進一步的說明,但并不局限于此。

      以下實施例中所采用的分子生物學(xué)實驗技術(shù)包括pcr擴增、質(zhì)粒提取、質(zhì)粒轉(zhuǎn)化、dna片段連接、酶切、凝膠電泳等,如無特殊說明,通常按照常規(guī)方法操作,具體可參見《分子克隆實驗指南》(第三版)(sambrookj,russelldw,janssenk,argentinej.黃培堂等譯,2002,北京:科學(xué)出版社),或按照制造廠商所建議的條件。

      實施例1熊源性成分的熒光pcr檢測方法的建立

      1、樣品

      熊掌、熊膽各一份,為本實驗室保留樣品;8份動物樣品(鹿茸、水牛、牦牛、黃牛、豬、綿羊、山羊、羚羊角各1份)為本實驗室留存樣品。

      2、pcr引物的設(shè)計與合成

      根據(jù)熊科動物線粒體dna(mtdna)序列設(shè)計一套特異性熒光pcr引物、探針,由上海輝睿生物科技有限公司合成。引物、探針序列見表1。

      表1熊源性成分熒光pcr引物、探針序列

      3、樣品dna的提取

      按照dna提取試劑盒說明書提取樣品dna,并確保所提取的dna模板260/280比值介于1.8和2.0。

      4、種屬鑒定

      以提取的熊樣品dna為模板,使用自行設(shè)計的熊引物(引物序列見表2)進行常規(guī)pcr擴增。pcr反應(yīng)體系25μl:2×taqpcrmastermix12.5μl,10μmol/l上下游引物各1.0μl,dna模版2.0μl,補水至25μl。反應(yīng)程序:94℃4min;94℃30s,58℃30s,72℃30s,35個循環(huán);72℃5min。擴增結(jié)束后于2%瓊脂糖凝膠電泳檢測,回收目的片段,送寶生物公司進行ta克隆測序,將測序結(jié)果與靶基因進行比對,確定其種屬來源,實驗結(jié)果見圖1。

      表2熊物種鑒定引物序列

      由圖1可見,2份熊組織樣品均被成功進行pcr擴增,產(chǎn)物大小約為145bp,與預(yù)期相符。pcr產(chǎn)物經(jīng)克隆測序,確認2份熊樣品均來自亞洲黑熊。

      5、taqman探針熒光pcr反應(yīng)體系與條件

      以提取的熊膽和熊掌dna為模板進行熒光pcr擴增。反應(yīng)體系25μl:2×taqpcrmastermix12.5μl,上下游引物各1.0μl(引物濃度10μmol/l),探針0.5μl(探針濃度10μmol/l),dna模版5.0μl,補水至25μl。反應(yīng)程序:94℃3min;94℃15s,60℃40s(收集熒光信號),40個循環(huán)。

      由圖2可見,亞洲黑熊熊膽、熊掌的dna均出現(xiàn)擴增曲線,ct值均小于23,陰性對照未見擴增曲線,其所需的反應(yīng)時間顯著短于pcr。

      實施例2特異性實驗

      以8份動物樣品(鹿茸、水牛、牦牛、黃牛、豬、綿羊、山羊、羚羊角)提取的dna為模板,使用上述反應(yīng)體系和條件進行熒光pcr擴增,驗證所建立方法的特異性,結(jié)果如圖3所示。

      由圖3可見,陽性對照出現(xiàn)擴增曲線,其它種屬的8份樣品均未見擴增曲線。

      實施例3靈敏度實驗

      使用熒光pcr引物進行常規(guī)pcr擴增,pcr產(chǎn)物經(jīng)克隆測序所得的重組質(zhì)粒使用紫外分光光度計測定質(zhì)粒濃度,根據(jù)阿伏伽德羅常數(shù)換算成拷貝數(shù),將質(zhì)粒以10倍梯度稀釋以作陽性標準品,對經(jīng)梯度稀釋的陽性標準品進行熒光pcr檢測,驗證所建立方法的靈敏度,結(jié)果如圖4所示。

      由圖4可見,7個濃度梯度(106-100)的陽性質(zhì)粒中,有6個(106-10)出現(xiàn)擴增曲線,ct值<36,可檢測到的最低濃度為10拷貝數(shù)量級,即為該檢測方法的靈敏度。

      實施例4穩(wěn)定性實驗

      以上述質(zhì)粒濃度為105的陽性標準品為模板,使用所建立的方法進行兩次試驗,試驗時間間隔為30天,每次試驗做20個重復(fù)。統(tǒng)計cyclethreshold(ct)值之間的差異,以驗證所建立方法的穩(wěn)定性。

      由圖5、圖6可見,使用microsoftexcel對兩次試驗獲得的ct值進行數(shù)據(jù)分析,結(jié)果顯示兩次批內(nèi)重復(fù)試驗的變異系數(shù)分別為2.04%和2.09%,批間變異系數(shù)為6.86%。

      以上實驗結(jié)果表明:本發(fā)明方法特異性好、靈敏度較高,最低可以檢測到10拷貝重組質(zhì)粒dna。而且方法的穩(wěn)定性好,對相同的樣品在兩個時間進行重復(fù)檢測,批內(nèi)變異系數(shù)分別為2.04%、2.09%,批間變異系數(shù)為6.86%。結(jié)果表明,本研究建立的方法可應(yīng)用于熊組織及其加工品中的熊源性成分的檢測。

      sequencelisting

      <110>珠海出入境檢驗檢疫局檢驗檢疫技術(shù)中心

      <120>用于檢測熊源性成分的熒光pcr引物組及檢測方法

      <130>

      <160>5

      <170>patentinversion3.5

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      <211>23

      <212>dna

      <213>人工序列

      <400>1

      ctcctatttacarttatagccac23

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      <400>3

      ggataygtcctaccctgrggccaaat26

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      <212>dna

      <213>人工序列

      <400>5

      agcgctagtactcctcctagttt23

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