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      一種綠色熒光蛋白結(jié)合蛋白偶聯(lián)的瓊脂糖的制備方法與流程

      文檔序號(hào):11687543閱讀:3129來(lái)源:國(guó)知局
      一種綠色熒光蛋白結(jié)合蛋白偶聯(lián)的瓊脂糖的制備方法與流程

      本發(fā)明屬于生物試劑發(fā)明領(lǐng)域,具體的說(shuō),是涉及一種綠色熒光蛋白結(jié)合蛋白偶聯(lián)的瓊脂糖的制備方法。



      背景技術(shù):

      隨著現(xiàn)代分子生物學(xué)和生物化學(xué)技術(shù)的發(fā)展,對(duì)于小分子之間的互作研究越來(lái)越熱門,一般而言,小分子互作主要包括蛋白和蛋白之間的互作,dna和蛋白之間的互作,rna和蛋白之間的互作,要研究清楚靶蛋白和其互作分子之間的關(guān)系一般采用免疫沉淀的方式,簡(jiǎn)而言之,就是用靶蛋白的抗體和proteina/g偶聯(lián)后,靶蛋白會(huì)結(jié)合到proteina/g上面,其互作分子也會(huì)相應(yīng)被拖下來(lái),采用westernblot或者質(zhì)譜的方式來(lái)分析其互作情況。但是,靶蛋白特異性的抗體和proteina/g結(jié)合能力較弱,因此捕獲靶蛋白的能力也弱,一些和靶蛋白互作較弱或者間接性互作的分子就不容易被發(fā)掘。

      目前常用的商業(yè)化beads有很多種,比如myc、flag、ha、his等等,這些beads結(jié)合效率不僅低,而且成本非常昂貴,對(duì)于大量做ip或者質(zhì)譜的實(shí)驗(yàn)室來(lái)說(shuō),選擇一種經(jīng)濟(jì)實(shí)惠而且效價(jià)很高的beads是非常重要的。



      技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:

      本發(fā)明的目的在于提供一種綠色熒光蛋白結(jié)合蛋白偶聯(lián)的瓊脂糖的制備方法。

      為實(shí)現(xiàn)上述目的,本發(fā)明采用如下技術(shù)方案:

      一種綠色熒光蛋白結(jié)合蛋白偶聯(lián)的瓊脂糖的制備方法,包括如下:

      (1)載體設(shè)計(jì)以及構(gòu)建:設(shè)計(jì)引物pet28ahis-gbpf:tcgcggatccgaattcatgcaggttcagctggttga,pet28ahis-gbpr:gtgcggccgcaagcttagaagaaacggtaacctggg,以pcr擴(kuò)增的方式獲得gbp基因產(chǎn)物,回收后和線性化的pet28a載體連接,轉(zhuǎn)化dh5a,菌落pcr驗(yàn)證大小正確的克隆送測(cè)序,測(cè)序正確的單菌落提取質(zhì)粒并保菌;獲得的gbp基因產(chǎn)物是做了突變改造的gbp,具體表現(xiàn)為將第66個(gè)氨基酸賴氨酸k突變?yōu)楸彼醓;

      (2)將取得的質(zhì)粒用于目的蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)及純化;

      (3)nhs偶聯(lián)獲得綠色熒光蛋白結(jié)合蛋白偶聯(lián)的瓊脂糖。

      所述的目的蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)及純化為:

      (1)轉(zhuǎn)化:取1μl質(zhì)粒加到50μlbl21感受態(tài)細(xì)胞中,冰上30min,42℃熱擊90秒,冰上2min,加入500μl不含抗生素的液體lb培養(yǎng)基,37℃150rpm復(fù)蘇1h,取100μl菌液涂布于含50ug/ml卡那霉素的固體lb培養(yǎng)基上,37℃培養(yǎng)箱中倒置培養(yǎng)18h;

      (2)活化:挑取單克隆于含50ug/ml卡那霉素的15ml液體lb培養(yǎng)基的50ml離心管中,37℃220rpm培養(yǎng)過(guò)夜;

      (3)擴(kuò)培:菌液按1:100的體積比例轉(zhuǎn)接5ml菌液到兩瓶含50ug/ml卡那霉素的500ml液體lb培養(yǎng)基的三角瓶中,37℃220rpm培養(yǎng)2h,od值0.4-0.6;

      (4)誘導(dǎo):分別加入500μl0.1miptg,終濃度0.1mm,16℃220rpm誘導(dǎo)過(guò)夜14h;

      (5)收菌:用離心瓶或者50ml離心管收集菌體,4℃6000rpm離心5min;

      (6)重懸:菌體用10mlpbs重懸,加入蛋白酶抑制劑復(fù)合物,100μltritonx-100,終濃度1%,100μl1m咪唑,終濃度10mm;

      (7)破碎:放置冰上超聲破碎直至菌液不再粘稠;

      (8)離心:4℃12000rpm離心15min;

      (9)平衡ni-ntaagarose:取250μlni-natagarose于1.5ml離心管中,加入750μlpbs,顛倒數(shù)次,4℃1000g離心3min;重復(fù)洗兩次;

      (10)結(jié)合:將蛋白上清轉(zhuǎn)移到15ml離心管中,加入平衡過(guò)的ni-ntaagarose250μl,4℃旋轉(zhuǎn)結(jié)合2h或者過(guò)夜;

      (11)洗脫:4℃1000g離心3min,棄上清;用10倍體積含50mm咪唑的pbs洗脫雜蛋白,總共洗三次;將ni-ntaagarose轉(zhuǎn)移到1.5ml離心管中,吸干上清,用400μl500mm咪唑洗脫his-gbp,4℃旋轉(zhuǎn)15min后離心收集上清到新的離心管中;重復(fù)洗脫一次;

      (12)bca法測(cè)蛋白濃度;同時(shí)跑sds-page膠,考染鑒定純化效果;

      (13)超濾法除咪唑:用200μlddh2o平衡10k超濾管,14000g室溫離心15min;將蛋白上清轉(zhuǎn)移到超濾管中,14000g室溫離心15min,用450μlpbs洗五次;更換新的收集管,倒扣離心15min收集上清液蛋白。

      所述nhs偶聯(lián)為:

      (1)稱取0.15gnhs-activatedagarose干粉于15ml離心管中,200μl蛋白上清用1mlpbs稀釋后加入管中,另外加入2mlpbs讓干粉充分吸脹,室溫結(jié)合1h;

      (2)4℃1000g離心3min,棄上清,用3mlpbs洗三次;

      (3)加入3mlph7.41mtris-cl封閉nhs未結(jié)合位點(diǎn),室溫結(jié)合20min;

      離心棄上清,用3mlpbs洗三次;

      (4)加入1mlpbs,1μl1000×nan3,終0.02w/v%,4℃保存,最終得到綠色熒光蛋白結(jié)合蛋白偶聯(lián)的瓊脂糖。

      本發(fā)明的優(yōu)點(diǎn)在于:本綠色熒光蛋白結(jié)合蛋白偶聯(lián)的瓊脂糖利用原核表達(dá)的方式誘導(dǎo)表達(dá)出gfpbindingprotein,gfpbindingprotein能夠和nhs-activatedagarose高效地結(jié)合,這種結(jié)合能力要遠(yuǎn)遠(yuǎn)大于其他瓊脂糖的結(jié)合能力,同時(shí)也大于gfp抗體和proteina/g制作的瓊脂糖的結(jié)合能力,同時(shí),在gfpbindingprotein和nhs-activatedagarose完全偶聯(lián)以后,采用quenchingbuffer封閉住未結(jié)合位點(diǎn),有效地降低了非特異結(jié)合。

      附圖說(shuō)明

      圖1鋪有hek293t細(xì)胞的六孔板中各轉(zhuǎn)染3微克gfp質(zhì)粒,裂解后做免疫共沉淀,a為本發(fā)明綠色熒光蛋白結(jié)合蛋白偶聯(lián)瓊脂糖珠,b為proteina/g和gfp抗體孵育后座的ip,左邊本發(fā)明瓊脂糖珠做完ip后都發(fā)綠,說(shuō)明結(jié)合效率非常高,右邊為對(duì)應(yīng)的考馬斯亮藍(lán)染色圖。

      圖2在hek293細(xì)胞中共轉(zhuǎn)染以下質(zhì)粒:1微克cry2,1.5微克gfpcop1,1微克flag-co,1微克myc-spa1質(zhì)粒,光處理0h、0.5h、1.5h,裂解后使用本發(fā)明瓊脂糖做的co-ip結(jié)果,結(jié)果表明cry2、spa1在藍(lán)光下競(jìng)爭(zhēng)性結(jié)合cop1,從而抑制了cop1和co的互作。

      圖3在大豆中使用k599農(nóng)桿菌介導(dǎo)的方法注射含有g(shù)fp的農(nóng)桿菌,長(zhǎng)出的發(fā)剪下研磨裂解開(kāi)后使用本發(fā)明瓊脂糖珠做ip,然后跑sds聚丙烯酰胺變性膠后切膠酶解,使用質(zhì)譜檢測(cè)gfp蛋白的表達(dá),可以非常清晰的檢測(cè)到gfp的表達(dá)。

      圖4綠色熒光蛋白結(jié)合蛋白偶聯(lián)的瓊脂糖特異性結(jié)合結(jié)果圖。a是用普通方法做的ip,有明顯的背景雜帶,b是用我們gfpbeads做的ip,背景非常干凈。

      具體實(shí)施方式

      實(shí)施例1

      一種綠色熒光蛋白結(jié)合蛋白偶聯(lián)的瓊脂糖的制備方法,包括如下:

      (1)載體設(shè)計(jì)以及構(gòu)建:設(shè)計(jì)引物pet28ahis-gbpf:tcgcggatccgaattcatgcaggttcagctggttga,pet28ahis-gbpr:gtgcggccgcaagcttagaagaaacggtaacctggg,以pcr擴(kuò)增的方式獲得gbp基因產(chǎn)物,回收后和線性化的pet28a載體連接,轉(zhuǎn)化dh5a,菌落pcr驗(yàn)證大小正確的克隆送測(cè)序,測(cè)序正確的單菌落提取質(zhì)粒并保菌;

      (2)將取得的質(zhì)粒用于目的蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)及純化;

      (3)nhs偶聯(lián)獲得綠色熒光蛋白結(jié)合蛋白偶聯(lián)的瓊脂糖。

      所述的目的蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)及純化為:

      (1)轉(zhuǎn)化:取1μl質(zhì)粒加到50μlbl21感受態(tài)細(xì)胞中,冰上30min,42℃熱擊90秒,冰上2min,加入500μl不含抗生素的液體lb培養(yǎng)基,37℃150rpm復(fù)蘇1h,取100μl菌液涂布于含50ug/ml卡那霉素的固體lb培養(yǎng)基上,37℃培養(yǎng)箱中倒置培養(yǎng)18h;

      (2)活化:挑取單克隆于含50ug/ml卡那霉素的15ml液體lb培養(yǎng)基的50ml離心管中,37℃220rpm培養(yǎng)過(guò)夜;

      (3)擴(kuò)培:菌液按1:100的體積比例轉(zhuǎn)接5ml菌液到兩瓶含50ug/ml卡那霉素的500ml液體lb培養(yǎng)基的三角瓶中,37℃220rpm培養(yǎng)2h,od值0.5;

      (4)誘導(dǎo):分別加入500μl0.1miptg,終濃度0.1mm,16℃220rpm誘導(dǎo)過(guò)夜14h;

      (5)收菌:用離心瓶或者50ml離心管收集菌體,4℃6000rpm離心5min;

      (6)重懸:菌體用10mlpbs重懸,加入一片cocktail片劑蛋白酶抑制劑復(fù)合物,100μltritonx-100,終濃度1%,100μl1m咪唑,終濃度10mm;

      (7)破碎:放置冰上超聲破碎直至菌液不再粘稠;

      (8)離心:4℃12000rpm離心15min;

      (9)平衡ni-ntaagarose:取250μlni-natagarose于1.5ml離心管中,加入750μlpbs,顛倒數(shù)次,4℃1000g離心3min;重復(fù)洗兩次;

      (10)結(jié)合:將蛋白上清轉(zhuǎn)移到15ml離心管中,加入平衡過(guò)的ni-ntaagarose250μl,4℃旋轉(zhuǎn)結(jié)合2h;

      (11)洗脫:4℃1000g離心3min,棄上清;用10倍體積含50mm咪唑的pbs洗脫雜蛋白,總共洗三次;將ni-ntaagarose轉(zhuǎn)移到1.5ml離心管中,吸干上清,用400μl500mm咪唑洗脫his-gbp,4℃旋轉(zhuǎn)15min后離心收集上清到新的離心管中;重復(fù)洗脫一次;

      (12)bca法測(cè)蛋白濃度;同時(shí)跑sds-page膠,考染鑒定純化效果;

      (13)超濾法除咪唑:用200μlddh2o平衡10k超濾管,14000g室溫離心15min;將蛋白上清轉(zhuǎn)移到超濾管中,14000g室溫離心15min,用450μlpbs洗五次;更換新的收集管,倒扣離心15min收集上清液蛋白。

      所述nhs偶聯(lián)為:

      (1)稱取0.15gnhs-activatedagarose干粉于15ml離心管中,200μl蛋白上清用1mlpbs稀釋后加入管中,另外加入2mlpbs讓干粉充分吸脹,室溫結(jié)合1h;

      (2)4℃1000g離心3min,棄上清,用3mlpbs洗三次;

      (3)加入3mlph7.41mtris-cl封閉nhs未結(jié)合位點(diǎn),室溫結(jié)合20min;

      離心棄上清,用3mlpbs洗三次;

      (4)加入1mlpbs,1μl1000×nan3,終0.02w/v%,4℃保存,最終得到綠色熒光蛋白結(jié)合蛋白偶聯(lián)的瓊脂糖。

      應(yīng)用實(shí)施例2

      (1)在鋪有hek293t細(xì)胞的六孔板中各轉(zhuǎn)染3μggfp質(zhì)粒,裂解后采用本發(fā)明制備的瓊脂糖做免疫共沉淀,具體結(jié)果如圖1,a為我們自己制作的綠色熒光蛋白結(jié)合蛋白偶聯(lián)瓊脂糖,b為proteina/g和gfp抗體孵育后做的免疫共沉淀,左邊自己制作的瓊脂糖,做完ip后都發(fā)綠,說(shuō)明結(jié)合效率非常高,右邊為對(duì)應(yīng)的考馬斯亮藍(lán)染色圖;而b中顯示了在做完免疫共沉淀后,beads沒(méi)有明顯發(fā)綠,說(shuō)明ip下來(lái)的gfp蛋白相對(duì)來(lái)說(shuō)比較少,而且做了考馬斯亮藍(lán)染色后基本看不到條帶,也印證了其結(jié)合效率要比我們自己做的beads低很多。

      (2)在hek293細(xì)胞中共轉(zhuǎn)染以下質(zhì)粒:1微克cry2,1.5微克gfpcop1,1微克flag-co,1微克myc-spa1質(zhì)粒,光處理0h、0.5h、1.5h,裂解后使用實(shí)施例1中制作的瓊脂糖珠做的co-ip結(jié)果如圖2,結(jié)果表明cry2、spa1在藍(lán)光下競(jìng)爭(zhēng)性結(jié)合cop1,從而抑制了cop1和co的互作,此結(jié)果使用普通的方法即proteina/g和抗體孵育的方法做不出來(lái)。

      gfpcop1、flag-co、myc-spa1、cry2質(zhì)粒的制備方法為:

      分別設(shè)計(jì)如下pcr引物:

      cop1f:gcgtggtacctctagaatggaagagatttcgacgga;

      cop1r:gaagcggccgcccgggtcacgcagcgagtaccaga;

      cof:gcgtggtacctctagaatgttgaaacaagagagtaa;

      cor:gaagcggccgcccgggtcagaatgaaggaacaatc;

      spa1f:gcgtggtacctctagaatgcctgttatggaaagagt;

      spa1r:gaagcggccgcccgggtcaaacaagttttagtagc;

      cry2f:gcgtggtacctctagaatgaagatggacaaaaagac;

      cry2r:gaagcggccgcccgggtcatttgcaaccatttttt;

      以擬南芥cdna為模板,進(jìn)行pcr擴(kuò)增,然后回收pcr產(chǎn)物,將產(chǎn)物與線性化pci(neo)載體相連獲得相對(duì)應(yīng)的質(zhì)粒。

      (3)在大豆中使用k599農(nóng)桿菌介導(dǎo)的方法注射含有g(shù)fp的農(nóng)桿菌,長(zhǎng)出的發(fā)根剪下研磨裂解開(kāi)后使用實(shí)施例1制作的瓊脂糖珠做ip,然后跑sds聚丙烯酰胺變性膠后切膠酶解,使用質(zhì)譜檢測(cè)gfp蛋白的表達(dá),可以非常清晰的檢測(cè)到gfp的表達(dá)(如圖3),此結(jié)果使用proteina/g和gfp抗體孵育的方式做不出來(lái),因?yàn)榇蠖拱l(fā)根中蛋白表達(dá)量非常少,只有高效的富集能力才能富集得到質(zhì)譜能夠識(shí)別的蛋白量。

      以上所述僅為本發(fā)明的較佳實(shí)施例,凡依本發(fā)明申請(qǐng)專利范圍所做的均等變化與修飾,皆應(yīng)屬本發(fā)明的涵蓋范圍。

      sequencelisting

      <110>吉林大學(xué)

      <120>一種綠色熒光蛋白結(jié)合蛋白偶聯(lián)的瓊脂糖的制備方法

      <130>10

      <160>10

      <170>patentinversion3.3

      <210>1

      <211>36

      <212>dna

      <213>人工序列

      <400>1

      tcgcggatccgaattcatgcaggttcagctggttga36

      <210>2

      <211>36

      <212>dna

      <213>人工序列

      <400>2

      gtgcggccgcaagcttagaagaaacggtaacctggg36

      <210>3

      <211>36

      <212>dna

      <213>人工序列

      <400>3

      gcgtggtacctctagaatggaagagatttcgacgga36

      <210>4

      <211>35

      <212>dna

      <213>人工序列

      <400>4

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      <210>5

      <211>36

      <212>dna

      <213>人工序列

      <400>5

      gcgtggtacctctagaatgttgaaacaagagagtaa36

      <210>6

      <211>35

      <212>dna

      <213>人工序列

      <400>6

      gaagcggccgcccgggtcagaatgaaggaacaatc35

      <210>7

      <211>36

      <212>dna

      <213>人工序列

      <400>7

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      <210>8

      <211>35

      <212>dna

      <213>人工序列

      <400>8

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      <212>dna

      <213>人工序列

      <400>9

      gcgtggtacctctagaatgaagatggacaaaaagac36

      <210>10

      <211>35

      <212>dna

      <213>人工序列

      <400>10

      gaagcggccgcccgggtcatttgcaaccatttttt35

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