本發(fā)明屬于生物醫(yī)藥領(lǐng)域,具體涉及一種青稞β-葡聚糖的制備工藝及其結(jié)構(gòu)序列。
背景技術(shù):
青稞,大麥屬,是青藏高原地區(qū)人民的主食之一,也是家畜飼料和工業(yè)原料作物。據(jù)監(jiān)測,青稞中β-葡聚糖的含量是所有谷物中含量最高的農(nóng)作物。谷物中的β-葡聚糖是由吡喃型葡萄糖通過β-(1→3)或者β-(1→4)糖苷鍵連接而成的線型多糖。近年來,青稞β-葡聚糖在食品科學(xué)領(lǐng)域受到很大關(guān)注,β-葡聚糖的許多重要的生理學(xué)功能和生理活性逐漸被人認知,據(jù)報道,青稞β-葡聚糖可以作為固有免疫和獲得性免疫的調(diào)節(jié)劑,具有良好的降血糖降血脂功能,并在抗氧化、抗腫瘤等方面也顯示出良好的應(yīng)用前景。由于行業(yè)中對青稞β-葡聚糖的結(jié)構(gòu)、活性研究較為有限,因而其在行業(yè)中的應(yīng)用也較為低端,多數(shù)將青稞打粉后制作面食、面餅等普通食品,未能充分發(fā)揮其降糖降血脂等作用。雖然目前已經(jīng)發(fā)現(xiàn)β-葡聚糖具有顯著的降血脂和降血糖作用,但由于其序列結(jié)構(gòu)復(fù)雜,絕大多數(shù)降血脂降血糖活性片段及其作用機理未能明確,阻礙了它們被開發(fā)成防治高血脂和糖尿病新藥的進程。
目前,也有一些關(guān)于谷物中β-葡聚糖的制備方法的專利或者文獻的公開,但是大多數(shù)方法一般是僅對其中β-葡聚糖進行粗提,得到樣品純度較低,色澤較差或者制備過程需借助色譜,如離子交換(deae等)或者分子篩(sephadex-g200等)對樣品進行純化,過程較為復(fù)雜,不適宜大批量制備進而工業(yè)化。
技術(shù)實現(xiàn)要素:
本發(fā)明目的是提供一種青稞β-葡聚糖的制備工藝和青稞β-葡聚糖的結(jié)構(gòu)序列,解決難以提取純度較高的青稞β-葡聚糖、青稞β-葡聚糖序列復(fù)雜、其藥用性能不明確等的問題。
本發(fā)明的技術(shù)方案是:
提供一種青稞β-葡聚糖的制備工藝,該方法包括如下步驟:
(1)青稞粉碎:將青稞磨成粉后,過40-80目篩,制得青稞粉;
(2)滅酶:在所述青稞粉中加入高濃度乙醇,加熱回流;
(3)提取并除淀粉:在經(jīng)步驟(2)加工后所得的青稞粉中加入水,調(diào)整ph值至7-11,然后加入高溫淀粉酶,混合均勻后于85-90℃條件下攪拌回流1-10h;
(4)除蛋白:調(diào)整步驟(3)所得的溶液的ph值至2-4.5,靜置后蛋白沉淀析出,離心去除沉淀,制得提取液;
(5)制備粗多糖:對所述提取液濃縮1-5倍后加入硫酸銨,靜置后粗多糖沉淀析出,離心后收集沉淀,得青稞β-葡聚糖粗品;
(6)除小分子:將所述青稞β-葡聚糖粗品加水復(fù)溶,然后去除小分子雜質(zhì),制得青稞β-葡聚糖溶液;
(7)干燥:將所述青稞β-葡聚糖溶液進行干燥,得到精制的青稞β-葡聚糖。
進一步的,步驟(2)中所述料液比為1g:1ml-1g:20ml,所述乙醇的濃度>80%,所述加熱回流時間為1-5小時。
進一步的,步驟(3)中所述青稞粉與水的料水比為1g:5ml-1g:50ml,所述ph值采用20%的na2co3調(diào)整,所述高溫淀粉酶與所述青稞粉的比為10u:1g至1000u:1g。
進一步的,步驟(5)中所述硫酸銨與濃縮后的提取液的料液比為1g:2ml-1g:8ml。
進一步的,步驟(6)中所述去除小分子雜質(zhì)采用超濾膜過濾的方式,所述超濾膜為有機或者無機膜,所述超濾膜截留分子量為1000–5000da。
進一步的,步驟(7)中所述干燥的方式為噴霧、帶式、烘箱或冷凍中的任意一種。
本發(fā)明的另一技術(shù)方案是:
提供一種上述工藝所制備的青稞β-葡聚糖,所述青稞β-葡聚糖的結(jié)構(gòu)中含有重復(fù)單元glc1→3glc1→4glc/glc1→3glc1→4glc1→4glc。
進一步的,所述青稞β-葡聚糖的結(jié)構(gòu)中具有β-(1→3)和β-(1→4)兩種連接方式的直鏈葡聚糖。
進一步的,所述青稞β-葡聚糖的結(jié)構(gòu)中dp3n、dp3n+1和dp3n+2組成一個周期循環(huán),其中,所述dp3n具有兩種序列連接,分別為[glc1→4glc1→4glc]n和[glc1→3glc1→4glc]n;所述dp3n+1是每一個周期中豐度最高的寡糖,其表述為[glc1→3glc1→4glc]n→4glc;所述dp3n+2是每一個周期中含量較少的寡糖,其為均一的β-(1→4)連接葡萄糖片段。
進一步的,所述青稞β-葡聚糖中β-(1→3)與β-(1→4)糖苷鍵的比值為1:2至1:5。
本發(fā)明所述青稞β-葡聚糖的具體優(yōu)點如下:
(1)該青稞β-葡聚糖的制備工藝簡單,適合大規(guī)模生產(chǎn);
(2)利用本發(fā)明所述的工藝制備的青稞β-葡聚糖純度高;
(3)該青稞β-葡聚糖結(jié)構(gòu)明確;
(4)該青稞β-葡聚糖具有良好的降血糖降血脂功能。
附圖說明
為了更清楚地說明本發(fā)明實施例的技術(shù)方案,下面將對實施例描述中所需要使用的附圖作簡單地介紹,顯而易見地,下面描述中的附圖僅僅是本發(fā)明的一些實施例,對于本領(lǐng)域普通技術(shù)人員來講,在不付出創(chuàng)造性勞動性的前提下,還可以根據(jù)這些附圖獲得其它的附圖。其中,
圖1為本發(fā)明中所述的一種青稞β-葡聚糖的制備工藝所制備的青稞β-葡聚糖的核磁共振譜圖;
圖2為本發(fā)明中β-葡聚糖單糖組成以及各標(biāo)準(zhǔn)品對比圖;
圖3為本發(fā)明中β-葡聚糖部分酶解產(chǎn)物中寡糖的分離分析圖;
圖4是本發(fā)明中6h、12h以及24h酶解產(chǎn)物中寡糖pad色譜圖及其對應(yīng)的提取離子流色譜圖(eic);
圖5是本發(fā)明中dp2-dp4的二級質(zhì)譜圖;
圖6是本發(fā)明中dp5-dp7的二級質(zhì)譜圖;
表1是本發(fā)明中青稞β-葡聚糖的13cnmr峰位歸屬;
表2是本發(fā)明中青稞β-葡聚糖對高脂血癥小鼠血漿中血脂的影響(n=10);
表3是本發(fā)明中青稞β-葡聚糖對高脂血癥小鼠肝脂以及肝重系數(shù)的影響(n=10);
表4是本發(fā)明中青稞β-葡聚糖對高脂血癥小鼠肝組織mda含量,sod和gsh-px活性的影響(n=10);
表5是本發(fā)明中青稞β-葡聚糖對高血糖小鼠空腹血糖的影響(n=10);
表6是本發(fā)明中青稞β-葡聚糖對高血糖小鼠口服葡萄糖耐量的影響(n=10);
表7是本發(fā)明中青稞β-葡聚糖對高血糖小鼠糖原的影響(n=10)。
具體實施方式
本發(fā)明提供一種青稞β-葡聚糖的制備工藝,包括以下步驟:
(1)青稞粉碎:將青稞磨成粉后,過40-80目篩,制得青稞粉;
(2)滅酶:在所述青稞粉中加入高濃度乙醇,加熱回流;
(3)提取并除淀粉:在經(jīng)步驟(2)加工后所得的青稞粉中加入水,調(diào)整ph值至7-11,然后加入高溫淀粉酶,混合均勻后于85-90℃條件下攪拌回流1-10h;
(4)除蛋白:調(diào)整步驟(3)所得的溶液的ph值至2-4.5,靜置后蛋白沉淀析出,離心去除沉淀,制得提取液;
(5)制備粗多糖:對所述提取液濃縮1-5倍后加入硫酸銨,靜置后粗多糖沉淀析出,離心后收集沉淀,得青稞β-葡聚糖粗品;
(6)除小分子:將所述青稞β-葡聚糖粗品加水復(fù)溶,然后去除小分子雜質(zhì),制得青稞β-葡聚糖溶液;
(7)干燥:將所述青稞β-葡聚糖溶液進行干燥,得到精制的青稞β-葡聚糖。
為使本發(fā)明的上述目的、特征和優(yōu)點能夠更加明顯易懂,下面結(jié)合具體實施方式對本發(fā)明作進一步詳細的說明。
一種青稞β-葡聚糖的制備工藝,包括:
步驟一:將青稞磨成粉后,過40-80目篩,制得青稞粉;
步驟二:在所述青稞粉中加入高濃度乙醇,加熱回流;
在一個實施例中,該步驟可以具體如下執(zhí)行:將青稞粉中加入高濃度乙醇,加熱回流。料液比為1:1-1:20(g:ml);乙醇濃度>80%;回流時間1-5小時。該過程的目的在于除去脂溶性物質(zhì)、色素,并且抑制內(nèi)源性β-葡聚糖酶或生物酶在提取過程中降解目標(biāo)產(chǎn)物。
步驟三:在青稞粉中加入水,調(diào)整ph值至7-11,然后加入高溫淀粉酶,混合均勻后于85-90℃條件下攪拌回流1-10h;
在一個實施例中,該步驟可以具體如下執(zhí)行:按照1:5到1:50的料水比在處理后的青稞粉中加水,采用20%na2co3調(diào)整ph到7-11,并按照活力單位(u)與乙醇處理后青稞粉質(zhì)量(g)比為10:1至1000:1加入高溫淀粉酶,混合均勻后于85-90℃條件下攪拌回流1-10h。
步驟四:調(diào)整所得的溶液的ph值至2-4.5,靜置后蛋白沉淀析出,離心去除沉淀,制得提取液;
在一個實施例中,該步驟可以具體如下執(zhí)行:調(diào)整溶液ph至2-4.5,靜置后蛋白(淀粉酶以及青稞中固有蛋白)沉淀析出,離心去除沉淀。
步驟五:對所述提取液濃縮1-5倍后加入硫酸銨,靜置后粗多糖沉淀析出,離心后收集沉淀,得青稞β-葡聚糖粗品;
在一個實施例中,該步驟可以具體如下執(zhí)行:對提取液濃縮1-5倍后加入硫酸銨,硫酸銨質(zhì)量(g)與濃縮后的提取液(ml)料液比為1:2-1:8,靜置后粗多糖沉淀析出,離心后收集沉淀。該步驟是根據(jù)不同多糖在不同鹽溶液中溶解度不同,使β-葡聚糖在硫酸銨溶液中沉淀,而提取液中的阿拉伯木聚糖會在加入硫酸銨條件下不會析出,達到純化β-葡聚糖的目的。
步驟六:將所述青稞β-葡聚糖粗品加水復(fù)溶,然后去除小分子雜質(zhì),制得青稞β-葡聚糖溶液;
在一個實施例中,該步驟可以具體如下執(zhí)行:將β-葡聚糖粗品加水復(fù)溶后,采用超濾膜過濾的方式取去除小分子雜質(zhì)。這個過程中選用截留分子量為1000–5000da的有機或者無機膜。
步驟七:將所述青稞β-葡聚糖溶液進行干燥,得到精制的青稞β-葡聚糖。
在一個實施例中,該步驟可以具體如下執(zhí)行:將經(jīng)過膜處理的溶液,以噴霧或帶式或烘箱或冷凍等方式進行干燥,得到精制β-葡聚糖產(chǎn)品。
上述工藝所制得的具有降血糖降血脂功能的青稞β-葡聚糖的結(jié)構(gòu)特征為含有重復(fù)單元glc1→3glc1→4glc/glc1→3glc1→4glc1→4glc,且他們之間存在多個結(jié)構(gòu)序列均一但不同長度的β-(1→4)連接的葡萄糖片段。根據(jù)核磁共振結(jié)果,在上述條件下提取制備的樣品為具有β-(1→3)和β-(1→4)兩種連接方式的直鏈葡聚糖。根據(jù)hpaec-pad-ms/ms分析結(jié)果,組成該β-葡聚糖的片段存在一定重復(fù)規(guī)律,即不同聚合度的寡糖之間存在一定規(guī)律,dp3n,dp3n+1,dp3n+2,可組成一個周期循環(huán),其中,dp3n具有兩種序列連接,它們是分別為[glc1→4glc1→4glc]n和[glc1→3glc1→4glc]n;dp3n+1是每一個周期中豐度最高的寡糖,它可以表述為[glc1→3glc1→4glc]n→4glc;dp3n+2含量較少,它為均一的β-(1→4)連接的葡萄糖片段。此外,制備所得葡聚糖中β-(1→3)與β-(1→4)糖苷鍵的比值確定為1:2至1:5。該青稞β-葡聚糖有較好的防治高血脂和糖尿病活性,并有潛在成藥性。
取上述工藝所得β-葡聚糖進行體內(nèi)降血脂和降血糖試驗,具體實驗條件以及實驗結(jié)果如下:
1)降血脂實驗:通過預(yù)防給藥的方式,進行判定,采取上午灌胃給藥(根據(jù)體重200mg/kg),下午灌食高脂乳劑(乳劑由15%豬油和1.5%膽固醇等輔料制備而成),在連續(xù)灌胃21天以后,發(fā)現(xiàn)該β-葡聚糖相對與模型組可以顯著降低實驗組小鼠的總膽固醇(tc)(*p<0.05),低密度脂蛋白膽固醇(ldl-c)(*p<0.05),以及改善小鼠體內(nèi)游離脂肪酸(ffa)(*p<0.05)的含量,具體機理可能是β-葡聚糖可以抑制肝腸循環(huán)過程中膽汁酸的重新收,從而促進肝臟中l(wèi)dl-c轉(zhuǎn)化為膽酸,從而達到降血脂的目的。
2)降血糖實驗:向建模組小鼠根據(jù)體重110mg/kg注射鏈脲佐菌素,特異性損傷小鼠胰腺,建立i型糖尿病模型,對實驗組小鼠體重采取灌胃給藥(200mg/kg)的方式給予β-葡聚糖。在連續(xù)灌胃給藥10天之后,β-葡聚糖與模型組對比可以顯著降低糖尿病小鼠的空腹血糖(*p<0.05),改善小鼠口服葡萄糖耐量(*p<0.05),促進肝糖原的合成(*p<0.05)以及肌糖原的合成(*p<0.05),具體機理可能是β-葡聚糖通過保護小鼠胰島細胞,增加胰島素的分泌,促進肌糖原和肝糖原的合成,達到降低血糖的目的。
為使本發(fā)明的上述目的、特征和優(yōu)點能夠更加明顯易懂,下面結(jié)合附圖和實施例進一步說明本發(fā)明的技術(shù)方案。但是本發(fā)明不限于所列出的實施例,還應(yīng)包括在本發(fā)明所要求的權(quán)利范圍內(nèi)其他任何公知的改變。
首先,此處所稱的“一個實施例”或“實施例”是指可包含于本發(fā)明至少一個實現(xiàn)方式中的特定特征、結(jié)構(gòu)或特性。在本說明書中不同地方出現(xiàn)的“在一個實施例中”并非均指同一個實施例,也不是單獨的或選擇性的與其他實施例互相排斥的實施例。
其次,本發(fā)明利用結(jié)構(gòu)示意圖等進行詳細描述,在詳述本發(fā)明實施例時,為便于說明,示意圖會不依一般比例作局部放大,而且所述示意圖只是實例,其在此不應(yīng)限制本發(fā)明保護的范圍。此外,在實際制作中應(yīng)包含長度、寬度及深度的三維空間。
實施例一
本實施案例按如下步驟展示一種青稞β-葡聚糖的制備工藝:
將青稞連帶麩皮磨粉,過60目篩;將青稞粉收集后,稱取30g青稞粉,加入150ml80%乙醇溶液,置于75℃回流2h。離心,除去乙醇溶液和色素,將沉淀置于干燥箱烘干。加水?dāng)嚢?,按照料水比?:15,向30g青稞粉中加入450ml水溶液,使用20%na2co3調(diào)整ph至10,并加入4.5ml(約135u)耐高溫淀粉酶,在90℃(85-95℃均可)條件下攪拌回流2h,4500r/min,15min,收集上清液;冷卻至室溫,4500r/min,15min,分離后收集上清液,再加入適量耐高溫淀粉酶,85℃保持1-2h,選用0.1mol/l碘液作為指示劑,直至碘液不再變色,確認淀粉降解為單糖或寡糖;冷卻至室溫后,用hcl調(diào)整溶液ph至2-4.5,攪拌,靜置,沉淀蛋白;4500r/min,15min,離心得上清液,調(diào)整ph至7.0,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā),將體積濃縮至1/3,并于每50ml濃縮液中加入14.5g(nh4)2so4固體,邊加邊攪拌,使硫酸銨溶液充分溶解后,置于4℃,靜置,過夜;4500r/min,15min,收集沉淀,加入100ml純水,充分加熱溶解;冷卻至室溫,緩慢加入3倍體積的無水乙醇,充分攪拌后,置于4℃,靜置,過夜;4500r/min,15min,收集沉淀,加入100ml純水,邊加熱邊攪拌,直至沉淀完全溶解;采用孔徑為3500da的卷式有機膜進行脫鹽處理,每隔1h換水,透析24h,用0.5mbacl2進行監(jiān)測,直至樣品溶液與bacl2溶液混合時不再產(chǎn)生白色沉淀;12000r/min,15min,去除溶液中可能存在的不溶性小顆粒,收集上清液,將溶液濃縮為原來體積的1/5,冷凍干燥,得到1gβ-葡聚糖產(chǎn)品。
1、青稞β-葡聚糖的結(jié)構(gòu)表征
對實施例1中所得的產(chǎn)品分別進行核磁共振分析、單糖組成分析和序列分析。
(1)核磁共振分析
13c-nmr分析結(jié)果所得譜圖如圖1所示,根據(jù)已有知識,異頭碳的化學(xué)位移大于103ppm的,則糖苷鍵類型為β型,可初步確定該糖鏈為β型。除此之外,根據(jù)文獻中已有的凝膠多糖(curdlan,由單一的β-(1→3)糖苷鍵連接而成的葡聚糖)的常規(guī)13c-nmr峰位歸屬以及纖維素(cellulose,由單一的β-(1→4)糖苷鍵連接而成的葡聚糖)的固態(tài)13c-nmr峰位歸屬特征,可對青稞β-葡聚糖的譜圖進行有效地歸屬。其中,104.03ppm與103.20ppm處的共振峰分別歸屬為β-(1→3)-d-glc的異頭碳c-1以及β-(1→4)-d-glc的異頭碳c-1,β-(1→3)-d-glc的c-3共振峰出現(xiàn)在87.71ppm處,將73.38,71.04,76.70以及61.24ppm的共振峰分別歸屬為β-(1→3)-d-glc的c-2,c-4,c-5andc-6,68.72,將72.63,80.74,75.37以及60.69ppm處的共振峰分別歸屬為c-2,c-3,c-4,c-5以及c-6,具體見下表1。
表1青稞β-葡聚糖的13c-nmr峰位歸屬
(2)單糖組成分析
通過hpaec-pad的方式對實施例1中制備所得青稞β-葡聚糖進行單糖組成分析。在分析之前,采用2m三氟乙酸(tfa)對實施例1中制備所得樣品進行降解,降解12h后,通過旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)的方式,將具有強腐蝕作用的tfa去除。分別配制阿拉伯糖、半乳糖、葡萄糖以木糖標(biāo)準(zhǔn)品溶液及其混合液,采用hpeac-pad對降解樣品以及標(biāo)準(zhǔn)品溶液進行分離分析,分析柱為carbopacpa-1column(4×250mm,dionex,sunnyvale,ca),并選取15mmnaoh溶液為流動相,以1ml/min進行等度洗脫。根據(jù)降解后的樣品和標(biāo)準(zhǔn)單糖的pad色譜圖對比,樣品降解后只有葡萄糖被檢測到,葡萄糖色譜峰的純度超過95%。因此可確定制備所得β-葡聚糖純度較高(>95%)。如圖2所示。
(3)序列結(jié)構(gòu)分析
為了研究青稞β-葡聚糖的序列結(jié)構(gòu)特征,將β-葡聚糖溶于10mmpbs緩沖溶液中,樣品濃度3mg/ml,加入1uβ-葡聚糖酶,置于37℃恒溫水浴培養(yǎng)箱;分別于6h,12h,24h采集樣品;采集后溶液煮沸,使酶失活,并離心(15000r/min,10min)去除變性蛋白。采用離子色譜同時串聯(lián)pad和q-tof質(zhì)譜儀的方式,對不同時間酶解產(chǎn)物進行分離分析。分析柱為carbopacpa-200column(3×250mm,dionex,sunnyvale,ca),流動相a為100mmnaoh,流動相b為1mnaoac以及100mmnaoh溶液,以0.8ml/min流速進行梯度洗脫,其中,b相在0-35min內(nèi)由0%洗脫至35%。
β-葡聚糖部分酶解產(chǎn)物中寡糖的分離分析流程具體見圖3,由于流動相中存在高濃度的非揮發(fā)性鹽,不可直接進入質(zhì)譜,因此需經(jīng)具有在線脫鹽功能的陽離子交換柱處理;圖4,分別為6h、12h以及24h酶解產(chǎn)物的pad色譜圖與其對應(yīng)的提取離子流色譜圖(eic),如圖所示,eic與pad譜圖結(jié)果可互相對應(yīng),在脫鹽過程中,可導(dǎo)致樣品的擴散,因而,eic中峰型比pad譜圖中峰型寬。其次,對圖中各峰進行歸屬,根據(jù)圖中6h酶解產(chǎn)物的分析結(jié)果可發(fā)現(xiàn),不同聚合度的寡糖分布存在一定規(guī)律,dp3n,dp3n+1,dp3n+2,可組成一個周期循環(huán),其中,dp3n具有兩種序列連接,dp3n+1是每一個周期中豐度最高的寡糖,dp3n+2含量較少。
對聚合度為dp2-7的寡糖分別進行二級質(zhì)譜分析,結(jié)果如圖5(a、b、c、d)及圖6(a、b、c、d)。圖5a為二糖二級質(zhì)譜結(jié)果,b1(m/z161)/c1(m/z179)是典型的糖苷鍵斷裂,據(jù)報道,2,4a2(m/z221)/2,5a2(m/z263)是1,4糖苷鍵連接二糖的特殊離子峰,因此該二糖的連接方式可以確認為glc1→4glc。圖5b和5c分別為dp3(a)以及dp3(b)的二級質(zhì)譜結(jié)果。在dp3(a)的二級質(zhì)譜圖中,除了典型的b和c糖苷鍵斷裂以外,還有2,5a2(m/z263)和2,5a3(m/z425)斷裂方式的存在,因此,可以確定dp3(a)的兩個糖苷鍵連接方式均為1,4連接。根據(jù)dp3(b)二級質(zhì)譜圖可知,在二級質(zhì)譜轟擊過程中,第二個糖環(huán)上未發(fā)生任何跨環(huán)斷裂,而這一特征可證明1→3糖苷鍵的存在,第三個糖環(huán)上出現(xiàn)了2,4a3(m/z383)/2,5a3(m/z425)/0,2a3(m/z443)的斷裂方式,證明了1→4糖苷鍵的存在。因此,dp3(a)和dp3(b)的序列結(jié)構(gòu)可分別確認為glc1→4glc1→4glc以及glc1→3glc1→4glc。圖5d為dp4二級質(zhì)譜結(jié)果,由于2,5a3(m/z425)和2,5a4(m/z587)的存在,可確認,從非還原端處開始的第二個和第三個糖苷鍵均為1,4糖苷鍵;由于該譜圖中未找到第二個糖環(huán)上的任何跨環(huán)斷裂的碎片離子峰,因而該四糖中第一個糖苷鍵可確定為1,3糖苷鍵。dp4的序列結(jié)構(gòu)確認為glc1→3glc1→4glc1→4glc。同理可得,圖6(a、b、c、d)中dp5,dp6(a),dp6(b),dp7的序列結(jié)構(gòu)可分別確定為:
glc1→4glc1→4glc1→4glc1→4glc,
glc1→4glc1→4glc1→4glc1→4glc1→4glc,
glc1→3glc1→4glc1→4glc1→3glc1→4glc,
glc1→3glc1→4glc1→4glc1→3glc1→4glc1→4glc。
綜上所述,實施例1中制備所得的青稞β-葡聚糖具有如下結(jié)構(gòu)特征:存在重復(fù)單元glc1→3glc1→4glc/glc1→3glc1→4glc1→4glc,且存在多個β-(1→4)連接的片段。根據(jù)核磁共振結(jié)果,在上述條件下提取制備的樣品為具有β-(1→3)和β-(1→4)兩種連接方式的直鏈葡聚糖。根據(jù)hpaec-pad-ms/ms分析結(jié)果,組成該β-葡聚糖的片段存在一定重復(fù)規(guī)律,即,dp3n,dp3n+1,dp3n+2,可組成一個周期循環(huán),其中,dp3n存在兩種序列連接,它們是分別為[glc1→4glc1→4glc]n和[glc1→3glc1→4glc]n;dp3n+1是每一個周期中豐度最高的寡糖,它可以表述為[glc1→3glc1→4glc]n→4glc;dp3n+2含量較少,它為均一的β-(1→4)連接的葡萄糖片段。此外,制備所得葡聚糖中β-(1→3)與β-(1→4)糖苷鍵的比值確定為1:3。
2、青稞β-葡聚糖的降血脂功能評價
對實施例1中制備所得青稞β-葡聚糖進行降血脂體內(nèi)活性評價。
選取40只雄性昆明小鼠,體重18-22g,通過預(yù)防給藥的方式,進行判定,采取上午灌胃給藥(根據(jù)體重200mg/kg),下午灌食高脂乳劑(乳劑由15%豬油和1.5%膽固醇等輔料制備而成)的方式,連續(xù)灌胃21天,最后,眼球取血后處死。提取小鼠肝臟組織,稱重,按照不同試劑盒要求測定這40只小鼠體內(nèi)總膽固醇(tc)、甘油三酯(tg)、高密度脂蛋白膽固醇(hdl-c)、低密度脂蛋白膽固醇(ldl-c)、小鼠肝臟中總膽固醇、甘油三酯和肝重系數(shù)指標(biāo)以及游離脂肪酸(ffa)的結(jié)果以及肝臟內(nèi)多種酶活性進行評價。試驗中分為空白組、模型組、實驗組和陽性藥對照組,其中陽性藥為辛伐他汀(20mg/kg)。具體結(jié)果見表2、表3、表4。
表2青稞β-葡聚糖對高脂血癥小鼠血脂的影響(n=10)
注:與正常組比較,##p?0.01,#p?0.05;與模型組比較**p?0.01,*p?0.05。
表3青稞β-葡聚糖對高脂血癥小鼠肝脂以及肝重系數(shù)的影響(n=10)
注:與正常組比較,##p?0.01,#p?0.05;與模型組比較**p?0.01,*p?0.05。
表4青稞β-葡聚糖對高脂血癥小鼠肝組織mda含量,sod和gsh-px活性的影響(n=10)
注:與正常組比較,##p?0.01,#p?0.05;與模型組比較**p?0.01,*p?0.05。
表2、表3、表4中,與正常組小鼠對比,模型組小鼠體內(nèi)多項參數(shù)存在顯著差異,具有統(tǒng)計學(xué)意義(##p?0.01或#p?0.05),說明模型建立成功。表2中,實驗組小鼠與模型組對比,血清中tc、ldl-c以及hdl-c等指標(biāo)均有顯著改善,且存在顯著差異,存在統(tǒng)計學(xué)意義(**p?0.01或*p?0.05),表3和表4中,實驗組小鼠與模型組相比,實驗組小鼠肝臟系數(shù)具有顯著改善(**p?0.01),且肝臟內(nèi)sod以及gsh-px活性增加,機體抗氧化能力增強。
高血脂小鼠體內(nèi)實驗結(jié)果表明,青稞β-葡聚糖可以有效降低血清中tc、ldl-c和ffa的濃度,并且可以適當(dāng)增加小鼠血清中hdl-c,此外,青稞β-葡聚糖可以有效地增加實驗組小鼠體內(nèi)抗氧化酶活性,因而可確定,采用該工藝生產(chǎn)的青稞β-葡聚糖具有良好的降血脂作用以及抗氧化作用。
3、青稞β-葡聚糖的降血糖活性評價
對實施例1中制備所得青稞β-葡聚糖進行降血糖體內(nèi)活性評價試驗。
選用雄性昆明小鼠,體重18-22g,適應(yīng)性培養(yǎng)后隨機分為兩組,空白組和建模組,向建模組小鼠根據(jù)體重110mg/kg注射鏈脲佐菌素,特異性損傷小鼠胰腺,建立i型糖尿病模型,并將建模成功的小鼠隨機分為三組:模型組、陽性對照組以及實驗組。對實驗組小鼠體重采取灌胃給藥(200mg/kg)的方式給予β-葡聚糖,分別于0day、10day、20day、30day取血,測量空腹血糖濃度,并于培養(yǎng)第30天后,禁食,分別取0h、0.5h、2h測定口服葡萄糖耐受量,并于眼球取血后處死,提取小鼠肝臟組織和肌肉組織,稱重,按照不同試劑盒要求測定這40只小鼠空腹血糖濃度、肝糖原、肌糖原、口服葡萄糖耐受量(ogtt)進行測量。試驗中共設(shè)置4組,分別為空白組、模型組、實驗組和陽性藥對照組,其中,陽性藥為二甲雙胍(20mg/kg)。具體結(jié)果見表5、表6、表7。
表5青稞β-葡聚糖對高血糖小鼠空腹血糖的影響(n=10)
注:與正常組比較,##p?0.01,#p?0.05;與模型組比較**p?0.01,*p?0.05。
表6青稞β-葡聚糖對高血糖小鼠口服葡萄糖耐量的影響(n=10)
注:與正常組比較,##p?0.01,#p?0.05;與模型組比較**p?0.01,*p?0.05。
表7青稞β-葡聚糖對高血糖小鼠糖原的影響(n=10)
注:與正常組比較,##p?0.01,#p?0.05;與模型組比較**p?0.01,*p?0.05.
表5、表6、表7中,與正常組小鼠對比,模型組小鼠體內(nèi)多項參數(shù)存在顯著差異,具有統(tǒng)計學(xué)意義(##p?0.01或#p?0.05),說明模型建立成功。表5中,與模型組小鼠相比,實驗組小鼠空腹血糖濃度得到有效控制(**p?0.01),血糖耐受量得到有效改善(**p?0.01);表6中,實驗組小鼠體內(nèi)的肌糖原和肝糖原含量顯著增多(**p?0.01).
動物實驗結(jié)果表明,青稞β-葡聚糖可以有效地降低高血糖小鼠的空腹血糖,改善口服血糖耐受量,促進肝糖原以及肌糖原的合成,從而可以進一步確認,采用該工藝制備的β-葡聚糖具有良好的降血糖的作用。
根據(jù)上述數(shù)據(jù),可以判斷采取該工藝制備的青稞β-葡聚糖具有較好的降血脂以及降血糖活性。
實施例二
本實施案例按如下步驟展示一種青稞β-葡聚糖的制備工藝:
將青稞連帶麩皮磨粉,過40目篩;將青稞粉收集后,稱取80g青稞粉,加入400ml80%乙醇溶液,置于75℃回流2h。離心,除去乙醇溶液和色素,將沉淀置于干燥箱烘干。加水?dāng)嚢?,按照料水比?:20,向80g青稞粉中加入1600ml水溶液,使用20%na2co3調(diào)整ph至10,并加入12ml(約359u)耐高溫淀粉酶,在85℃條件下攪拌回流2h,4500r/min,15min,收集上清液;冷卻至室溫,4500r/min,15min,分離后收集上清液,再加入適量耐高溫淀粉酶,85℃保持1-2h,選用0.1mol/l碘液作為指示劑,直至碘液不再變色,確認淀粉降解為單糖或寡糖;冷卻至室溫后,用hcl調(diào)整溶液ph至3,攪拌,靜置,沉淀蛋白;4500r/min,15min,離心得上清液,調(diào)整ph至7.0,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā),將體積濃縮至1/3,并于每50ml濃縮液中加入16.5g(nh4)2so4固體,邊加邊攪拌,使硫酸銨溶液充分溶解后,置于4℃,靜置,過夜;4500r/min,15min,收集沉淀,加入250ml純水,充分加熱溶解;冷卻至室溫,緩慢加入3倍體積的無水乙醇,充分攪拌后,置于4℃,靜置,過夜;4500r/min,15min,收集沉淀,加入250ml純水,邊加熱邊攪拌,直至沉淀完全溶解;采用孔徑為3500da的卷式有機膜進行脫鹽處理,每隔1h換水,透析24h,用0.5mbacl2進行監(jiān)測,直至樣品溶液與bacl2溶液混合時不再產(chǎn)生白色沉淀;12000r/min,15min,去除溶液中可能存在的不溶性小顆粒,收集上清液,將溶液濃縮為原來體積的1/5,冷凍干燥,得到3.5gβ-葡聚糖產(chǎn)品。
實施例三
本實施案例按如下步驟展示一種青稞β-葡聚糖的制備工藝:
將青稞連帶麩皮磨粉,過40目篩;將青稞粉收集后,稱取120g青稞粉,加入600ml80%乙醇溶液,置于75℃回流2h。離心,除去乙醇溶液和色素,將沉淀置于干燥箱烘干。加水?dāng)嚢?,按照料水比?:15,向120g青稞粉中加入1800ml水溶液,使用20%na2co3調(diào)整ph至10,并加入14ml(約408u)耐高溫淀粉酶,在90℃條件下攪拌回流2h,4500r/min,15min,收集上清液;冷卻至室溫,4500r/min,15min,分離后收集上清液,再加入適量耐高溫淀粉酶,85℃保持1-2h,選用0.1mol/l碘液作為指示劑,直至碘液不再變色,確認淀粉降解為單糖或寡糖;冷卻至室溫后,用hcl調(diào)整溶液ph至2.5,攪拌,靜置,沉淀蛋白;4500r/min,15min,離心得上清液,調(diào)整ph至7.0,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā),將體積濃縮至1/3,并于每50ml濃縮液中加入12.5g(nh4)2so4固體,邊加邊攪拌,使硫酸銨溶液充分溶解后,置于4℃,靜置,過夜;4500r/min,15min,收集沉淀,加入400ml純水,充分加熱溶解;冷卻至室溫,緩慢加入3倍體積的無水乙醇,充分攪拌后,置于4℃,靜置,過夜;4500r/min,15min,收集沉淀,加入400ml純水,邊加熱邊攪拌,直至沉淀完全溶解;采用孔徑為3500da的卷式有機膜進行脫鹽處理,每隔1h換水,透析24h,用0.5mbacl2進行監(jiān)測,直至樣品溶液與bacl2溶液混合時不再產(chǎn)生白色沉淀;12000r/min,15min,去除溶液中可能存在的不溶性小顆粒,收集上清液,將溶液濃縮為原來體積的1/5,冷凍干燥,得到4.8gβ-葡聚糖產(chǎn)品。
實施例四
本實施案例按如下步驟展示一種青稞β-葡聚糖的制備工藝:
將青稞連帶麩皮磨粉,過60目篩;將青稞粉收集后,稱取140g青稞粉,加入840ml80%乙醇溶液,置于75℃回流2h。離心,除去乙醇溶液和色素,將沉淀置于干燥箱烘干。加水?dāng)嚢?,按照料水比?:10,向140g青稞粉中加入1400ml水溶液,使用20%na2co3調(diào)整ph至10,并加入19ml(約600u)耐高溫淀粉酶,在85℃條件下攪拌回流2h,4500r/min,15min,收集上清液;冷卻至室溫,4500r/min,15min,分離后收集上清液,再加入適量耐高溫淀粉酶,85℃保持1-2h,選用0.1mol/l碘液作為指示劑,直至碘液不再變色,確認淀粉降解為單糖或寡糖;冷卻至室溫后,用hcl調(diào)整溶液ph至3,攪拌,靜置,沉淀蛋白;4500r/min,15min,離心得上清液,調(diào)整ph至7.0,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā),將體積濃縮至1/3,并于每50ml濃縮液中加入16.5g(nh4)2so4固體,邊加邊攪拌,使硫酸銨溶液充分溶解后,置于4℃,靜置,過夜;4500r/min,15min,收集沉淀,加入500ml純水,充分加熱溶解;冷卻至室溫,緩慢加入3倍體積的無水乙醇,充分攪拌后,置于4℃,靜置,過夜;4500r/min,15min,收集沉淀,加入500ml純水,邊加熱邊攪拌,直至沉淀完全溶解;采用孔徑為3500da的卷式有機膜進行脫鹽處理,每隔1h換水,透析24h,用0.5mbacl2進行監(jiān)測,直至樣品溶液與bacl2溶液混合時不再產(chǎn)生白色沉淀;12000r/min,15min,去除溶液中可能存在的不溶性小顆粒,收集上清液,將溶液濃縮為原來體積的1/5,冷凍干燥,得到5.2gβ-葡聚糖產(chǎn)品。
實施例五
本實施案例按如下步驟展示一種青稞β-葡聚糖的制備工藝:
將青稞連帶麩皮磨粉,過60目篩;將青稞粉收集后,稱取200g青稞粉,加入1000ml80%乙醇溶液,置于75℃回流2h。離心,除去乙醇溶液和色素,將沉淀置于干燥箱烘干。加水?dāng)嚢?,按照料水比?:15,向200g青稞粉中加入3000ml水溶液,使用20%na2co3調(diào)整ph至10,并加入24ml(約750u)耐高溫淀粉酶,在85℃條件下攪拌回流2h,4500r/min,15min,收集上清液;冷卻至室溫,4500r/min,15min,分離后收集上清液,再加入適量耐高溫淀粉酶,85℃保持1-2h,選用0.1mol/l碘液作為指示劑,直至碘液不再變色,確認淀粉降解為單糖或寡糖;冷卻至室溫后,用hcl調(diào)整溶液ph至3,攪拌,靜置,沉淀蛋白;4500r/min,15min,離心得上清液,調(diào)整ph至7.0,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā),將體積濃縮至1/3,并于每50ml濃縮液中加入16.5g(nh4)2so4固體,邊加邊攪拌,使硫酸銨溶液充分溶解后,置于4℃,靜置,過夜;4500r/min,15min,收集沉淀,加入600ml純水,充分加熱溶解;冷卻至室溫,緩慢加入3倍體積的無水乙醇,充分攪拌后,置于4℃,靜置,過夜;4500r/min,15min,收集沉淀,加入600ml純水,邊加熱邊攪拌,直至沉淀完全溶解;采用孔徑為3500da的卷式有機膜進行脫鹽處理,每隔1h換水,透析24h,用0.5mbacl2進行監(jiān)測,直至樣品溶液與bacl2溶液混合時不再產(chǎn)生白色沉淀;12000r/min,15min,去除溶液中可能存在的不溶性小顆粒,收集上清液,將溶液濃縮為原來體積的1/5,冷凍干燥,得到12.3gβ-葡聚糖產(chǎn)品。
綜上所述,本發(fā)明公開了一種青稞β-葡聚糖的制備工藝,通過高效溶出、硫酸銨沉淀、超濾膜過濾等關(guān)鍵工藝的改進,使得β-葡聚糖有較高的純度,純度達到95%以上,且色澤較好;得率較高,每100g干燥青稞粉中可提取3-10gβ-葡聚糖;結(jié)構(gòu)序列明確;以及具有良好的降血脂以及降血糖活性,可以用于高血脂以及糖尿病的治療,為開發(fā)治療高血脂以及糖尿病的新藥打下基礎(chǔ),積極推動高血脂以及糖尿病天然藥物活性成分的研究開發(fā)。
應(yīng)說明的是,以上實施例僅用以說明本發(fā)明的技術(shù)方案而非限制,盡管參照較佳實施例對本發(fā)明進行了詳細說明,本領(lǐng)域的普通技術(shù)人員應(yīng)當(dāng)理解,可以對本發(fā)明的技術(shù)方案進行修改或者等同替換,而不脫離本發(fā)明技術(shù)方案的精神和范圍,其均應(yīng)涵蓋在本發(fā)明的權(quán)利要求范圍當(dāng)中。