本方法發(fā)明屬于蛋白表達(dá)領(lǐng)域,涉及一種定量確定微生物中表達(dá)的目的蛋白的表達(dá)情況的方法。
背景技術(shù):
在生物蛋白研發(fā)及生產(chǎn)過程中,都會涉及到蛋白表達(dá)情況的檢測,包括可溶性目的蛋白的表達(dá)量,以及可溶性蛋白與包涵體的比例等等。而現(xiàn)如今大部分生物科研院所和生物公司,對蛋白表達(dá)情況的檢測,主要是定性的檢測,而且定性檢測效果也不盡如意,比如,蛋白電泳結(jié)果不是很糊分不清,就是很淡看不見。嚴(yán)重影響對蛋白表達(dá)情況的本質(zhì)把握,不能正確指導(dǎo)后續(xù)蛋白表達(dá)優(yōu)化,蛋白放大生產(chǎn)和后續(xù)的蛋白分離純化工作,從而造成時間,人力及資源的浪費(fèi)。
技術(shù)實現(xiàn)要素:
有鑒于此,本發(fā)明目的是提供一種操作簡單方便,所用到的儀器設(shè)備都是生物實驗室常用儀器。從定量的角度上來分析蛋白表達(dá)情況,解決現(xiàn)有問題,為后續(xù)蛋白表達(dá)優(yōu)化,蛋白放大生產(chǎn)及分離純化提供可靠依據(jù)的定量確定微生物中表達(dá)的目的蛋白的表達(dá)情況的方法。
為了解決上述技術(shù)問題,本發(fā)明的技術(shù)方案是:
一種定量確定微生物中表達(dá)的目的蛋白的表達(dá)情況的方法,對于一表達(dá)了目的蛋白的微生物菌液,總體積為v總ml,其在波長為600nm的光照下的光吸收值od600為a,從v總中取出的用于檢測目的蛋白表達(dá)情況的菌液體積為v檢ml。那么,取出的菌液經(jīng)離心去上清液后,得到菌體沉淀,往菌體沉淀中加入的裂解緩沖液體積為40v檢aul。
進(jìn)一步的,將所述體積為40v檢aul的含菌體沉淀的裂解緩沖液混勻,并用超聲破碎儀將菌體破碎后,各取30ul的破菌液于兩個1.5mlep管中。其中一個ep1管中加入10ul的4*蛋白樣品處理液,用于跑變性蛋白電泳的全菌液樣品s全菌;另一個ep2管于高速離心機(jī)中離心,將離心后的上清液小心轉(zhuǎn)入另一個新的ep3管中,并向ep3管中加入10ul的4*蛋白樣品處理液,用于跑變性蛋白電泳的上清液樣品s上清;已移除上清液的ep2管中所剩下的沉淀即為包涵體,往已移除上清液的ep2管中包涵體加入與上清液體積相同的裂解緩沖液30ul,并向ep2管中加入10ul的4*蛋白樣品處理液,用于跑變性蛋白電泳的包涵體樣品s包涵體。
進(jìn)一步的,所述s全菌,s上清,s包涵體,按同樣方法制得的不含目的蛋白的全菌液樣品s陰性和已知蛋白濃度的純蛋白s定量連同蛋白maker一起跑變性蛋白電泳,上樣量都為v上樣ul。根據(jù)蛋白電泳膠圖結(jié)果,可看出目的蛋白在上清液和包涵體中的大致分布,目的蛋白是在上清液中多,還是在包涵體中更多,此即為定性。通過凝膠成像系統(tǒng)分析蛋白電泳膠圖,可得出s全菌,s上清,s包涵體中各自目的蛋白的量與s定量中已知蛋白量的比例,從而得到上樣量都為v上樣ul的s全菌,s上清,s包涵體里目的蛋白的量分別為m全菌ug,m上清ug,m包涵體ug,其中m全=m上清+m包涵體。因此,上清液中目的蛋白量與包涵體中目的蛋白總量的比值為d=m上清/m包涵體,其中上清液中的目的蛋白即為可溶性目的蛋白,從而體積為v總ml的微生物菌液中可溶性目的蛋白的總量m上清=160m上清v總a/(3v上樣)ug;體積為v總ml的微生物菌液中可溶性目的蛋白的濃度為d上清=160m上清a/(3v上樣)ug/ml。此即為定量分析。
進(jìn)一步的,所述不含目的蛋白的全菌液樣品s陰性,即做為實驗的陰性對照,用于判斷目的蛋白是否在實驗組有表達(dá)。
進(jìn)一步的,所述已知蛋白濃度的純蛋白s定量,即做為實驗的定量標(biāo)尺,用于定量目的蛋白的量。
進(jìn)一步的,所述d值越大,上清液中的目的蛋白越多,也就是可溶性目的蛋白越多;當(dāng)d>1時,上清液中的目的蛋白比包涵體中的目的蛋白多,也就是可溶性目的蛋白更多。
進(jìn)一步的,所述d上清=160m上清a/(3v上樣)ug/ml=60m上清a/(3v上樣)mg/l,表示每l菌液中含可溶性目的蛋白的毫克數(shù)。以此來判斷目的蛋白的表達(dá)是否可觀。
進(jìn)一步的,所述定量分析是通過凝膠成像系統(tǒng)來分析蛋白電泳膠圖,對于無凝膠成像系統(tǒng)的實驗室,也可通過肉眼大致得出目的蛋白與定量蛋白之間的比例,從而得出粗略的相應(yīng)數(shù)據(jù)。
本發(fā)明技術(shù)效果主要體現(xiàn)在以下方面:本方法發(fā)明操作簡單方便,所用到的儀器設(shè)備都是生物實驗室常用儀器。從定量的角度上來分析蛋白表達(dá)情況,解決現(xiàn)有問題,為后續(xù)蛋白表達(dá)優(yōu)化,蛋白放大生產(chǎn)及分離純化提供可靠依據(jù)。
附圖說明
圖1為本發(fā)明的實施例的蛋白電泳膠圖;
圖2為本發(fā)明的對照組1電泳膠圖;
圖3為本發(fā)明的對照組2電泳膠圖;
圖4為本發(fā)明的對照組3電泳膠圖。
具體實施方式
以下結(jié)合附圖1-4,對本發(fā)明的具體實施方式作進(jìn)一步詳述,以使本發(fā)明技術(shù)方案更易于理解和掌握。
實施例
本方法發(fā)明操作簡單方便,所用到的儀器設(shè)備都是生物實驗室常用儀器。從定性和定量的角度上來分析蛋白表達(dá)情況,解決現(xiàn)有問題,為后續(xù)蛋白表達(dá)優(yōu)化,蛋白放大生產(chǎn)及分離純化提供可靠依據(jù)。
對于一已誘導(dǎo)表達(dá)了proteina的微生物菌液,總體積為50ml,其在波長為600nm的光照下的光吸收值od600為4.124,從v總中取出的用于檢測目的蛋白表達(dá)情況的菌液體積為5ml。那么,取出的菌液經(jīng)離心去上清液后,得到菌體沉淀,往菌體沉淀中加入的裂解緩沖液體積為824ul。
將所述體積為824ul的含菌體沉淀的裂解緩沖液混勻,并用超聲破碎儀將菌體破碎后,各取30ul的破菌液于兩個1.5mlep管中。其中一個ep1管中加入10ul的4*蛋白樣品處理液,用于跑變性蛋白電泳的全菌液樣品s全菌;另一個ep2管于高速離心機(jī)中離心,將離心后的上清液小心轉(zhuǎn)入另一個新的ep3管中,并向ep3管中加入10ul的4*蛋白樣品處理液,用于跑變性蛋白電泳的上清液樣品s上清;已移除上清液的ep2管中所剩下的沉淀即為包涵體,往已移除上清液的ep2管中包涵體加入與上清液體積相同的裂解緩沖液30ul,并向ep2管中加入10ul的4*蛋白樣品處理液,用于跑變性蛋白電泳的包涵體樣品s包涵體。
所述s全菌,s上清,s包涵體,按同樣方法制得的不含目的蛋白的全菌液樣品s陰性和已知蛋白濃度為1ug/ul的純蛋白s定量連同蛋白maker一起跑變性蛋白電泳,除s定量上樣量為1ul外,其余上樣量都為15ul。蛋白電泳膠圖結(jié)果如圖1所示。
通過電泳膠圖定性分析為:有實驗組有目的蛋白表達(dá),且上清液中目的蛋白比包涵體中的目的蛋白量更少些。
通過bio-radimagelab凝膠成像系統(tǒng)分析定量分析蛋白電泳膠圖,可得出
s全菌:s定量=1.27,s上清:s定量=0.48,s包涵體:s定量=0.71,
從而得到上樣量都為15ul的s全菌,s上清,s包涵體里目的蛋白的量分別為1.27ug,0.48ug,0.71ug,其中m全菌大致等于m上清+m包涵體。
因此,可溶性目的蛋白量與包涵體中目的蛋白總量的比值為d=m上清/m包涵體=0.676,表明可溶性蛋白表達(dá)量相比當(dāng)包涵體少了32.4%。
從而體積為50ml的微生物菌液中可溶性目的蛋白的總量
m上清=160m上清v總a/(3v上樣)ug=352ug;
體積為v總ml的微生物菌液中可溶性目的蛋白的濃度為
d上清=160m上清a/(3v上樣)ug/ml=7ug/ml=7mg/l。表明在該表達(dá)條件下,每升培養(yǎng)基能表達(dá)出7mg的可溶性目的蛋白,這樣的表達(dá)情況不算特別好,需要后續(xù)優(yōu)化表達(dá)條件或優(yōu)化質(zhì)粒構(gòu)建。
實驗例
實驗組:完全嚴(yán)格按實施例中公開的,本發(fā)明的方法來;
對照組1:與實驗組相比,區(qū)別在于:沒有加定量對照的純蛋白;
對照組2:與實驗組相比,區(qū)別在于:沒有加陰性對照的樣品和定量對照的純蛋白;
對照組3:與實驗組相比,區(qū)別在于:未按本發(fā)明的方法來,但是隨意加的,未加定量蛋白。
對照組1
按上述方法處理樣品,跑電泳,但是沒有加定量對照的純蛋白。電泳膠圖結(jié)果如圖2所示。
從電泳膠圖可以看出,對比陰性對照組,實驗組有目的蛋白表達(dá),且上清液中目的蛋白量比包涵體中目的蛋白量多一些,表明可溶性目的蛋白表達(dá)量相對多一些。但因為沒有加定量對照的純蛋白,無法定量確定目的蛋白的絕對量,因此無法準(zhǔn)確確定目的蛋白的表達(dá)水平。因些有必要加上定量蛋白。
對照組2
按上述方法處理樣品,跑電泳,但是沒有加陰性對照的樣品和定量對照的純蛋白。電泳膠圖結(jié)果如圖3所示。
因為沒有陰性對照樣品,所以無法確定哪條帶是目的蛋白。因此更談不上定性和定量分析。于是一定要記得加上陰性對照的樣品。
對照組3
該實驗例中,取菌液時未量體積,也未測菌液的od600,經(jīng)離心得到菌體沉淀后,隨意加了一定體積的裂解緩沖液。超聲波破菌后,未按上述方法處理跑電泳前的樣品,未算好體積加樣品和蛋白樣品處理液,只是隨意處理樣品,未加定量對照的純蛋白,電泳結(jié)果如圖4所示。
從電泳膠圖可以看出,對比陰性對照組,實驗組有目的蛋白表達(dá)。但因為處理樣品時未算好體積,而是隨意加樣,導(dǎo)致包涵體中目的蛋白量比全菌中的目的蛋白還要多,因此不能反映目的蛋白在上清液和包涵體中的表達(dá)分布情況。即使假如加了定量蛋白,可能通過凝膠分析系統(tǒng)得出全菌、上清液和包涵體中目的蛋白的量,但因為沒有記錄制備電泳樣品的各項數(shù)據(jù),從而也是無法定量算出可溶性目的蛋白的表達(dá)水平。因此制備電泳樣品時要遵循上述方法。
本發(fā)明技術(shù)效果主要體現(xiàn)在以下方面:本方法發(fā)明操作簡單方便,所用到的儀器設(shè)備都是生物實驗室常用儀器。從定量的角度上來分析蛋白表達(dá)情況,解決現(xiàn)有問題,為后續(xù)蛋白表達(dá)優(yōu)化,蛋白放大生產(chǎn)及分離純化提供可靠依據(jù)。
當(dāng)然,以上只是本發(fā)明的典型實例,除此之外,本發(fā)明還可以有其它多種具體實施方式,凡采用等同替換或等效變換形成的技術(shù)方案,均落在本發(fā)明要求保護(hù)的范圍之內(nèi)。