本發(fā)明涉及基因合成領(lǐng)域,具體涉及一種基因合成方法。
背景技術(shù):
目前基因合成技術(shù)普遍利用dna聚合酶,在體外模擬dna復(fù)制,彼此帶有同源序列的引物在dna聚合酶的作用下能彼此延伸得到目的dna片段,最終將得到的dna片段分離純化后克隆到指定載體中測(cè)序驗(yàn)證,這一技術(shù)我們稱之為基于pcr的基因合成技術(shù)。該技術(shù)原理簡(jiǎn)單、易用,但操作過程十分復(fù)雜,整個(gè)過程需要經(jīng)歷pcr體系的配制、上機(jī)擴(kuò)增、電泳檢測(cè)回收、酶切連接、轉(zhuǎn)化等繁瑣的實(shí)驗(yàn)操作步驟;同時(shí)pcr過程會(huì)將引物本身帶有的突變放大導(dǎo)致合成出錯(cuò);并且高度重復(fù)序列、高gc、高at、反向重復(fù)、回文等高級(jí)結(jié)構(gòu)因pcr不能正常擴(kuò)增而導(dǎo)致合成的失敗,成為基于pcr的基因合成技術(shù)的一大難點(diǎn)和瓶頸。與之對(duì)應(yīng)的是大量的人力,物力和時(shí)間的耗費(fèi),因此極大了限制了合成的通量和人均產(chǎn)能。隨著基因研究的不斷深入,目前“讀基因”(基因測(cè)序)擁有全自動(dòng)的高通量測(cè)序儀,但“寫基因”(基因合成)全都依賴人工合成,因此繁瑣的實(shí)驗(yàn)步驟、目前技術(shù)手段的內(nèi)在短板成為了寫基因的限速步驟。
技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:
針對(duì)現(xiàn)有技術(shù)中的上述缺陷,本發(fā)明的主要目的在于提供一種基因合成方法,不依賴pcr擴(kuò)增,規(guī)避了pcr擴(kuò)增中繁瑣的實(shí)驗(yàn)步驟;同時(shí)規(guī)避了pcr技術(shù)錯(cuò)誤率高,難以擴(kuò)增高度重復(fù)、高gc、高at含量、發(fā)卡結(jié)構(gòu)等難度序列的缺陷;本發(fā)明能將具有相同或不同來源的基因同步組合合成,構(gòu)建基因突變庫(kù),具有靈活性。
為了解決上述缺陷,本發(fā)明采用如下技術(shù)方案:一種基因合成方法,所述方法包括:
(1)將待合成基因序列分成55-100bp長(zhǎng)度的第一連續(xù)片段,將所述第一連續(xù)片段設(shè)計(jì)成正向引物;將與所述第一連續(xù)片段錯(cuò)開15-20bp長(zhǎng)度處的基因序列作為第二連續(xù)片段,在所述第二連續(xù)片段的反向互補(bǔ)序列上設(shè)計(jì)連續(xù)的反向引物;
(2)將所述正向引物和反向引物混合,得到引物混合物;
(3)將所述引物混合物煮沸,退火,得到含有多個(gè)缺刻的雙鏈dna片段;
(4)將合成的雙鏈dna片段連接到puc57-gfp-amp載體上,所述載體的序列如序列表1所示,轉(zhuǎn)化大腸桿菌細(xì)胞,反向篩選不發(fā)熒光的菌落,測(cè)序驗(yàn)證。
作為進(jìn)一步的優(yōu)選,所述正向引物中,最靠近基因5’端的引物在5’端含有接頭序列;所述反向引物中,最靠近基因3’端的引物在3’端含有接頭序列。
作為進(jìn)一步的優(yōu)選,所述接頭序列包括載體序列的粘性末端序列和含金門克隆反應(yīng)的接頭序列。
作為進(jìn)一步的優(yōu)選,所述正向引物和反向引物完全覆蓋基因的正向序列和反向互補(bǔ)序列,并在所述引物混合物煮沸退火時(shí)在上一引物和下一引物之間配對(duì)形成約15-20bp長(zhǎng)度的雙鏈。
作為進(jìn)一步的優(yōu)選,所述步驟(1)中,根據(jù)待合成基因的長(zhǎng)度大小,進(jìn)行基因分組,每組長(zhǎng)度為700-800bp,再將700-800bp長(zhǎng)度的基因序列分成長(zhǎng)度55-100bp連續(xù)片段。
作為進(jìn)一步的優(yōu)選,所述步驟(3)中,將所述引物混合物經(jīng)t4多聚核苷酸激酶磷酸化處理后煮沸、退火,再由t4dna連接酶處理,將引物連成兩端帶長(zhǎng)粘性末端的雙鏈dna片段。
作為進(jìn)一步的優(yōu)選,所述待合成基因序列的長(zhǎng)度為500-800bp。
作為進(jìn)一步的優(yōu)選,所述步驟(4)中,所述puc57-gfp-amp載體的制備方法包括:提供一puc57載體,將所述puc57載體改造獲得含gfp基因、無(wú)sapi酶切位點(diǎn)的puc57-sapifree-amp載體,通過雙酶切和t4dna外切酶活性得到線性化的兩端為長(zhǎng)粘性末端的載體。
作為進(jìn)一步的優(yōu)選,所述步驟(4)中,將合成的雙鏈dna基因連接到所述puc57-gfp-amp載體上,包括:通過同源重組的方法將含粘性末端的基因連接到含有對(duì)應(yīng)長(zhǎng)粘性末端的載體上,通過gfp熒光進(jìn)行反向篩選轉(zhuǎn)化該質(zhì)粒的大腸桿菌。
作為進(jìn)一步的優(yōu)選,還包括:將克隆到所述載體的基因片段質(zhì)粒通過1到3輪金門克隆反應(yīng)進(jìn)行拼接,得到全長(zhǎng)基因。
本發(fā)明的有益效果是:本發(fā)明基因合成方法不需要基因擴(kuò)增儀,整個(gè)合成過程只需要電熱水壺、水浴鍋等簡(jiǎn)單廉價(jià)的設(shè)備,是一個(gè)能迅速?gòu)?fù)制的生產(chǎn)路線。另外,本發(fā)明設(shè)計(jì)的puc57-gfp-amp載體具有以下優(yōu)點(diǎn):a、載體骨架更符合客戶選擇,背景清晰使用方便,一步合成的小基因可直接發(fā)貨給客戶。b、載體只需要t4dna聚合酶在相應(yīng)保護(hù)堿基存在的條件下處理一次即可,大大簡(jiǎn)化實(shí)驗(yàn)操作,且無(wú)需轉(zhuǎn)化rosetta(de3)plyss菌株,gfporf帶有prrn組成型啟動(dòng)子,在常見的大腸桿菌top10中也能表達(dá)綠色熒光蛋白,菌體在藍(lán)光儀下呈綠色,可用于反向篩選。而且,本發(fā)明中設(shè)計(jì)引物的長(zhǎng)度設(shè)計(jì)在70nt甚至更長(zhǎng),一步合成的典型長(zhǎng)度可以達(dá)到500bp以上,進(jìn)一步擴(kuò)展了合成小基因的范圍,如果待合成的基因在500bp以內(nèi)可以通過提高引物長(zhǎng)度一步合成;引物之間可以在退火時(shí)互相配對(duì)驗(yàn)證,降低錯(cuò)誤合成的引物被引進(jìn)基因序列的問題,保證了克隆進(jìn)載體基因的正確率。
綜上所述,本發(fā)明基因合成方法不依賴pcr擴(kuò)增,規(guī)避了pcr擴(kuò)增中繁瑣的實(shí)驗(yàn)步驟,極大地提升了人均產(chǎn)能,降低合成的成本;同時(shí)該技術(shù)完美規(guī)避了pcr技術(shù)錯(cuò)誤率高(實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)表明800bp序列一步合成正確率達(dá)到99%以上),難以擴(kuò)增高度重復(fù)、高gc、高at含量、發(fā)卡結(jié)構(gòu)等難度序列的缺陷;因其靈活性,能將具有相同或不同來源的基因同步組合合成,構(gòu)建基因突變庫(kù),是組合生物合成技術(shù)(combinatorialbiosynthesis)的最佳選擇,對(duì)篩選功能藥物等生理活性物質(zhì),研究生物代謝途徑以及生物進(jìn)化具有非常重要的意義。
附圖說明
圖1為本發(fā)明實(shí)施例的引物組裝克隆示意圖。
圖2為本發(fā)明實(shí)施例2金門克隆反應(yīng)示意圖。
圖3為本發(fā)明實(shí)施例puc57-gfp-amp載體的示意圖。
圖4a-1至4a-2為16083a的測(cè)序結(jié)果示意圖。
圖4b-1至4b-2為16083b的測(cè)序結(jié)果示意圖。
圖4c-1至4c-2為16083c的測(cè)序結(jié)果示意圖。
圖5-1至5-2為16083測(cè)序比對(duì)結(jié)果圖。
圖6a-1至6a-2為16128a的測(cè)序結(jié)果示意圖。
圖6b-1至6b-3為16128b的測(cè)序結(jié)果示意圖。
圖6c-1至6c-3為16128c的測(cè)序結(jié)果示意圖。
圖7-1至7-2為16128測(cè)序比對(duì)結(jié)果圖。
具體實(shí)施方式
本發(fā)明通過提供一種基因合成方法,克服了現(xiàn)有基于pcr的基因合成技術(shù)的缺陷。
為了解決上述問題,本發(fā)明實(shí)施例的主要思路是:
本發(fā)明實(shí)施例基因合成方法,所述方法包括:
(1)將待合成基因序列分成55-100bp長(zhǎng)度的第一連續(xù)片段,將所述第一連續(xù)片段設(shè)計(jì)成正向引物;將與所述第一連續(xù)片段錯(cuò)開15-20bp長(zhǎng)度處的基因序列作為第二連續(xù)片段,在所述第二連續(xù)片段的反向互補(bǔ)序列上設(shè)計(jì)連續(xù)的反向引物;
(2)將所述正向引物和反向引物混合,得到引物混合物;
(3)將所述引物混合物煮沸,退火,得到含有多個(gè)缺刻的雙鏈dna片段;
(4)將合成的雙鏈dna片段連接到puc57-gfp-amp載體上,所述載體的序列如序列表1所示,轉(zhuǎn)化大腸桿菌細(xì)胞,反向篩選不發(fā)熒光的菌落,測(cè)序驗(yàn)證。
所述步驟(4)中,所述載體的制備方法包括:
提供一puc57載體,對(duì)puc57載體上的sapi位點(diǎn)進(jìn)行誘變,去掉sapi位點(diǎn)。然后對(duì)mcs(多克隆位點(diǎn))處進(jìn)行改造只保留兩端的ecori和hindiii位點(diǎn),同時(shí)分別在ecori位點(diǎn)前面和hindiii后面分別設(shè)計(jì)一段序列,達(dá)到t4dna聚合酶處理一次就得到比較長(zhǎng)的黏性末端的效果。在ecori和hindiii位點(diǎn)中間填充一個(gè)gfp的orf(開放閱讀框架),載體命名為puc57-gfp-amp。
所述步驟(1)-(4)中,對(duì)于小于500bp左右長(zhǎng)度的基因片段,用去離子水將每條引物稀釋成濃度為10poml,分別取每條引物1ul于一干凈的ep管中,加入2.5ulthbuffer(500mmnacl,100mmtris-cl(ph8.0),1mmedta),補(bǔ)去離子水至總體積25ul充分混勻。將混合物至于沸水中10min然后緩慢降溫至室溫;對(duì)于大于500bp小于800bp的基因片段,在引物混合后需要加入atp和t4多聚核苷酸激酶,使引物5’端磷酸化。
退火產(chǎn)物與載體的孵育:取退火產(chǎn)物3ul,預(yù)處理的puc57-gfp-amp載體1ul,混合均勻后37℃保溫15min后常規(guī)轉(zhuǎn)化大腸桿菌top10細(xì)胞,涂布lb/amp抗性平板過夜培養(yǎng)。
在藍(lán)光儀下觀察過夜培養(yǎng)的轉(zhuǎn)化子,用記號(hào)筆圈出發(fā)光的菌(空載體),隨機(jī)挑取8個(gè)菌落進(jìn)行pcr驗(yàn)證。
陽(yáng)性克隆送測(cè)序:
基因合成連接載體示意圖見圖1,其中p1、p3、p5、pn-1等連接起來為完整的基因序列。p2、p4、p6、pn連接起來為基因的反向互補(bǔ)序列。另外pn3’末端為和載體突出的粘性末端互補(bǔ)序列,p15’末端為和載體突出的粘性末端互補(bǔ)序列。
基因拼接:對(duì)于長(zhǎng)度超過800bp的基因,先將長(zhǎng)片段基因進(jìn)行分組,每組長(zhǎng)度在所合成片段范圍內(nèi),然后將克隆到表達(dá)載體的基因片段質(zhì)粒通過1到3輪金門克隆反應(yīng)進(jìn)行拼接。
為了更加清晰地理解本發(fā)明的目的、技術(shù)方案及優(yōu)點(diǎn),以下結(jié)合實(shí)施例,對(duì)本發(fā)明進(jìn)行進(jìn)一步詳細(xì)說明。此處所描述的具體例子所涉及的具體數(shù)據(jù)僅用以解釋本發(fā)明,并不用于限定本發(fā)明。
實(shí)施例1
puc57-gfp-amp載體的制備方法包括:
1、提供一puc57載體,對(duì)puc57載體上的sapi位點(diǎn)進(jìn)行誘變,去掉sapi位點(diǎn)。然后對(duì)mcs(多克隆位點(diǎn))處進(jìn)行改造只保留兩端的ecori和hindiii位點(diǎn),同時(shí)分別在ecori位點(diǎn)前面和hindiii后面分別設(shè)計(jì)一段序列,達(dá)到t4dna聚合酶處理一次就得到比較長(zhǎng)的黏性末端的效果。在ecori和hindiii位點(diǎn)中間填充一個(gè)gfp的orf(開放閱讀框架),載體命名為puc57-gfp-amp。
具體地步驟如下:
1.1sapi位點(diǎn)的誘變:設(shè)計(jì)引物(帶下劃線為突變堿基)
puc57-sapimut-f:5'gcgtattgggcgcacttccgcttcctcgctcactgactc3'
puc57-sapimut-r:5'gcgaggaagcggaagtgcgcccaatacgcaaac3'
以puc57-amp載體為模板擴(kuò)增,擴(kuò)增產(chǎn)物用dpni消化之后回收轉(zhuǎn)化大腸桿菌top10,隨機(jī)挑選3個(gè)轉(zhuǎn)化子用m13-47引物測(cè)序,突變正確的載體標(biāo)記為puc57-sapifree-amp。
1.2mcs的改造:設(shè)計(jì)引物(下劃線為載體重組臂;波浪線為設(shè)計(jì)的接頭以及酶切位點(diǎn))
mcs-f:aaaacgacggccagtagt
mcs-r:tatgaccatgattacgcc
1.3以申請(qǐng)人公司保留的含gfp的質(zhì)粒為模板擴(kuò)增得到gfporf;
puc57-sapifree-amp載體用ecori/hindiii酶切回收載體骨架與擴(kuò)增回收得到的gfporf在gisbon重組酶的作用下進(jìn)行體外重組。反應(yīng)條件如下:
50℃反應(yīng)1h,反應(yīng)產(chǎn)物常規(guī)轉(zhuǎn)化大腸桿菌top10感受態(tài)細(xì)胞(轉(zhuǎn)化實(shí)驗(yàn)步驟見分子克隆手冊(cè)),涂布lb/amp抗性平板,37℃過夜培養(yǎng)。
1.4在藍(lán)光儀下觀察過夜培養(yǎng)的轉(zhuǎn)化子,隨機(jī)挑選3個(gè)發(fā)光的重組子送測(cè)序驗(yàn)證。測(cè)序驗(yàn)證,之后的載體即為puc57-gfp-amp載體,接種提質(zhì)粒備用。
2.puc57-gfp-amp線性化載體的制備:
2.1puc57-gfp-amp的酶切線性化,酶切體系如下:
水浴鍋37℃反應(yīng)2h,電泳檢測(cè)回收(操作方法參考axygen凝膠回收試劑盒)
2.2puc57-gfp-amp線性化載體的t4dna聚合酶處理,反應(yīng)體系如下
12℃反應(yīng)30min,電泳檢測(cè)回收(操作方法參考axygen凝膠回收試劑盒)
puc57-gfp-amp載體經(jīng)ecori和hindiii酶切后在t4dna聚合酶3’-5’外切酶活性的作用下,在保護(hù)堿基dttp存在的條件下于12℃處理30min得到含有長(zhǎng)黏性末端的載體備用。處理之后得到的載體示意圖如圖3所示。
引物退火一步組裝合成基因16083:
1.基因分組(下劃線為與載體退火序列,波浪線為sapi位點(diǎn))
16083a:(519bp)
caagagagaatt
16083b:(527bp)
caagagagaatt
16083c:(536bp)
caagagagaatt
2.引物設(shè)計(jì)(overlap數(shù)20bp)
3.用去離子水將每條引物稀釋成濃度為10pmol,分別取每條引物1ul于一干凈的ep管中,加入2.5ulthbuffer(500mmnacl,100mmtris-cl(ph8.0),1mmedta),補(bǔ)去離子水至總體積25ul充分混勻。將混合物至于沸水中10min然后緩慢降溫至室溫。
4.退火產(chǎn)物與載體的孵育:取退火產(chǎn)物3ul,預(yù)處理的puc57-gfp-amp載體1ul,混合均勻后37℃保溫15min后常規(guī)轉(zhuǎn)化大腸桿菌top10細(xì)胞,涂布lb/amp抗性平板過夜培養(yǎng)。
5.在藍(lán)光儀下觀察過夜培養(yǎng)的轉(zhuǎn)化子,用記號(hào)筆全出發(fā)光的菌(空載體),隨機(jī)挑取8個(gè)菌落進(jìn)行pcr驗(yàn)證。
6.陽(yáng)性克隆送測(cè)序。測(cè)序結(jié)果如圖4a-4c所示。
7.基因拼接
7.1基因拼接反應(yīng)程序?yàn)?/p>
7.2基因拼接測(cè)序結(jié)果比對(duì),見圖5。
實(shí)施例2
puc57-gfp-amp載體的制備方法與實(shí)施例1類似,不再贅述。
1、基因分組(下劃線為與載體退火序列,波浪線為bbsi位點(diǎn),斜體部分為金門克隆反應(yīng)位點(diǎn))
16128a(747bp)
caagagagaattc
16128b(817bp)
caagagagaattc
16128c(873bp)
caagagagaattc
2、設(shè)計(jì)引物合成
3、引物的磷酸化:用去離子水將引物稀釋成50pmol,每組引物分別取0.5ul于單獨(dú)的離心管中,加入10×t4polynucleotidekinasebuffer2ul;t4polynucleotidekinase1ul(neb10u);atp(neb1mm);補(bǔ)去離子水至20ul。充分混勻之后將反應(yīng)體系置于37℃反應(yīng)1h。
4、16128-a/b/c,磷酸化引物退火:分別將每組磷酸化引物在50℃條件下保溫10min后置于沸水中10min后緩慢降至室溫。
5、磷酸化產(chǎn)物與載體的連接:取磷酸化產(chǎn)物8ul于一干凈的pcr管中,加入t4dnaligase1ul(neb40u),加入預(yù)處理的puc57-gfp-amp載體1ul,16℃反應(yīng)1h。
6、連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化:取連接差內(nèi)5ul常規(guī)轉(zhuǎn)化大腸桿菌top10細(xì)胞,涂布lb/amp抗性平板過夜培養(yǎng)。
7、在藍(lán)光儀下觀察過夜培養(yǎng)的轉(zhuǎn)化子,用記號(hào)筆全出發(fā)光的菌(空載體),隨機(jī)挑取8個(gè)菌落進(jìn)行pcr驗(yàn)證。
8、測(cè)序結(jié)果比對(duì),如圖6a-6c所示,
9、測(cè)序正確的轉(zhuǎn)化子(16128-a/b/c)分別接種提質(zhì)粒做金門反應(yīng)拼接合成全長(zhǎng)基因。拼接體系和反應(yīng)程序如下:
10、反應(yīng)體系(puc57-kana-gfp為我公司構(gòu)建保存載體,載體用bbsi線性化)
反應(yīng)程序?yàn)?/p>
11、基因拼接測(cè)序結(jié)果比對(duì)
16128測(cè)序結(jié)果見16128測(cè)序比對(duì)示意圖7。
金門反應(yīng)拼接全長(zhǎng)基因示意圖如圖2所示。
上述本申請(qǐng)實(shí)施例中的技術(shù)方案,至少具有如下的技術(shù)效果或優(yōu)點(diǎn):
本發(fā)明基因合成方法不需要基因擴(kuò)增儀,整個(gè)合成過程只需要電熱水壺、水浴鍋等簡(jiǎn)單廉價(jià)的設(shè)備,是一個(gè)能迅速?gòu)?fù)制的生產(chǎn)路線。另外,本發(fā)明設(shè)計(jì)的puc57-gfp-amp載體具有以下優(yōu)點(diǎn):1、載體骨架更符合客戶選擇,背景清晰使用方便,一步合成的小基因可直接發(fā)貨給客戶。本發(fā)明實(shí)施例載體只需要t4dna聚合酶在相應(yīng)保護(hù)堿基存在的條件下處理一次即可,大大簡(jiǎn)化實(shí)驗(yàn)操作,且無(wú)需轉(zhuǎn)化rosetta(de3)plyss菌株,gfporf帶有prrn組成型啟動(dòng)子,在常見的大腸桿菌top10中也能表達(dá)綠色熒光蛋白,菌體在藍(lán)光儀下呈綠色,可用于反向篩選。
2、本發(fā)明中設(shè)計(jì)引物的長(zhǎng)度設(shè)計(jì)在70nt甚至更長(zhǎng),一步合成的典型長(zhǎng)度可以達(dá)到500bp以上,進(jìn)一步擴(kuò)展了合成小基因的范圍,如果待合成的基因在500bp以內(nèi)可以通過提高引物長(zhǎng)度一步合成。3、本發(fā)明實(shí)施例引入t4多聚核苷酸激酶(t4polynucleotidekinase;neb#m0201)和t4nda連接酶(t4dnaligase;neb#m0202)。t4多聚核苷酸激酶在atp存在的條件下能夠催化atp的γ位磷酸基團(tuán)轉(zhuǎn)移到寡核苷酸鏈(單鏈或者雙鏈dna或者rna)的5’羥基末端,對(duì)引物進(jìn)行磷酸化處理。處理后的磷酸化引物高溫變性低溫退火之后與預(yù)先處理好的puc57-gfp-amp混合于37℃孵育后在t4dna連接酶的作用下進(jìn)行連接反應(yīng),最后轉(zhuǎn)化大腸桿菌top10(感受態(tài)效價(jià)>108cfu/μgdna)一步合成dna片段,合成的典型長(zhǎng)度在800bp左右。4、如果目的基因比較大,一步合成之后可用金門克隆拼接組裝合成。5、引物之間可以在退火時(shí)互相配對(duì)驗(yàn)證,降低錯(cuò)誤合成的引物被引進(jìn)基因序列的問題,保證了克隆進(jìn)載體基因的正確率。
綜上所述,本發(fā)明基因合成方法不依賴pcr擴(kuò)增,規(guī)避了pcr擴(kuò)增中繁瑣的實(shí)驗(yàn)步驟,極大地提升了人均產(chǎn)能,降低合成的成本;同時(shí)該技術(shù)完美規(guī)避了pcr技術(shù)錯(cuò)誤率高(實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)表明800bp序列一步合成正確率達(dá)到99%以上),難以擴(kuò)增高度重復(fù)、高gc、高at含量、發(fā)卡結(jié)構(gòu)等難度序列的缺陷;因其靈活性,能將具有相同或不同來源的基因同步組合合成,構(gòu)建基因突變庫(kù),是組合生物合成技術(shù)(combinatorialbiosynthesis)的最佳選擇,對(duì)篩選功能藥物等生理活性物質(zhì),研究生物代謝途徑以及生物進(jìn)化具有非常重要的意義。
盡管已描述了本發(fā)明的優(yōu)選實(shí)施例,但本領(lǐng)域內(nèi)的技術(shù)人員一旦得知了基本創(chuàng)造性概念,則可對(duì)這些實(shí)施例作出另外的變更和修改。所以,所附權(quán)利要求意欲解釋為包括優(yōu)選實(shí)施例以及落入本發(fā)明范圍的所有變更和修改。顯然,本領(lǐng)域的技術(shù)人員可以對(duì)本發(fā)明進(jìn)行各種改動(dòng)和變型而不脫離本發(fā)明的精神和范圍。這樣,倘若本發(fā)明的這些修改和變型屬于本發(fā)明權(quán)利要求及其等同技術(shù)的范圍之內(nèi),則本發(fā)明也意圖包含這些改動(dòng)和變型在內(nèi)。
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<110>武漢金開瑞生物工程有限公司
<120>一種基因合成方法
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